Leucosis bovina enzoótica

Especies afectadas y susceptibilidad

Afecta a los bovinos, que pueden infectarse a cualquier edad, incluso en la etapa embrionaria (OMSA, 2018).

Cómo evoluciona la infección (OMSA, 2018):

• La mayoría: infección sin signos, con anticuerpos de por vida.
• Entre 30% y 70%: linfocitosis persistente, un aumento sostenido de linfocitos B en la sangre.
• Entre 0,1% y 10%: linfosarcoma, por lo general en animales de más de 3 años.

Leucosis esporádica. Las formas juvenil (del ternero), tímica y cutánea del linfoma bovino no las causa el BLV, y su causa se desconoce (OMSA, 2018).

El agente

El virus de la leucemia bovina es un retrovirus del género Deltaretrovirus, emparentado con los virus linfotrópicos T humanos (Polat et al., 2016). Se integra en el ADN de los linfocitos B del animal y la infección dura toda la vida (OMSA, 2018).

Genotipos. En Sudamérica circulan al menos siete genotipos del BLV (Polat et al., 2016). En leche de estanque de lecherías del sur de Chile se identificaron dos subgrupos, distintos de los de países vecinos (Felmer et al., 2005).

Epidemiología en Chile

Estatus oficial. El informe del SAG de 2023 la clasificaba como ausente (SAG, 2024). En el de 2024 aparece como presente, con vigilancia pasiva y activa (SAG, 2025).

Lecherías del sur. En 75 lecherías de Los Ríos y Los Lagos muestreadas en 2007, el 34,7% de los rebaños tenía al menos un animal positivo. La proporción subía con el tamaño: 23,9% de los rebaños pequeños, 43,5% de los medianos y 83,3% de los grandes. Dentro del rebaño, la prevalencia promedio fue de 5,3%, con 30,1% en los rebaños grandes (Grau y Monti, 2010).

Contagio en curso. En lecherías de Los Ríos y Los Lagos, la incidencia fue de 1,16 casos nuevos por cada 100 vacas-mes en riesgo, y de 0,64 en animales jóvenes. Las prácticas asociadas a los contagios fueron la palpación rectal, la inseminación artificial y las inyecciones (Benavides y Monti, 2022).

Comparación regional. En muestras de Chile se encontró hasta 29,1% de bovinos infectados, menos que en Argentina, donde llegó a 77,4% (Polat et al., 2016).

Predios libres. En 2024 había 1.621 predios bovinos certificados libres de leucosis, entre Valparaíso y Aysén; 868 en Los Lagos y 623 en Los Ríos (SAG, 2025).

Lo que esto implica. Los datos de prevalencia en rebaños tienen casi dos décadas, pero muestran el patrón que importa: la infección se concentra en las lecherías grandes del sur y se transmite con el manejo diario.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios publicados de prevalencia nacional posteriores a 2010, ni datos sobre la infección en predios de carne o sobre las pérdidas productivas en Chile. El informe del SAG no explica el cambio de estatus de ausente a presente entre 2023 y 2024.

Transmisión y factores de riesgo

El virus se transmite por la transferencia de linfocitos infectados, sobre todo a través de la sangre (OMSA, 2018).

Vías (OMSA, 2018):

• Iatrogénica: agujas, instrumental quirúrgico y guantes de palpación rectal contaminados con sangre.
• En el parto, por contacto con sangre.
• Insectos hematófagos, que pueden transmitirlo en forma mecánica donde abundan.
• Calostro, leche y semen: contienen antígeno y ADN viral, pero la transmisión natural por esas vías no está demostrada con claridad.

Los más contagiosos. En lecherías chilenas, las vacas con linfocitosis persistente tuvieron un número reproductivo básico de 60,4, frente a 1,5 en las infectadas sin linfocitosis. La tasa esperada de casos nuevos fue 73,9 veces mayor (Benavides y Monti, 2024).

Factores de riesgo en Chile (Benavides y Monti, 2022; Grau y Monti, 2010):

• Palpación rectal, inseminación artificial e inyecciones sin cambio de guante o aguja.
• Rebaños de mayor tamaño.

Signos clínicos

La mayoría de los animales infectados no tiene signos (OMSA, 2018).

Linfocitosis persistente. Se detecta en un hemograma; no causa signos (OMSA, 2018).

Linfosarcoma (OMSA, 2018):

• Aparece por lo general después de los 3 años.
• Aumento de tamaño de los linfonódulos superficiales.
• Los signos dependen del órgano afectado: digestivos si es el abomaso, cardíacos si es el corazón.

Efecto en la producción. En 3.611 vacas de 91 lecherías de Estados Unidos, las positivas tuvieron 30% más probabilidad de morir o ser eliminadas durante el seguimiento que sus compañeras negativas (Benitez et al., 2022). El BLV también altera la inmunidad, lo que se asocia a menor producción de leche y vida productiva más corta (Bartlett et al., 2020).

Hallazgos de necropsia

Los órganos con tumores más frecuentes son el abomaso y la aurícula derecha del corazón, seguidos del bazo, el intestino, el hígado, el riñón, el omaso, el pulmón y el útero. Los linfonódulos pueden estar muy aumentados (OMSA, 2018).

En cuatro vacas con linfosarcoma por BLV de China, los tumores estaban en linfonódulos pulmonares y mesentéricos, en el intestino, en la superficie del pulmón y en el tórax (Yu et al., 2026).

Histopatología

El tumor es un linfoma de células B (Okagawa et al., 2022). En los cuatro casos de China, la histopatología mostró proliferación de células tumorales con figuras mitóticas en los linfonódulos y en la masa pulmonar (Yu et al., 2026).

Clonalidad. El análisis de clonalidad de las células infectadas por BLV en sangre o en tumor ayuda a distinguir el linfoma de la infección sin tumor (Okagawa et al., 2022).

Diagnóstico de laboratorio

Serología (OMSA, 2018):

• ELISA en suero o leche: más sensible que la inmunodifusión en gel de agar (IDGA). Puede requerir kits distintos para suero y leche.
• IDGA: específica, pero poco sensible; no sirve en leche, salvo en el primer calostro.
• Anticuerpos maternos: pueden durar 6 a 7 meses en el ternero. La serología sola no distingue esos anticuerpos de una infección.

PCR (OMSA, 2018): detecta el provirus en linfocitos de sangre o en tejido tumoral. Se usa sobre todo para confirmar.

Carga proviral y hemograma. El recuento de leucocitos se correlaciona con la carga proviral y sirve para identificar a las vacas más contagiosas donde la PCR no está disponible o no es rentable (Benavides y Monti, 2024). El tamizaje con ELISA seguido de PCR cuantitativa ayuda a priorizar qué animales separar o eliminar (Bartlett et al., 2020).

Diagnóstico diferencial

• Leucosis esporádica (juvenil, tímica y cutánea), que no causa el BLV (OMSA, 2018).
• Tuberculosis bovina, ante linfonódulos aumentados en faena.

Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de los órganos afectados: un linfosarcoma del abomaso puede parecer una úlcera o una obstrucción, y uno del corazón, una insuficiencia cardíaca de otro origen. La histopatología los distingue.

Tratamiento

No hay tratamiento. Los animales con linfosarcoma se eliminan.

Pronóstico

Infección sin tumor: el animal vive y produce, pero es portador de por vida y tiene más riesgo de ser eliminado antes (Benitez et al., 2022).

Linfosarcoma: mortal (OMSA, 2018).

Prevención

Cortar la transmisión por sangre (OMSA, 2018; Benavides y Monti, 2022):

• Una aguja por animal.
• Un guante de palpación por animal.
• Limpieza y desinfección del instrumental entre animales.

Pruebas y eliminación. La serología fue la base de la erradicación en muchos países (OMSA, 2018). Más de 20 países han erradicado la enfermedad (Bartlett et al., 2020).

Cuando la prevalencia es alta. Eliminar a todos los positivos puede no ser viable. En ese caso se priorizan los más contagiosos: vacas con linfocitosis persistente o alta carga proviral (Benavides y Monti, 2024; Bartlett et al., 2020).

Certificación de predio libre. El SAG certifica predios libres de leucosis, en general junto con brucelosis y tuberculosis bovina (SAG, 2025).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: en un rebaño grande con prevalencia alta, cambiar agujas y guantes entre animales es la medida más barata y la que más contagios evita; las pruebas permiten después decidir a quién separar.

Riesgo zoonótico

No se considera zoonosis. Varios estudios han propuesto una relación entre el BLV y el cáncer de mama humano. Es una línea de investigación abierta y la asociación no está demostrada (Bartlett et al., 2020).

Notificación. Es enfermedad de denuncia obligatoria al SAG (SAG, 2025).

Referencias

• Bartlett, P. C., Ruggiero, V. J., Hutchinson, H. C., Droscha, C. J., Norby, B., Sporer, K. R. B., & Taxis, T. M. (2020). Current developments in the epidemiology and control of enzootic bovine leukosis as caused by bovine leukemia virus. Pathogens, 9(12), 1058. https://doi.org/10.3390/pathogens9121058
• Benavides, B., & Monti, G. (2022). Assessment of natural transmission of bovine leukemia virus in dairies from southern Chile. Animals, 12(13), 1734. https://doi.org/10.3390/ani12131734
• Benavides, B., & Monti, G. (2024). Bovine leukemia virus transmission rates in persistent lymphocytotic infected dairy cows. Frontiers in Veterinary Science, 11, 1367810. https://doi.org/10.3389/fvets.2024.1367810
• Benitez, O. J., LaDronka, R. M., Norby, B., Grooms, D. L., & Bartlett, P. C. (2022). The effect of bovine leukemia virus on dairy cow longevity. JDS Communications, 3(3), 185-188. https://doi.org/10.3168/jdsc.2021-0187
• Felmer, R., Muñoz, G., Zúñiga, J., & Recabal, M. (2005). Molecular analysis of a 444 bp fragment of the bovine leukaemia virus gp51 env gene reveals a high frequency of non-silent point mutations and suggests the presence of two subgroups of BLV in Chile. Veterinary Microbiology, 108(1-2), 39-47. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2005.04.005
• Grau, M. A., & Monti, G. (2010). Prevalencia serológica predial e intrapredial para el virus de la leucosis bovina (VLB) en lecherías de las regiones de Los Ríos y de Los Lagos de Chile. Archivos de Medicina Veterinaria, 42(2), 87-91. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2010000200010
• Okagawa, T., Shimakura, H., Konnai, S., Saito, M., Matsudaira, T., Nao, N., Yamada, S., Murakami, K., Maekawa, N., Murata, S., & Ohashi, K. (2022). Diagnosis and early prediction of lymphoma using high-throughput clonality analysis of bovine leukemia virus-infected cells. Microbiology Spectrum, 10(6), e02595-22. https://doi.org/10.1128/spectrum.02595-22
• Organización Mundial de Sanidad Animal. (2018). Enzootic bovine leukosis. En Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (cap. 3.4.9). https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.04.09_EBL.pdf
• Polat, M., Takeshima, S. N., Hosomichi, K., Kim, J., Miyasaka, T., Yamada, K., Arainga, M., Murakami, T., Matsumoto, Y., de la Barra Diaz, V., Panei, C. J., González, E. T., Kanemaki, M., Onuma, M., Giovambattista, G., & Aida, Y. (2016). A new genotype of bovine leukemia virus in South America identified by NGS-based whole genome sequencing and molecular evolutionary genetic analysis. Retrovirology, 13, 4. https://doi.org/10.1186/s12977-016-0239-z
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• Yu, R., Zhang, S., Xiang, Z., Wan, L., Marawan, M. A., Chen, J., Guo, A., & Chen, Y. (2026). Bovine leukemia virus: global prevalence and localized resurgence in China revealed by an integrated meta-analysis and case series. Transboundary and Emerging Diseases, 2026, 2598815. https://doi.org/10.1155/tbed/2598815