Micoplasmosis hemotrópica felina

Especies afectadas y susceptibilidad

Los hemoplasmas son causa de anemia infecciosa en gatos. Las tres especies más comunes son Mycoplasma haemofelis, Candidatus Mycoplasma haemominutum y Candidatus Mycoplasma turicensis (Preldžić et al., 2026).

Gatos jóvenes y gatos mayores (Preldžić et al., 2026):

• Los gatos jóvenes tienden a tener signos más evidentes, por su sistema inmune sin experiencia y por M. haemofelis, la especie más patógena.
• En los gatos mayores, la infección suele ser subclínica, y Ca. M. haemominutum es la especie más frecuente.

Gatos con retrovirus. Las especies Candidatus causan enfermedad sobre todo junto a otros agentes o a la inmunodeficiencia por FIV, y con menos frecuencia FeLV (Preldžić et al., 2026). Ver inmunodeficiencia felina y leucemia felina.

Güiñas. En Chile, la güiña (Leopardus guigna) tiene una prevalencia mayor que los gatos domésticos rurales (Sacristán et al., 2019).

El agente

Los hemoplasmas son bacterias que viven adheridas a la superficie de los glóbulos rojos (Preldžić et al., 2026).

Diferencias entre especies (Preldžić et al., 2026):

• M. haemofelis es la más patógena. Puede causar una anemia hemolítica mortal en la infección aguda, incluso sin otras enfermedades. La infección crónica suele ser leve, a veces sin anemia evidente.
• Las especies Candidatus son en general menos patógenas. Ca. M. haemominutum sola también puede causar anemia, y junto a FeLV se ha asociado a trastornos mieloproliferativos.

Epidemiología en Chile

Valdivia. Primer estudio en gatos chilenos: en 384 gatos se detectó Ca. M. haemominutum en el 7,8%, M. haemofelis en el 4,4% y Ca. M. turicensis en el 1%, además de coinfecciones. Se describieron por primera vez en gatos chilenos Ca. M. turicensis y Ca. M. haematoparvum, un hemoplasma del perro (Walker Vergara et al., 2016).

Gatos rurales y güiñas. En 262 gatos domésticos rurales y 102 güiñas de toda el área de distribución de la güiña en Chile, el 15,3% de los gatos y el 23,5% de las güiñas tenía hemoplasmas. Las especies más frecuentes fueron Ca. M. haemominutum (10,3% de los gatos y 15,7% de las güiñas) y M. haemofelis (6,1% y 9,8%). La infección se encontró en todas las zonas bioclimáticas (Sacristán et al., 2019).

Gatos y güiñas comparten poco. Los tipos genéticos compartidos entre gatos y güiñas fueron raros. El contagio entre especies puede ocurrir, pero sería poco común, y el gato doméstico no parece ser la fuente principal de la infección en las güiñas (Sacristán et al., 2019).

Lo que esto implica. En un gato chileno, una PCR positiva es un hallazgo frecuente y debe interpretarse junto con el hemograma, el estado retroviral y los signos.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios chilenos en gatos urbanos de consulta, en donantes de sangre ni series de casos de gatos con anemia por hemoplasmas.

Transmisión y factores de riesgo

Peleas. Inocular por vía subcutánea sangre infectada con Ca. M. turicensis transmitió la infección en condiciones de laboratorio; la saliva no lo hizo. Si esta vía es común, la transmisión por agresiones sería más probable que por contacto social (Sacristán et al., 2019).

Pulgas. Su papel es dudoso. Una revisión sistemática y metaanálisis de 13 estudios encontró que las cifras altas de hemoplasmas en pulgas del gato se debían a una PCR poco específica. Al secuenciar, solo el 3% de las muestras tenía hemoplasma; el resto era Spiroplasma u otras bacterias. La infección de la pulga por hemoplasmas sería rara (Moore et al., 2024). En Chile, solo 7 de 125 gatos rurales tenían pulgas, y la prevalencia de hemoplasmas no fue distinta entre gatos con y sin pulgas (Sacristán et al., 2019).

Transfusiones. Los hemoplasmas pueden transmitirse por transfusión de sangre. En 4.121 gatos donantes de Portugal, España y Bélgica, el 5,2% tenía una qPCR positiva (Roels et al., 2024).

Factores de riesgo:

• Ser macho (Walker Vergara et al., 2016; Roels et al., 2024).
• Mayor edad (Walker Vergara et al., 2016; Li et al., 2026).
• Salir al exterior (Walker Vergara et al., 2016).
• FIV (Walker Vergara et al., 2016; Li et al., 2026).
• FeLV (Roels et al., 2024).

Signos clínicos

Anemia hemolítica. El cuadro principal es una anemia hemolítica moderada a grave, con mucosas pálidas. La hemólisis puede ser extravascular o intravascular (Preldžić et al., 2026).

Caso típico. Una gata de 17 años con FIV y una infestación grave por pulgas llegó débil y decaída, con fiebre, taquicardia, taquipnea y mucosas muy pálidas. Tenía una anemia grave no regenerativa y linfopenia leve, y la PCR confirmó Ca. M. haemominutum (Preldžić et al., 2026).

Sin anemia evidente. En Lisboa, de 134 gatos de un hospital estudiados por serología, el 23,8% tenía anticuerpos IgM. No se encontró relación con la anemia ni con los ectoparásitos; los gatos positivos tendían a tener anisocitosis y linfonodos aumentados (Li et al., 2026).

Hallazgos de necropsia

No se encontraron estudios de necropsia en gatos con micoplasmosis hemotrópica.

Lo que esto implica. En los casos graves, los hallazgos esperables son los de una anemia hemolítica: palidez, ictericia y esplenomegalia.

Histopatología

No se encontraron estudios de histopatología en gatos con micoplasmosis hemotrópica.

Diagnóstico de laboratorio

Frotis de sangre. Es poco sensible. M. haemofelis es la especie que más se ve en el frotis, seguida de Ca. M. haemominutum, porque la cantidad de bacterias en la sangre varía rápido. Ca. M. turicensis casi nunca se ve, por su baja carga (Preldžić et al., 2026).

El frotis puede confundir la especie. En el caso de la gata de 17 años, el frotis sugería M. haemofelis y la PCR identificó Ca. M. haemominutum (Preldžić et al., 2026).

PCR. Confirma la infección e identifica la especie (Preldžić et al., 2026). La qPCR es la prueba usada para estudiar a los donantes de sangre (Roels et al., 2024).

Hemograma. En Valdivia, los gatos con M. haemofelis tenían un volumen corpuscular medio y un recuento de monocitos más altos (Walker Vergara et al., 2016). Son frecuentes la leucopenia, con linfopenia, y a veces la monocitosis (Preldžić et al., 2026).

Serología. Algunos hospitales usan anticuerpos IgM para identificar infecciones recientes (Li et al., 2026).

Lo que no se sabe. No se encontraron datos sobre qué pruebas para hemoplasmas están disponibles en laboratorios veterinarios de Chile.

Diagnóstico diferencial

• Anemia hemolítica inmunomediada primaria.
• Leucemia felina, que causa anemia no regenerativa y además se asocia a los hemoplasmas.
• Inmunodeficiencia felina.
• Anemia por pulgas, en gatitos o gatos debilitados con infestaciones grandes (ver pulgas en gatos).
• Bartonelosis, otra infección de la sangre frecuente en gatos chilenos.

Tratamiento

Antibióticos (Preldžić et al., 2026):

• Doxiciclina o fluoroquinolonas por al menos 28 días, para resolver los signos y eliminar la bacteriemia.
• La doxiciclina es más eficaz contra M. haemofelis y Ca. M. turicensis.
• Para Ca. M. haemominutum se prefieren pradofloxacino o marbofloxacino.
• La enrofloxacina es eficaz contra M. haemofelis, pero se recomienda menos por casos raros de toxicidad retiniana y ceguera aguda.
• Si un antibiótico solo no funciona, se puede considerar una combinación.

Corticoides. En Lisboa, los gatos anémicos que necesitaron corticoides tuvieron menos probabilidad de una buena evolución (Li et al., 2026). El estudio no permite saber si el corticoide empeora el cuadro o si marca a los gatos más graves.

Pulgas y transfusión. En la gata de 17 años se trataron primero las pulgas. Se indicó una transfusión si empeoraba, que no fue necesaria (Preldžić et al., 2026).

Pronóstico

Respuesta al tratamiento. La gata de 17 años mejoró mucho en la primera semana y su hemograma volvió a valores normales al terminar los 28 días de antibiótico (Preldžić et al., 2026).

Portadores. Las infecciones crónicas suelen ser leves y pueden reactivarse, por lo que se recomienda seguir a los gatos positivos (Preldžić et al., 2026; Li et al., 2026).

Prevención

• Estudiar a los donantes de sangre con qPCR en cada donación (Roels et al., 2024).
• Limitar las salidas al exterior (Walker Vergara et al., 2016) y las peleas, una vía probable de contagio (Sacristán et al., 2019).
• Controlar FIV y FeLV, que aumentan el riesgo (Walker Vergara et al., 2016; Roels et al., 2024).
• Controlar las pulgas, aunque su papel en la transmisión es dudoso (Moore et al., 2024).

Riesgo zoonótico

No se considera una zoonosis. Los hemoplasmas del perro se tratan en la ficha de micoplasmosis hemotrópica canina.

Referencias

• Li, W., Reisinho, A. T. S. C., & Carvalho, L. M. M. (2026). Feline haemotropic Mycoplasma spp. in Portugal: association with identifiable risk factors, clinical parameters and prognostic factors. Companion Animal Health and Genetics, 13(1), 9. https://doi.org/10.1186/s40575-026-00157-2
• Moore, C. O., Lashnits, E., Lappin, M., Hawley, J., & Breitschwerdt, E. B. (2024). A case of mistaken identity: a systematic review, meta-analysis, and reinvestigation of hemotropic Mycoplasma spp. infection in Ctenocephalides felis (cat flea). Parasites & Vectors, 17(1), 209. https://doi.org/10.1186/s13071-024-06292-8
• Preldžić, D., Maksimović, Z., Rifatbegović, M., & Čamo, D. (2026). First PCR-confirmed case of feline hemoplasmosis in Bosnia and Herzegovina with a long-term follow-up. Veterinary Sciences, 13(5), 410. https://doi.org/10.3390/vetsci13050410
• Roels, E., Debie, C., Giraud, S., Ferreira, R., & Gommeren, K. (2024). Prevalence of Hemoplasma spp. positivity in potential feline blood donors and study of the association with selected clinical variables. Journal of Veterinary Internal Medicine, 38(4), 2151-2157. https://doi.org/10.1111/jvim.17119
• Sacristán, I., Acuña, F., Aguilar, E., García, S., López, M. J., Cevidanes, A., Cabello, J., Hidalgo-Hermoso, E., Johnson, W. E., Poulin, E., Millán, J., & Napolitano, C. (2019). Assessing cross-species transmission of hemoplasmas at the wild-domestic felid interface in Chile using genetic and landscape variables analysis. Scientific Reports, 9(1), 16816. https://doi.org/10.1038/s41598-019-53184-4
• Walker Vergara, R., Morera Galleguillos, F., Gómez Jaramillo, M., Pereira Almosny, N. R., Arauna Martínez, P., Grob Behne, P., Acosta-Jamett, G., & Müller, A. (2016). Prevalence, risk factor analysis, and hematological findings of hemoplasma infection in domestic cats from Valdivia, Southern Chile. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases, 46, 20-26. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2016.03.004