Equinococosis quística (hidatidosis)

Especies afectadas y susceptibilidad

El perro es el hospedador definitivo: aloja el gusano adulto en el intestino delgado y elimina los huevos con las heces (ESCCAP, 2025). En Chile, el ovino es el principal hospedador intermediario que mantiene el ciclo (Lagos et al., 2025).

Los hospedadores intermediarios desarrollan quistes hidatídicos en las vísceras. En un matadero de La Araucanía, el 76,2% de los quistes de ovinos era fértil, contra solo el 3,2% de los de bovinos; los de cerdos y cabras eran infértiles. Los bovinos sirven como centinelas de la infección, pero aportan poco a la transmisión hacia el perro (Fonseca-Salamanca et al., 2026).

Las personas son hospedadores accidentales: desarrollan quistes, pero no transmiten la infección (Acosta-Jamett et al., 2025).

El agente

Echinococcus granulosus es un cestodo pequeño que vive en el intestino delgado del perro y de algunos otros cánidos. Sus proglótidos son tan pequeños que casi no se ven en las heces (ESCCAP, 2025).

En el hospedador intermediario, la larva forma el quiste hidatídico, en cuyo interior se producen los protoescólex. Cuando un perro come una víscera con un quiste fértil, cada protoescólex puede desarrollarse hasta gusano adulto (Lagos et al., 2025).

Genotipos en Chile. Predomina E. granulosus sensu stricto, con el genotipo G1 o “cepa ovina” como el más frecuente en animales y personas. El genotipo G3 es menos frecuente, y también se ha detectado Echinococcus ortleppi (G5), más fértil en bovinos (Fonseca-Salamanca et al., 2026). En 123 quistes de un matadero de La Araucanía, el 98,1% era G1 y dos quistes de bovinos eran G3 (Fonseca-Salamanca et al., 2026).

Epidemiología en Chile

Distribución. La hidatidosis es endémica, con más incidencia hacia el sur. En 2022, una región tuvo alta endemia, con 40,7 casos humanos por 100.000 habitantes; cinco regiones tuvieron endemia media, entre 5,2 y 18,5 por 100.000, y diez tuvieron endemia baja (Lagos et al., 2025). Aysén y Magallanes concentran más de la mitad de los ovinos del país (Lagos et al., 2025). La Araucanía tiene tasas de incidencia y de mortalidad particularmente altas (Fonseca-Salamanca et al., 2026).

Perros de Limarí. En 2009, el 28% de 93 perros de zonas rurales de la provincia de Limarí, Región de Coquimbo, tenía antígeno de Echinococcus en las heces, y el 2,6% de 403 adultos tenía anticuerpos. La infección del perro se asoció con la faena de animales en la casa (Acosta-Jamett et al., 2014).

Perros urbanos. En la Región de Coquimbo también se encontraron perros positivos en zonas urbanas, con más riesgo en los bordes de las ciudades. La explicación propuesta es la faena casera de animales traídos del campo para celebraciones locales (Acosta-Jamett et al., 2010).

Magallanes. Antes del programa de control iniciado en 1979, el 60% de los perros y el 82% de los ovinos estaban infectados. En 2004, al terminar el programa, la infección había bajado a 0,5% en perros y 0,7% en ovinos. Desde entonces aumentó en forma sostenida: en 2023 el 6% de los ovinos faenados tenía quistes, y en ovinos de más de 2 años la cifra llegó a 32,5%, parecida a la de 1983 (Alvarez Rojas y Alvarez, 2025).

Contaminación del ambiente. En Tulahuén, Región de Coquimbo, alrededor del 20% de las muestras de suelo de las casas tenía ADN de E. granulosus. En el conjunto del estudio en Chile y Perú, entre el 10% y el 30% de las muestras de pelo de perros estaban contaminadas, y cerca del 30% de las muestras de heces y suelo de lugares públicos (Acosta-Jamett et al., 2025).

Lo que no se sabe. No se encontraron datos recientes de prevalencia en perros de Magallanes ni estudios nacionales en perros. En Magallanes, la vigilancia de perros con arecolina terminó con el programa en 2004 (Alvarez Rojas y Alvarez, 2025).

Transmisión y factores de riesgo

Del ganado al perro. El perro se infecta al comer vísceras crudas, sobre todo hígado y pulmones, con quistes fértiles. Esto ocurre cuando tiene acceso a la faena de animales o a cadáveres (ESCCAP, 2025; Lagos et al., 2025).

Del perro al ganado y a las personas. Los huevos salen con las heces y son infectantes de inmediato. Los ovinos se infectan al comer pasto o tomar agua contaminados, y las personas al llevarse huevos a la boca desde las manos, el pelo del perro, el suelo o alimentos contaminados (ESCCAP, 2025; Acosta-Jamett et al., 2025).

El periodo prepatente es de 5 a 8 semanas, según la especie y el genotipo (ESCCAP, 2025).

Factores de riesgo en el perro:

• Faena domiciliaria y acceso a vísceras crudas (Acosta-Jamett et al., 2014).
• Vivir en zonas rurales con crianza de ovinos (Lagos et al., 2025).
• Perros con poca o ninguna atención veterinaria (Fonseca-Salamanca et al., 2026).

Un hallazgo que necesita contexto. En Limarí, los perros de casas que declaraban desparasitarlos tuvieron más riesgo de ser positivos (Acosta-Jamett et al., 2014). Una explicación posible es que los dueños desparasitan más a los perros que ven expuestos, o que usan productos sin praziquantel; el estudio no permite saber cuál.

Signos clínicos

La infección intestinal del perro no produce signos (ESCCAP, 2025). Como el periodo de eliminación de huevos dura varios meses (ESCCAP, 2025), un perro infectado puede contaminar su entorno durante ese tiempo sin que nadie lo note.

Hallazgos de necropsia

En el perro, los hallazgos esperables son gusanos adultos de pocos milímetros en la mucosa del intestino delgado, visibles al raspar la mucosa, sin lesiones importantes. No se encontraron series de necropsias de perros chilenos.

En el ganado, los quistes hidatídicos en el hígado y los pulmones son una de las principales causas de decomiso de vísceras en Chile, después de Fasciola hepatica (Fonseca-Salamanca et al., 2026).

Histopatología

En el intestino del perro no se esperan lesiones importantes. En los quistes del hospedador intermediario, las estructuras esperables son la capa germinativa, la capa laminada acelular y la cápsula fibrosa que forma el hospedador.

Diagnóstico de laboratorio

Es difícil en el perro (ESCCAP, 2025):

• Los proglótidos casi no se ven en las heces.
• La flotación tiene baja sensibilidad, porque los huevos se eliminan en forma intermitente. Conviene usar soluciones de flotación más densas y muestras de 3 días seguidos.
• La cinta adhesiva perianal puede dar mejores resultados.

Huevos de ténidos. Los huevos de Echinococcus y de Taenia no se distinguen al microscopio. Cuando se encuentran huevos de ténidos, la especie debe identificarse por PCR, y en zonas endémicas hay que manejarlos como una posible infección por Echinococcus (ESCCAP, 2025).

Coproantígeno. El ELISA de antígeno en heces se ha usado en estudios chilenos para medir la infección en perros (Acosta-Jamett et al., 2014).

Diagnóstico diferencial

En el perro, el diagnóstico diferencial es de laboratorio: los otros ténidos, como Taenia spp., que tienen huevos iguales, y Dipylidium caninum, cuyos huevos vienen en paquetes (ESCCAP, 2025).

Tratamiento

Praziquantel. Un perro con Echinococcus confirmado debe recibir dos dosis de praziquantel con 24 horas de diferencia (ESCCAP, 2025). La dosis estándar de praziquantel en perros es de 5 mg/kg (ESCCAP, 2025b).

Medidas durante el tratamiento (ESCCAP, 2025):

• Bañar al perro después de cada dosis para quitar los huevos del pelo, y otra vez antes de devolverlo a los dueños.
• El personal debe usar guantes, mascarilla y ropa de protección.
• Eliminar las heces de forma segura, idealmente incinerándolas, hasta 3 días después del tratamiento.
• Informar a los dueños del riesgo al que estuvieron expuestos, para que consulten a su médico.

Control. Coprológico por flotación y PCR a los 7 a 14 días (ESCCAP, 2025).

Pronóstico

El tratamiento elimina los gusanos adultos, pero el perro se vuelve a infectar si sigue comiendo vísceras crudas.

Prevención

• Impedir el acceso a vísceras crudas y a cadáveres de ovinos, cerdos, bovinos o caballos (ESCCAP, 2025).
• Praziquantel al menos cada 6 semanas en perros que pueden comer vísceras crudas, porque el periodo prepatente es de 5 a 8 semanas (ESCCAP, 2025).
• Faena controlada: los programas de control combinan el tratamiento de perros con praziquantel, la vacunación de ovinos con EG95, la mejora de los mataderos, la regulación de la faena domiciliaria y la educación (Borhani et al., 2024).
• Vacuna EG95 en ovinos: en 2016 se incorporó a programas piloto en dos regiones del sur de Chile (Alvarez Rojas et al., 2016).

Lo que esto implica. El caso de Magallanes muestra que el control con praziquantel funciona mientras se mantiene, y que la infección vuelve cuando se detiene (Alvarez Rojas y Alvarez, 2025).

Riesgo zoonótico

En las personas, E. granulosus causa equinococosis quística, con quistes sobre todo en el hígado y los pulmones, que sin tratamiento pueden ser graves (ESCCAP, 2025). La hidatidosis humana es de notificación obligatoria al MINSAL dentro de 24 horas (Decreto 7 de 2019 del Ministerio de Salud). La infección por E. granulosus es además una enfermedad de denuncia obligatoria al SAG, presente en Chile (SAG, 2019).

En Limarí, el contacto con perros y con sus heces fue un factor de riesgo para tener anticuerpos (Acosta-Jamett et al., 2014). En el estudio de Chile y Perú, los lugares públicos estaban más contaminados que las casas, y las verduras analizadas fueron negativas. El estudio propone ver la hidatidosis como una infección ambiental con riesgo comunitario (Acosta-Jamett et al., 2025).

Referencias

• Acosta-Jamett, G., Cleaveland, S., Bronsvoort, B. M., Cunningham, A. A., Bradshaw, H., & Craig, P. S. (2010). Echinococcus granulosus infection in domestic dogs in urban and rural areas of the Coquimbo region, north-central Chile. Veterinary Parasitology, 169(1-2), 117-122. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2009.12.005
• Acosta-Jamett, G., Tamarozzi, F., Castro, N., Santivanez, S. J., Laurente, R. E., Mazzi, C., Alvarez-Rojas, C. A., & Casulli, A. (2025). Community risk of environmental-borne cystic echinococcosis transmission in South America: results from the multistep cross-sectional and case-control PERITAS study. PLoS Neglected Tropical Diseases, 19(8), e0013382. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013382
• Acosta-Jamett, G., Weitzel, T., Boufana, B., Adones, C., Bahamonde, A., Abarca, K., Craig, P. S., & Reiter-Owona, I. (2014). Prevalence and risk factors for echinococcal infection in a rural area of northern Chile: a household-based cross-sectional study. PLoS Neglected Tropical Diseases, 8(8), e3090. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003090
• Alvarez Rojas, C. A., & Alvarez, J. F. (2025). Reemergence of Echinococcus granulosus infections after 2004 termination of control program in Magallanes Region, Chile. Emerging Infectious Diseases, 31(2), 373-376. https://doi.org/10.3201/eid3102.240980
• Alvarez Rojas, C. A., Fredes, F., Torres, M., Acosta-Jamett, G., Alvarez, J. F., Pavletic, C., Paredes, R., & Cortés, S. (2016). First meeting “Cystic echinococcosis in Chile, update in alternatives for control and diagnostics in animals and humans”. Parasites & Vectors, 9, 502. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1792-y
• Borhani, M., Fathi, S., Harandi, M. F., Casulli, A., Ding, J., et al. (2024). Echinococcus granulosus sensu lato control measures: a specific focus on vaccines for both definitive and intermediate hosts. Parasites & Vectors, 17. https://doi.org/10.1186/s13071-024-06581-2
• ESCCAP. (2025). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl1/
• ESCCAP. (2025b). Control of intestinal protozoa in dogs and cats (Guideline 06, 3.ª ed., marzo de 2025). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl6/
• Fonseca-Salamanca, F., Melo, A., Venegas, J., Paredes, M., Villanueva, J., Poo-Muñoz, D., Muñoz-Caro, T., Herrera-George, C., & Hidalgo, A. (2026). Cattle as biological indicators of Echinococcus granulosus sensu stricto in an endemic region from Chile. Animals, 16(12). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC13296003/
• Lagos, R., Gutiérrez-Jara, J. P., Cancino-Faure, B., et al. (2025). The role of host mobility in the transmission and spread of Echinococcus granulosus: a Chile-based mathematical modeling approach. PLoS Neglected Tropical Diseases, 19(4), e0012948. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0012948
• Ministerio de Salud de Chile. (2019). Decreto 7, que aprueba el reglamento sobre notificación de enfermedades transmisibles de declaración obligatoria y su vigilancia. Diario Oficial, 24 de enero de 2020.
• Servicio Agrícola y Ganadero (SAG). (2019). Enfermedades de denuncia obligatoria al SAG. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/enfermedades_denuncia_obligatoria_sag_9-10-2019.pdf