Babesiosis canina

Especies afectadas y susceptibilidad

Ocho especies de Babesia infectan a los perros. Se dividen por su tamaño en el frotis: las grandes (B. canis, B. rossi y B. vogeli) y las pequeñas, como B. gibsoni (Zygner et al., 2023).

B. vogeli. Es la especie más extendida en Sudamérica (Castro Rojas et al., 2025). En adultos la infección puede ser leve o sin signos, pero en cachorros puede causar anemia grave (Zygner et al., 2023). Se describe en cachorros o en perros adultos y mayores con otras enfermedades (Solano-Gallego et al., 2016).

El agente

B. vogeli es un protozoo que vive dentro de los glóbulos rojos. Por su morfología idéntica, se consideró una subespecie de B. canis, pero hoy es una especie distinta por su cuadro clínico, su distribución y su vector (Solano-Gallego et al., 2016).

Vector. La transmite la garrapata café del perro, del grupo Rhipicephalus sanguineus. En Sudamérica están presentes tanto el linaje tropical como el templado de esta garrapata (Zygner et al., 2023).

Epidemiología en Chile

Coquimbo. En 63 perros rurales de libre tránsito, estudiados en dos campañas separadas por un año, la secuenciación confirmó B. vogeli en el 6,3%, con casos positivos ambos años. Los perros infectados no tenían signos clínicos ni otras alteraciones del hemograma que trombocitopenia. Es el primer piroplasma canino descrito en Chile (Di Cataldo et al., 2020).

Región Metropolitana. En 111 perros rurales de libre tránsito, ninguno tuvo piroplasmas (Cevidanes et al., 2023).

Lo que esto implica. Coquimbo está dentro de la zona donde predomina el linaje templado de la garrapata café (Díaz et al., 2018). La presencia de B. vogeli allí sugiere que el linaje templado podría participar en su transmisión en Chile, aunque esto no se ha estudiado.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios sobre la distribución de B. vogeli en el resto del país, ni series de casos clínicos de babesiosis en perros chilenos.

Transmisión y factores de riesgo

Garrapatas. Es la vía principal. Ver garrapatas en perros.

Transfusiones. Se ha demostrado la transmisión de Babesia por transfusión, incluso desde donantes que parecían sanos (Solano-Gallego et al., 2016).

Factores de riesgo:

• Infestación por garrapatas y vivir en zonas donde circula el parásito (Zygner et al., 2023).
• Ser cachorro, para la enfermedad grave por B. vogeli (Zygner et al., 2023).
• Otras enfermedades concurrentes en adultos y perros mayores (Solano-Gallego et al., 2016).

Signos clínicos

Comunes a todas las Babesia. Fiebre, decaimiento, anorexia, mucosas pálidas, debilidad, pulso saltón, ictericia, orina oscura, trombocitopenia leve a grave y anemia hemolítica regenerativa, con bilirrubinemia, bilirrubinuria y hemoglobinuria (Solano-Gallego et al., 2016).

B. vogeli. Cuadro leve a moderado, agudo o crónico, con anemia hemolítica inmunomediada regenerativa, anemia no regenerativa y leucocitosis o leucopenia (Solano-Gallego et al., 2016). En Paraguay, todos los perros con B. vogeli tuvieron trombocitopenia, y algunos anemia normocítica normocrómica, monocitosis y eosinopenia (Castro Rojas et al., 2025).

Hallazgos de necropsia

No se encontraron necropsias de perros chilenos. En casos graves, los hallazgos esperables son los de anemia hemolítica: palidez o ictericia, esplenomegalia y orina oscura en la vejiga.

Histopatología

No se encontraron estudios en perros chilenos. Los hallazgos esperables son eritrofagocitosis en el bazo y el hígado, y glóbulos rojos parasitados en los vasos de distintos órganos.

Diagnóstico de laboratorio

Frotis de sangre. Es el primer paso y el más accesible. Es muy específico, pero menos sensible que la PCR, y con B. vogeli el parásito se ve con menos frecuencia que con B. canis. La sangre capilar de la oreja o la uña muestra más parásitos. El frotis detecta parasitemias desde 0,5% (Solano-Gallego et al., 2016).

PCR. Para B. vogeli es el método más apropiado. Un frotis negativo se reevalúa con PCR de sangre, y la especie solo se identifica con PCR y secuenciación (Solano-Gallego et al., 2016).

Serología (IFI o ELISA). Indica exposición, pasada o actual, y no la especie: hay reacción cruzada entre las Babesia grandes. En la infección aguda puede ser negativa, porque los anticuerpos tardan 3 a 4 semanas; repetir la serología a las 4 a 8 semanas confirma la infección (Solano-Gallego et al., 2016).

Diagnóstico diferencial

• Anaplasmosis, otra causa de trombocitopenia en perros con garrapatas.
• Ehrliquiosis, en el norte del país.
• Micoplasmosis hemotrópica, otra causa de anemia hemolítica.
• Anemia hemolítica inmunomediada primaria.
• Leptospirosis, en perros con fiebre e ictericia.

Tratamiento

Dipropionato de imidocarb. Es el tratamiento de elección para las Babesia grandes, incluida B. vogeli: una dosis de 6,6 mg/kg IM o SC. Hay quienes sugieren una segunda dosis a los 15 días, aunque si el perro no responde conviene reconsiderar el diagnóstico (Solano-Gallego et al., 2016).

Efectos adversos. Dolor en el sitio de inyección y signos colinérgicos (anorexia, salivación, lagrimeo, dolor abdominal, vómitos y diarrea), que suelen pasar rápido y pueden reducirse con atropina o glicopirrolato. La sobredosis es nefrotóxica (Solano-Gallego et al., 2016).

Doxiciclina. No es el tratamiento de elección; su eficacia frente a las Babesia grandes es baja (Solano-Gallego et al., 2016).

Pronóstico

Bueno para B. vogeli (Solano-Gallego et al., 2016). La mayoría de los perros con Babesia grandes mejora entre 1 y 7 días después del tratamiento, y suele recuperarse por completo (Solano-Gallego et al., 2016).

Prevención

• Control de garrapatas, la mejor forma de controlar la babesiosis (Solano-Gallego et al., 2016).
• Estudiar a los donantes de sangre con serología y PCR, y no usar perros positivos a cualquiera de las dos (Solano-Gallego et al., 2016).
• Vacuna. La disponible en Europa es contra B. canis y no protege contra otras especies (Solano-Gallego et al., 2016). No hay vacuna contra B. vogeli.

Riesgo zoonótico

Ninguna de las especies de Babesia que afectan a los perros se considera zoonótica. La babesiosis humana es rara y la causan sobre todo especies de bovinos y roedores (Solano-Gallego et al., 2016).

Referencias

• Castro Rojas, L. A., Gayozo, E., Gómez, G., Torres, P., Valenzuela Zaracho, D., & Pedrozo Prieto, R. (2025). Molecular detection and hematological alterations in dogs infected by Babesia vogeli from Paraguay. Brazilian Journal of Veterinary Medicine, 47, e008824. https://doi.org/10.29374/2527-2179.bjvm008824
• Cevidanes, A., Di Cataldo, S., Muñoz-San Martín, C., Latrofa, M. S., Hernández, C., Cattan, P. E., Otranto, D., & Millán, J. (2023). Co-infection patterns of vector-borne zoonotic pathogens in owned free-ranging dogs in central Chile. Veterinary Research Communications, 47(2), 575-585. https://doi.org/10.1007/s11259-022-10009-6
• Dantas-Torres, F. (2008). Canine vector-borne diseases in Brazil. Parasites & Vectors, 1(1), 25. https://doi.org/10.1186/1756-3305-1-25
• Di Cataldo, S., Ulloa-Contreras, C., Cevidanes, A., Hernández, C., & Millán, J. (2020). Babesia vogeli in dogs in Chile. Transboundary and Emerging Diseases, 67(6), 2296-2299. https://doi.org/10.1111/tbed.13609
• Díaz, F. E., Martínez-Valdebenito, C., López, J., Weitzel, T., & Abarca, K. (2018). Geographical distribution and phylogenetic analysis of Rhipicephalus sanguineus sensu lato in northern and central Chile. Ticks and Tick-borne Diseases, 9(4), 792-797. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.03.004
• Solano-Gallego, L., Sainz, Á., Roura, X., Estrada-Peña, A., & Miró, G. (2016). A review of canine babesiosis: the European perspective. Parasites & Vectors, 9(1), 336. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1596-0
• Zygner, W., Gójska-Zygner, O., Bartosik, J., Górski, P., Karabowicz, J., Kotomski, G., & Norbury, L. J. (2023). Canine babesiosis caused by large Babesia species: global prevalence and risk factors. A review. Animals, 13(16), 2612. https://doi.org/10.3390/ani13162612