Aelurostrongilosis (gusano pulmonar del gato)

Especies afectadas y susceptibilidad

Aelurostrongylus abstrusus es el gusano pulmonar más frecuente del gato doméstico. También infecta a felinos silvestres (ESCCAP, 2025).

Gatos con salida al exterior. Es un riesgo para todos los gatos que salen con regularidad, y más para los ferales y callejeros (ESCCAP, 2025).

Gatos jóvenes. En 1.058 gatos de Polonia, la infección se asoció con fuerza a la edad joven (Jańczak et al., 2026). Las infecciones intensas son un riesgo serio en animales jóvenes (Dzimira et al., 2025).

El agente

Ciclo (ESCCAP, 2025):

1. Adultos en los bronquiolos respiratorios, los conductos alveolares y los alvéolos. Pueden formar nódulos bajo la pleura de hasta 10 mm.
2. Larvas de primer estadio que suben por las vías respiratorias, se tragan y salen en las heces.
3. Caracoles y babosas como hospedadores intermediarios.
4. Anfibios, reptiles, aves y roedores que comen moluscos infectados y actúan como hospedadores de transporte.
5. El gato se infecta al comer un hospedador de transporte o un molusco, incluso al acicalarse.

El periodo prepatente es de 5 a 6 semanas (ESCCAP, 2025).

Epidemiología en Chile

Gatos urbanos del sur. En 171 gatos urbanos aparentemente sanos, una PCR experimental en sangre detectó A. abstrusus en el 19,9%: 32,4% en Temuco, 10% en Puerto Montt y 4% en Valdivia. Todos los gatos positivos a A. abstrusus tenían también Gurltia paralysans. No se encontraron factores de riesgo asociados (Barrios et al., 2021).

Gatos con gurltiosis. En 5 de 7 gatos con gurltiosis se detectó también A. abstrusus en el suero, sin lesiones respiratorias en la necropsia (López-Contreras et al., 2020).

Visón americano. En 27 visones de Los Ríos y Los Lagos, el 33,3% tenía nematodos pulmonares. Las larvas eran de Aelurostrongylus spp., con 99% de identidad genética con A. abstrusus. Es la primera descripción de la infección en visones de Sudamérica (Saavedra et al., 2026).

Lo que esto implica. El parásito circula en gatos y fauna del sur de Chile. La PCR en sangre es experimental y el estudio no buscó larvas en las heces (Barrios et al., 2021), por lo que no se sabe cuántos de esos gatos eliminaban larvas.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios chilenos con el método de Baermann, ni estudios en gatos con tos o en gatos de la zona central o del norte.

Otros países. En Europa se describen prevalencias de hasta 30% en algunos países (ESCCAP, 2025). En Polonia, el 7,2% de 1.058 gatos tenía A. abstrusus, más en otoño e invierno (Jańczak et al., 2026).

Transmisión y factores de riesgo

Factores de riesgo (ESCCAP, 2025):

• Cazar roedores y aves.
• Comer caracoles o babosas.
• Salir al exterior con regularidad.
• Ser gato feral o callejero.

Signos clínicos

Signos más frecuentes (ESCCAP, 2025):

• Tos y estornudos.
• Respiración rápida, con la boca abierta y con esfuerzo abdominal.
• Secreción nasal mucopurulenta.
• Cansancio.

Formas graves y subclínicas. Hay infecciones sin signos. Los casos graves pueden desarrollar bronquitis y neumonía, y la infección sin tratamiento puede ser mortal (ESCCAP, 2025).

Ecografía pulmonar. En gatos infectados se vieron líneas B difusas y otros signos de menor aireación del pulmón, a menudo sin signos respiratorios graves (Jańczak et al., 2026).

Hallazgos de necropsia

Nódulos bajo la pleura de hasta 10 mm, formados por los adultos (ESCCAP, 2025).

Frecuencia en necropsias. En 420 necropsias de gatos del sur de Polonia se encontraron larvas y huevos de A. abstrusus en 4 (0,95%) (Dzimira et al., 2025).

Histopatología

Larvas de primer estadio y huevos en los alvéolos (Dzimira et al., 2025).

Diagnóstico de laboratorio

Método de Baermann. Detecta las larvas de primer estadio en al menos 10 g de heces frescas. La sensibilidad baja en las infecciones crónicas o repetidas, porque la eliminación de larvas se interrumpe. El número de larvas se relaciona con la gravedad de los cambios en las imágenes (ESCCAP, 2025).

Lavado bronquial. También puede detectar larvas, pero es menos sensible. Conviene usarlo solo si el lavado se hace por otra razón (ESCCAP, 2025). En Polonia, la citología del lavado mostró larvas y huevos en 2 de 310 muestras (Dzimira et al., 2025).

Imágenes. Radiografía o tomografía de tórax cuando se sospecha inflamación pulmonar (ESCCAP, 2025). La ecografía pulmonar sirve para detectar y seguir las lesiones (Jańczak et al., 2026).

Lo que esto implica. Un Baermann negativo en un gato con tos y salida al exterior no descarta la infección. Repetir el examen o tratar y evaluar la respuesta son opciones razonables.

Diagnóstico diferencial

• Dirofilariosis felina, que también causa tos y dificultad respiratoria.
• Asma felina y bronquitis crónica.
• Complejo respiratorio felino, cuando hay estornudos y secreción nasal.
• Otros nematodos pulmonares: Troglostrongylus brevior, más grave y casi siempre mortal en gatitos (ESCCAP, 2025), y Eucoleus aerophilus (Jańczak et al., 2026).

Tratamiento

Opciones. Lactonas macrocíclicas y preparados con emodepsida. Algunos deben repetirse (ESCCAP, 2025).

Respuesta. En gatos polacos tratados con imidacloprid y moxidectina en pipeta, desaparecieron las alteraciones de la ecografía pulmonar y los signos clínicos (Jańczak et al., 2026).

Lo que no se sabe. No se encontraron datos sobre qué productos están registrados en Chile para esta indicación en gatos.

Pronóstico

Bueno con tratamiento en los gatos descritos (Jańczak et al., 2026). Sin tratamiento, la infección puede ser mortal (ESCCAP, 2025).

Prevención

Gatos que cazan en zonas endémicas. ESCCAP recomienda tratarlos todos los meses, todo el año, con lactonas macrocíclicas o emodepsida. La prevención reduce el riesgo de lesiones pulmonares crónicas por infecciones no diagnosticadas (ESCCAP, 2025).

Prevención de larga duración. En 28 gatos infectados en forma experimental, una sola pipeta de fluralaner con moxidectina aplicada hasta 12 semanas antes de la infección redujo en más de 99,9% la eliminación de larvas. Todos los gatos del grupo control tuvieron lesiones pulmonares graves en la tomografía, y los tratados no tuvieron lesiones o las tuvieron leves o moderadas (Raulf et al., 2024). Fuente con participación de industria.

Limitar la caza y el contacto con hospedadores intermediarios y de transporte (Dzimira et al., 2025).

Lo que esto implica. En el sur de Chile, donde el parásito circula y también está Gurltia, el gato que caza es candidato a prevención mensual.

Riesgo zoonótico

No se ha descrito infección en personas.

Referencias

• Barrios, N., Gómez, M., Zanelli, M., Rojas-Barón, L., Sepúlveda-García, P., Alabí, A., Adasme, M., Müller, A., Rosenfeld, C., González-Lagos, C., Taubert, A., & Hermosilla, C. (2021). A molecular survey on neglected Gurltia paralysans and Aelurostrongylus abstrusus infections in domestic cats (Felis catus) from southern Chile. Pathogens, 10(9), 1195. https://doi.org/10.3390/pathogens10091195
• Dzimira, S., Kandefer-Gola, M., Ciaputa, R., & Demkowska-Kutrzepa, M. (2025). Cases of lungworm in cats from southern Poland in the autopsy and cytological material. Pathogens, 14(7), 630. https://doi.org/10.3390/pathogens14070630
• ESCCAP. (2025). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl1/
• Jańczak, D., Moroz-Fik, A., Radziejewska, K., Maj, A. K., Górecki, P., Kędziorek, J., Antecki, M., Pyziel, A. M., & Szaluś-Jordanow, O. (2026). Prevalence of pulmonary nematodes in cats and lung ultrasound findings in separate animal cohorts: a coprological, molecular and clinical study. Animals, 16(4), 622. https://doi.org/10.3390/ani16040622
• López-Contreras, F., Rojas-Barón, L., Gómez, M., Morera, F., Sepúlveda, P., Moroni, M., Muñoz, P., Acosta-Jammett, G., Mieres, M., Hirzmann, J., Hermosilla, C., & Taubert, A. (2020). Molecular detection of Gurltia paralysans by semi-nested PCR in cerebrospinal fluid and serum samples from domestic cats (Felis catus). Animals, 10(7), 1169. https://doi.org/10.3390/ani10071169
• Raulf, M. K., Raue, K., Rohdich, N., Zschiesche, E., Raue, J., Merhof, K., Volk, H. A., Schnyder, M., Morelli, S., Traversa, D., Roepke, R. K. A., & Strube, C. (2024). Efficacy of Bravecto® Plus spot-on solution for cats (280 mg/ml fluralaner and 14 mg/ml moxidectin) in the prevention of feline Aelurostrongylus abstrusus infection evaluated in a multi-diagnostic approach. Parasites & Vectors, 17(1), 193. https://doi.org/10.1186/s13071-024-06270-0
• Saavedra, J., Gómez, M., Muñoz, P., Bernal, V., Aburto, P., Raffo, E., Aristizabal, B., Moroni, M., Paredes, G., Monterroza, A., Arancibia, R., Taubert, A., & Hermosilla, C. (2026). Detection of Aelurostrongylus spp. infection in the neozoan American mink (Neogale vison) in southern Chile. Pathogens, 15(7), 757. https://doi.org/10.3390/pathogens15070757