Gurltiosis felina (Gurltia paralysans)

Especies afectadas y susceptibilidad

Gurltia paralysans causa una meningomielitis crónica grave en gatos domésticos y en felinos silvestres pequeños de Sudamérica, como la güiña (Leopardus guigna), el margay y el gato tigre (Rojas-Barón et al., 2022).

Gatos de mayor riesgo. En 12 casos del sur de Chile, la mayoría venía de zonas rurales, con vida al aire libre, conducta de caza y contacto con fauna silvestre, y con poca atención veterinaria (Gómez et al., 2024).

El agente

G. paralysans es un nematodo de la familia Angiostrongylidae. Las hembras miden de 20 a 30 mm y los machos de 12 a 15 mm. Los adultos viven en las venas de las meninges de los segmentos torácicos, lumbares y sacros de la médula espinal (Gómez et al., 2024).

Ciclo desconocido. El ciclo completo no se conoce. Lo más probable es que use caracoles y babosas como hospedadores intermediarios, y que aves, anfibios, reptiles o roedores actúen como hospedadores de transporte. No se han encontrado huevos ni larvas en las heces, la sangre, el lavado bronquial ni otros fluidos (Rojas-Barón et al., 2022).

Caracoles y babosas de Valdivia. En 835 caracoles y babosas terrestres recolectados en Punucapa, Valdivia, donde había casos, no se encontraron larvas del parásito por digestión, PCR ni histopatología (Sepúlveda-García et al., 2021).

Epidemiología en Chile

Origen. El parásito se describió por primera vez en 1933 en la zona de bosque templado de Valdivia. Su distribución en Sudamérica va desde Aysén hasta Antioquia, en Colombia (Uribe et al., 2021). El sur de Chile tiene zonas de muy alta frecuencia (Rojas-Barón et al., 2022).

Casos clínicos (Gómez et al., 2024):

• En 12 casos de 2014 y 2015 en el sur de Chile, todos los gatos salían al exterior y cazaban, sobre todo aves y roedores. Once vivían cerca de bosque nativo.
• En 8 de los 12 casos había güiñas en el entorno.
• Ocho gatos nunca habían sido vacunados ni desparasitados, y nueve no recibían atención veterinaria.
• En 2023 se diagnosticó una gata de 3 años de una zona rural cercana a Puerto Varas.

Gatos sanos de ciudad. En 171 gatos urbanos aparentemente sanos de Temuco, Valdivia y Puerto Montt, una PCR experimental en sangre detectó ADN de G. paralysans en el 54,4%: 64,7% en Temuco, 48% en Valdivia y 47,2% en Puerto Montt. No se encontraron factores de riesgo asociados (Barrios et al., 2021).

Lo que esto implica. La PCR usada en gatos sanos es experimental y no está validada para uso rutinario (Rojas-Barón et al., 2022). La cifra de 54,4% indica que el parásito circula en gatos urbanos del sur, pero un positivo en un gato sin signos no equivale a enfermedad.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios en gatos de la zona central o del norte de Chile, ni datos sobre cuántos gatos infectados llegan a tener signos.

Transmisión y factores de riesgo

Los gatos se infectarían al comer caracoles o babosas infectados, o animales que actúan como hospedadores de transporte (Rojas-Barón et al., 2022).

Factores de riesgo descritos en los casos clínicos (Gómez et al., 2024):

• Vivir en zonas rurales con alta biodiversidad.
• Salir al exterior y cazar aves, roedores, lagartijas o insectos.
• Vivir cerca de bosque nativo y de güiñas.
• Falta de atención veterinaria y de desparasitación.

Signos clínicos

Cuadro típico. Los parásitos causan una tromboflebitis progresiva de las venas de las meninges, con paraparesia ambulatoria, paraplejía, ataxia, déficit propioceptivo de las patas traseras, reflejos patelares aumentados en uno o ambos lados, incontinencia fecal y urinaria y parálisis de la cola (Rojas-Barón et al., 2022). También se describen atrofia muscular de las patas traseras, diarrea, pérdida de peso, constipación y muerte (Rojas-Barón et al., 2022).

Serie chilena. En 9 gatos con la infección confirmada hubo paraparesia, paraplejía, ataxia y déficit propioceptivo de las patas traseras, temblores de las patas traseras, dolor lumbosacro y temblor o flacidez de la cola (Mieres et al., 2013).

Caso típico. La gata de Puerto Varas tuvo ataxia de las patas traseras que avanzó en 3 meses a una paraparesia sin capacidad de caminar, con parálisis de la cola, vejiga llena y difícil de vaciar, y dolor lumbar y lumbosacro. Tenía erosiones en el dorso de los metatarsos por arrastrar las patas. El hemograma, la bioquímica, el examen de heces y las radiografías de columna fueron normales (Gómez et al., 2024).

Hallazgos de necropsia

Médula espinal. Congestión de los vasos bajo las meninges en los segmentos cervicotorácicos, torácicos medios y lumbares, con parásitos adultos móviles en las venas de las meninges, junto a las raíces nerviosas dorsales del segmento lumbar (Gómez et al., 2024).

Otros hallazgos. Venas de las meninges tortuosas y trombos dentro de ellas (Gómez et al., 2020). Se han descrito focos hemorrágicos en el pulmón (Rojas-Barón et al., 2022).

Histopatología

• Médula espinal. Meningitis crónica supurativa o linfoplasmohistiocitaria, vasculitis supurativa, congestión y várices de las venas de las meninges (Hartung et al., 2022).
• Meningomielitis eosinofílica grave, con trombosis en las venas parasitadas (Gómez et al., 2020).
• Encéfalo. Las lesiones vasculares también se describen en venas del cerebro, el cerebelo y el tronco encefálico (Rojas-Barón et al., 2022).

Diagnóstico de laboratorio

Diagnóstico definitivo. Solo se logra en la necropsia, al encontrar el parásito en las venas de la médula espinal (López-Contreras et al., 2020).

Diagnóstico presuntivo. Se basa en los signos neurológicos, los factores de riesgo y el descarte de otras causas de mielopatía (Mieres et al., 2013).

Imágenes (Mieres et al., 2013):

• Mielografía por tomografía: aumento difuso del diámetro de la médula en las regiones torácica media, lumbar y sacra en todos los gatos.
• Resonancia magnética: múltiples áreas nodulares pequeñas hiperintensas en T2 en la periferia de la médula torácica y lumbar.

Sangre y líquido cefalorraquídeo (Mieres et al., 2013):

• Concentración de hemoglobina corpuscular media baja en 8 de 9 gatos.
• Eosinofilia en 3 gatos y trombocitopenia en 3.
• Pleocitosis mononuclear en el líquido cefalorraquídeo en 5 gatos.

PCR. En 12 gatos con sospecha de gurltiosis, una PCR semianidada detectó el parásito en el líquido cefalorraquídeo de 4 de 9 gatos y en el suero de 7 de 7. El suero sería una mejor muestra (López-Contreras et al., 2020).

Prueba de antígeno para perros. Una prueba rápida comercial de antígeno de Angiostrongylus vasorum, diseñada para perros, fue positiva en 7 de 10 gatos con paraparesia o paraplejía de una zona endémica del sur de Chile, por reacción cruzada (Gómez et al., 2020).

Lo que no se sabe. La PCR y la prueba de antígeno necesitan validación antes de usarse de rutina (Rojas-Barón et al., 2022). No se encontraron datos sobre su disponibilidad en laboratorios chilenos.

Diagnóstico diferencial

En el caso de Puerto Varas se consideraron (Gómez et al., 2024):

• Trauma de columna.
• Otras infecciones: virales, bacterianas, micóticas, por protozoos y por otros nematodos. Entre las causas infecciosas de meningomielitis felina están la peritonitis infecciosa felina, FeLV, FIV y Toxoplasma gondii.
• Meningomielitis de origen desconocido.
• Tumores, como linfoma y meningioma.

Aelurostrongylus. En gatos con gurltiosis es frecuente la infección mixta con Aelurostrongylus abstrusus, sin lesiones respiratorias en la necropsia (López-Contreras et al., 2020).

Tratamiento

No hay ensayos de tratamiento ni un esquema probado como eficaz (Uribe et al., 2021).

Ivermectina. Hay reportes de recuperación clínica con ivermectina oral en casos leves o moderados (Uribe et al., 2021).

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios con grupo control, ni datos sobre la recuperación de la función neurológica en gatos con paraplejía.

Pronóstico

En los estudios chilenos, los gatos con enfermedad grave fueron eutanasiados (Gómez et al., 2020; Gómez et al., 2024).

Lo que esto implica. La respuesta descrita a la ivermectina se refiere a casos leves o moderados. Detectar la enfermedad antes de la parálisis sería clave para el pronóstico.

Prevención

• Lactonas macrocíclicas preventivas, como selamectina o milbemicina, podrían prevenir la infección en gatos de zonas endémicas (Uribe et al., 2021).
• Limitar la caza y el contacto con caracoles, babosas y hospedadores de transporte (Uribe et al., 2021).
• Tenencia responsable, con atención veterinaria y desparasitación regulares (Gómez et al., 2024).

Riesgo zoonótico

No se ha descrito infección en personas.

Referencias

• Barrios, N., Gómez, M., Zanelli, M., Rojas-Barón, L., Sepúlveda-García, P., Alabí, A., Adasme, M., Müller, A., Rosenfeld, C., González-Lagos, C., Taubert, A., & Hermosilla, C. (2021). A molecular survey on neglected Gurltia paralysans and Aelurostrongylus abstrusus infections in domestic cats (Felis catus) from southern Chile. Pathogens, 10(9), 1195. https://doi.org/10.3390/pathogens10091195
• Gómez, M., García, C., Maldonado, I., Pantchev, N., Taubert, A., Hermosilla, C., Moroni, M., Muñoz, P., Duran, A., Mieres, M., & Ojeda, J. (2020). Intra vitam diagnosis of neglected Gurltia paralysans infections in domestic cats (Felis catus) by a commercial serology test for canine angiostrongylosis and insights into clinical and histopathological findings: four-case report. Pathogens, 9(11), 921. https://doi.org/10.3390/pathogens9110921
• Gómez, M., Muñoz, P., Moroni, M., Mieres, M., Bernal, V., Rosenfeld, C., Taubert, A., & Hermosilla, C. (2024). Paraparesis due to angio-neurotropic Gurltia paralysans in a domestic cat (Felis catus) and retrospective study on feline gurltiosis cases in South America. Frontiers in Veterinary Science, 11, 1322819. https://doi.org/10.3389/fvets.2024.1322819
• Hartung, S., Weyrich, A., Moroni, M., Gómez, M., & Herden, C. (2022). Histological and immunohistochemical characterization of vascular alterations in meninges of cats infected with Gurltia paralysans. Pathogens, 11(1), 88. https://doi.org/10.3390/pathogens11010088
• López-Contreras, F., Rojas-Barón, L., Gómez, M., Morera, F., Sepúlveda, P., Moroni, M., Muñoz, P., Acosta-Jammett, G., Mieres, M., Hirzmann, J., Hermosilla, C., & Taubert, A. (2020). Molecular detection of Gurltia paralysans by semi-nested PCR in cerebrospinal fluid and serum samples from domestic cats (Felis catus). Animals, 10(7), 1169. https://doi.org/10.3390/ani10071169
• Mieres, M., Gómez, M. A., Lillo, C., Rojas, M. A., Moroni, M., Muñoz, P., Acosta-Jamett, G., & Wiegand, R. (2013). Clinical, imaging, and pathologic characteristics of Gurltia paralysans myelopathy in domestic cats from Chile. Veterinary Radiology & Ultrasound, 54(3), 237-244. https://doi.org/10.1111/vru.12026
• Rojas-Barón, L., Taubert, A., Hermosilla, C., Gómez, M., Moroni, M., & Muñoz, P. (2022). Gurltia paralysans: a neglected angio-neurotropic parasite of domestic cats (Felis catus) and free-ranging wild felids (Leopardus spp.) in South America. Pathogens, 11(7), 792. https://doi.org/10.3390/pathogens11070792
• Sepúlveda-García, P., Gómez, M., Moroni, M., Muñoz, P., & Müller, A. (2021). Evaluation of terrestrial gastropods as possible intermediate hosts of Gurltia paralysans in southern Chile. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 30(1), e025020. https://doi.org/10.1590/s1984-296120201087
• Uribe, M., López-Osorio, S., & Chaparro-Gutiérrez, J. J. (2021). The neglected angio-neurotrophic parasite Gurltia paralysans (Nematoda: Angiostrongylidae): northernmost South American distribution, current knowledge, and future perspectives. Pathogens, 10(12), 1601. https://doi.org/10.3390/pathogens10121601