Anquilostomiasis canina

Especies afectadas y susceptibilidad

Ancylostoma caninum y Uncinaria stenocephala parasitan a perros y zorros (ESCCAP, 2025). Los cachorros son los más afectados por A. caninum, que puede causarles anemia aguda e incluso la muerte (ESCCAP, 2025).

La infección prospera donde los perros tienen acceso a espacios exteriores, como corrales y caniles. Después de la exposición se desarrolla inmunidad, pero no completa (ESCCAP, 2025).

El agente

Los anquilostomas son nematodos pequeños, de 0,5 a 1,5 cm, con una boca grande en ángulo respecto del cuerpo, de donde viene su nombre en inglés, hookworm (ESCCAP, 2025). Los adultos viven en el intestino delgado y se fijan a la mucosa con la boca (ESCCAP, 2025):

• Ancylostoma caninum se alimenta sobre todo de sangre. Es la especie más patógena.
• Uncinaria stenocephala se alimenta sobre todo de componentes del tejido de la superficie intestinal. Es menos patógena y tolera climas más fríos.

Ciclo. Es directo. Los huevos salen con las heces y en el ambiente se desarrollan hasta larvas de tercer estadio, que son las infectantes. Cuando un perro las ingiere, llegan a adultos que ponen huevos en 2 a 4 semanas (ESCCAP, 2025).

Epidemiología en Chile

Parques del Gran Santiago. En 468 heces de perros de 26 parques urbanos, el 1,7% tenía huevos de Ancylostomatidae (Fredes et al., 2026).

Sur de Chile. Según la revisión de Sanhueza Teneo et al. (2025), en perros del Biobío y Los Ríos los parásitos principales fueron helmintos, entre ellos A. caninum y U. stenocephala. En perros de zonas rurales de Los Ríos, U. stenocephala fue uno de los parásitos más frecuentes, junto con Toxocara canis (Sanhueza Teneo et al., 2025).

Lo que esto implica. Por su tolerancia al frío, es esperable que U. stenocephala sea la especie más común en el sur. No se encontraron estudios chilenos que identifiquen la especie en perros de la zona central.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios de resistencia a antihelmínticos en anquilostomas de perros chilenos.

Transmisión y factores de riesgo

Por vía oral. Al ingerir larvas infectantes del ambiente (ESCCAP, 2025).

Por la piel. Las larvas pueden penetrar la piel y llegar al intestino. Esta vía es más importante en Ancylostoma; en U. stenocephala es posible, pero menos frecuente (ESCCAP, 2025).

Por la leche. A. caninum pasa de la perra en lactancia a los cachorros con la leche. U. stenocephala no se transmite por esta vía (ESCCAP, 2025).

Por hospedadores paraténicos. A. caninum también se adquiere al comer larvas en tejidos de otros animales (ESCCAP, 2025).

Periodo prepatente (ESCCAP, 2025):

• A. caninum: 2 a 3 semanas. La eliminación de huevos dura unos 6 meses, y puede alargarse de 7 meses a 2 años según el estado inmune.
• U. stenocephala: 3 a 4 semanas. La eliminación dura 4 a 6 meses.

Factores de riesgo:

• Ser cachorro de una perra infectada, en el caso de A. caninum (ESCCAP, 2025).
• Vivir en criaderos o refugios, con alta presión de infección (ESCCAP, 2025; Raza et al., 2018).
• Acceso a patios, corrales o caniles de tierra (ESCCAP, 2025).

Signos clínicos

Ancylostoma caninum. Signos agudos o crónicos: diarrea, a veces con sangre, pérdida de peso y anemia. La anemia puede ser importante con cargas altas o infecciones largas. Por la transmisión con la leche, los cachorros jóvenes pueden tener anemia aguda e incluso morir (ESCCAP, 2025).

Uncinaria stenocephala. Los signos son raros. En casos aislados se describen diarrea, pérdida de proteínas, pérdida de peso y anemia (ESCCAP, 2025).

Piel. Las larvas que penetran la piel pueden causar lesiones en las almohadillas plantares (ESCCAP, 2025).

Infecciones que no responden. En perros con A. caninum que no responden al tratamiento, la anemia y la caquexia pueden ser los signos principales (Sönmez et al., 2025).

Hallazgos de necropsia

No se encontraron series de necropsias de perros chilenos. En cachorros con infecciones intensas por A. caninum, los hallazgos esperables son palidez de mucosas y órganos por la anemia, gusanos adultos fijos a la mucosa del intestino delgado, puntos hemorrágicos en los sitios de fijación y contenido intestinal con sangre.

Histopatología

Las lesiones esperables en el intestino son erosiones de la mucosa en los sitios de fijación, con hemorragia e infiltrado inflamatorio con eosinófilos en la lámina propia.

Diagnóstico de laboratorio

Coprológico. Los huevos se detectan por flotación en heces frescas o fijadas. Los huevos de Ancylostoma y Uncinaria son iguales al microscopio (ESCCAP, 2025).

Coproantígeno. Hay un ELISA que detecta antígeno de anquilostomas en las heces y que suele ser positivo antes de que se eliminen huevos (ESCCAP, 2025).

Cachorros jóvenes. El diagnóstico se complica porque los signos pueden aparecer antes de que la infección sea patente, es decir, antes de que salgan huevos en las heces. En ese periodo el coproantígeno puede ser positivo (ESCCAP, 2025).

Hemograma. Para medir la anemia, que guía la necesidad de soporte.

Diagnóstico diferencial

• Parvovirosis, en cachorros con diarrea con sangre.
• Coccidiosis y giardiasis, en cachorros con diarrea.
• Toxocariasis, que también afecta a cachorros desde el nacimiento.
• Trichuriasis, que causa diarrea con sangre y anemia en infecciones intensas (ESCCAP, 2025).
• Otras causas de anemia, como las hemoparasitosis y las pérdidas de sangre digestivas por otras causas.

Tratamiento

Antihelmínticos. Siempre que se detectan anquilostomas se debe tratar. Hay que elegir un fármaco con eficacia suficiente contra la especie presente, porque la eficacia varía entre principios activos (ESCCAP, 2025). En la guía para refugios de Raza et al. (2018), el fenbendazol a 50 mg/kg cada 24 horas por 3 días es una de las opciones al ingreso, y se describe que elimina entre 99% y 100% de las infecciones por anquilostomas entre 9 y 16 días después del tratamiento.

Soporte. Los cachorros afectados pueden necesitar tratamiento de soporte además del antihelmíntico (ESCCAP, 2025), como transfusión en anemias graves.

Resistencia. En Europa casi no hay casos comprobados de resistencia a antihelmínticos en nematodos de perros. En Estados Unidos y Australia, en cambio, hay estudios que muestran poblaciones de A. caninum resistentes. En Estados Unidos aparecieron en galgos mantenidos en grupo, tratados con frecuencia y a veces con dosis insuficientes, y también en otras razas (ESCCAP, 2025). Se han descrito aislados resistentes a benzimidazoles, lactonas macrocíclicas y pirantel, y la mutación F167Y del gen de la β-tubulina asociada a la resistencia a benzimidazoles está ampliamente distribuida en ese país (Sönmez et al., 2025).

Lo que esto implica. En criaderos y refugios conviene hacer coprológicos después de desparasitar para confirmar que el tratamiento funcionó, como recomienda ESCCAP para poblaciones grandes de perros (ESCCAP, 2025). Esto cobra más importancia en perros importados desde Estados Unidos.

Pronóstico

Bueno en perros adultos tratados. Reservado en cachorros con anemia grave, sobre todo en los primeros días de vida.

Prevención

• Desparasitar en forma regular a los cachorros y perros jóvenes de criaderos, donde la presión de infección es alta (ESCCAP, 2025).
• Retirar a los perros de los ambientes contaminados mientras se descontaminan (ESCCAP, 2025).
• Recoger las heces todos los días, antes de que los huevos den larvas infectantes.
• Pisos de baja porosidad en caniles y criaderos, fáciles de limpiar (Grellet y Mila, 2024).

Lo que esto implica. Un esquema de desparasitación de cachorros con un producto eficaz contra Toxocara y anquilostomas sirve para controlar ambos parásitos.

Riesgo zoonótico

A. caninum causa en las personas larva migrans cutánea: las larvas que entran por la piel forman túneles en la epidermis durante semanas o meses, con mucho prurito, pero no completan su desarrollo (Sönmez et al., 2025).

En Chile se publicó en 2026 el caso de una adolescente de 17 años con lesiones serpenteantes y pruriginosas después de un viaje a Brasil, que se resolvieron con ivermectina oral. El reporte destaca que los casos adquiridos en Chile son escasos (Guarda et al., 2026).

Lo que esto implica. El riesgo se concentra en playas y suelos arenosos o húmedos con heces de perros. Recoger las heces y desparasitar a los perros reduce la contaminación de esos lugares.

Referencias

• ESCCAP. (2025). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl1/
• Fredes, B., Alegría-Morán, R., Riquelme, M., Briceño, C., Cabrera, G., Fredes, F., & Ramírez-Toloza, G. (2026). Spatial distribution and cluster detection of zoonotic dog endoparasites in public parks from Gran Santiago, Chile. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, 73, 101532. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2026.101532
• Grellet, A., & Mila, H. (2024). Endoparasitic diseases in breeding kennels: a frequent and complex problem requiring a holistic approach. Animals, 14(16), 2357. https://doi.org/10.3390/ani14162357
• Guarda, D., Norambuena, C., Marquez, P., Bascuñan, G., & Mendez-Villanueva, D. I. (2026). Imported cutaneous larva migrans in an adolescent traveler: a case report from Chile. Cureus, 18(3), e104834. https://doi.org/10.7759/cureus.104834
• Raza, A., Rand, J., Qamar, A. G., Jabbar, A., & Kopp, S. (2018). Gastrointestinal parasites in shelter dogs: occurrence, pathology, treatment and risk to shelter workers. Animals, 8(7), 108. https://doi.org/10.3390/ani8070108
• Sanhueza Teneo, D., Venegas, T., Videla, F., Chesnais, C. B., Loncoman, C., & Valenzuela-Nieto, G. (2025). Prevalence and genetic diversity of parasites in humans and pet dogs in rural areas of Los Ríos Region, southern Chile. Pathogens, 14(2), 186. https://doi.org/10.3390/pathogens14020186
• Sönmez, H. İ., Madak, E., Karaer, M. C., & Sarımehmetoğlu, H. O. (2025). Anthelmintic resistance in Ancylostoma caninum: a comprehensive review. Veterinary Medicine and Science, 11(4), e70434. https://doi.org/10.1002/vms3.70434