Pioderma canina

Especies afectadas y susceptibilidad

Siempre es secundaria. Las causas de fondo más comunes son trauma, ectoparásitos y dermatitis atópica. Otras son trastornos de la queratinización, endocrinopatías y neoplasias (Loeffler et al., 2025b).

El agente

Staphylococcus pseudintermedius es el agente principal de la pioderma canina (Loeffler et al., 2025a).

Resistencia a meticilina. Las cepas de S. pseudintermedius resistentes a meticilina (SPRM) son resistentes a todos los betalactámicos y a menudo a otros grupos de antimicrobianos, lo que limita mucho las opciones (Loeffler et al., 2025b).

Epidemiología en Chile

Santiago. En un hospital veterinario de Santiago se analizaron 49 aislados de estafilococos resistentes a meticilina de personas, perros y gatos, de S. aureus, S. pseudintermedius y S. epidermidis. Llevaban los genes mecA y blaZ, y los aislados de S. pseudintermedius portaban genes de enterotoxinas (Garrido et al., 2026).

Talca. En perros con otitis externa se encontró S. pseudintermedius multirresistente y resistente a meticilina, el primer reporte de este tipo en otitis en Chile (Núñez et al., 2025).

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios chilenos sobre la frecuencia de pioderma en perros ni sobre la proporción de SPRM en casos de pioderma.

Transmisión y factores de riesgo

La infección aparece cuando una causa primaria daña la piel (Loeffler et al., 2025b).

Factores de riesgo para infección resistente (Loeffler et al., 2025b):

• Uso reciente de antimicrobianos.
• Infección previa por estafilococos resistentes a meticilina.
• Atención en clínicas con alta prevalencia de cepas resistentes.

Signos clínicos

Pioderma de superficie. Afecta solo la superficie de la piel, como en el intertrigo de pliegues (Loeffler et al., 2025b).

Pioderma superficial. Pápulas, pústulas y collaretes epidérmicos, a menudo con prurito y pérdida de pelo (Loeffler et al., 2025b).

Pioderma profunda. Afecta el folículo completo y la dermis, con furúnculos, fístulas, exudado y dolor. Puede llevar a septicemia (Loeffler et al., 2025b).

Hallazgos de necropsia

No se encontraron series de necropsias. La pioderma rara vez es causa de muerte; en casos profundos con septicemia, los hallazgos esperables son los de sepsis bacteriana.

Histopatología

No se encontraron estudios en perros chilenos. Los hallazgos esperables son pústulas subcorneales o foliculitis en la forma superficial, y furunculosis con inflamación de la dermis en la forma profunda. La biopsia se reserva para casos atípicos o profundos.

Diagnóstico de laboratorio

Citología. Se recomienda antes de dar cualquier antimicrobiano, para confirmar cocos y neutrófilos. Si predominan bacilos, el tratamiento cambia (Loeffler et al., 2025b).

Cultivo y antibiograma. Se recomiendan siempre que se planee tratamiento sistémico, y con más fuerza si hubo antimicrobianos recientes, infección previa por cepas resistentes a meticilina o si la clínica tiene alta prevalencia de ellas (Loeffler et al., 2025b).

Causa primaria. Raspados, control de pulgas y estudio de alergias y endocrinopatías según el caso (Loeffler et al., 2025b).

Diagnóstico diferencial

• Demodicosis, que puede complicarse con pioderma.
• Dermatofitosis, por los collaretes y las zonas sin pelo.
• Pénfigo foliáceo, con pústulas sin bacterias en la citología.
• Sarna sarcóptica, con prurito intenso.

Tratamiento

Pioderma superficial y de superficie. Se trata solo con antisépticos tópicos. La clorhexidina al 2% a 4% tiene la mejor evidencia. Otras opciones son clorhexidina con miconazol, peróxido de benzoilo e hipoclorito de sodio diluido. Se revisa a las 2 a 3 semanas (Loeffler et al., 2025b).

Antimicrobiano sistémico. Se reserva para la pioderma superficial que no responde al tópico y para la profunda (Loeffler et al., 2025b):

• Superficial: 2 semanas, más tópico, y se suspende cuando no quedan lesiones primarias (pápulas, pústulas ni collaretes). No hay evidencia que apoye prolongarlo más allá de la resolución.
• Profunda: 3 semanas, más tópico, según el antibiograma y con control antes de terminar.

Primera elección empírica, solo si el riesgo de resistencia es bajo (Loeffler et al., 2025b):

• Cefalexina o cefadroxilo, 22 a 25 mg/kg cada 12 h.
• Clindamicina, 11 mg/kg cada 12 h.
• Amoxicilina con ácido clavulánico, 12,5 mg/kg cada 12 h.

Segunda elección, según antibiograma (Loeffler et al., 2025b): cefovecina 8 mg/kg SC, cefpodoxima 5 a 10 mg/kg cada 24 h, enrofloxacino desde 10 mg/kg, marbofloxacino desde 5,5 mg/kg o pradofloxacino.

Reservados para cepas resistentes a meticilina (Loeffler et al., 2025b): rifampicina, amikacina o gentamicina y cloranfenicol, solo según antibiograma.

Lo que esto implica. Un perro con pioderma superficial que se trata con antimicrobiano oral sin citología ni intento tópico no sigue la guía vigente. Con las cepas resistentes ya descritas en Chile, el cultivo es especialmente importante en perros con tratamientos previos.

Pronóstico

Bueno para el episodio si el tratamiento es adecuado. Como la pioderma es secundaria, tiende a volver si no se controla la causa primaria (Loeffler et al., 2025b). La pioderma profunda tiene un curso más largo y riesgo de septicemia.

Prevención

• Controlar la causa primaria: ectoparásitos, dermatitis atópica y endocrinopatías (Loeffler et al., 2025b).
• Usar antisépticos tópicos como primera línea, para reducir el uso de antimicrobianos sistémicos (Loeffler et al., 2025b).
• Evitar antimicrobianos sin diagnóstico, que seleccionan cepas resistentes.

Riesgo zoonótico

S. pseudintermedius es una bacteria adaptada al perro. Las cepas resistentes a meticilina se estudian con un enfoque Una Salud: en Santiago se analizaron aislados de personas, perros y gatos de un mismo hospital veterinario (Garrido et al., 2026).

Lo que esto implica. Lavarse las manos después de manipular perros con pioderma, en especial si la infección es resistente, es una medida razonable de higiene.

Referencias

• Garrido, D., Fuentes-Castillo, D., Del Río, L. C., Barraza-Schulmeyer, J., Melis, F., García, P., Flores-Yáñez, C., & Thomson, P. (2026). One Health genomic analysis of methicillin-resistant Staphylococcus spp. from humans, cats, and dogs in a veterinary hospital in central Chile. Zoonoses and Public Health, 73(3), 205-217. https://doi.org/10.1111/zph.70042
• Loeffler, A., Cain, C. L., Ferrer, L., Nishifuji, K., Varjonen, K., Papich, M. G., Guardabassi, L., Frosini, S. M., Barker, E. N., & Weese, J. S. (2025a). Antimicrobial use guidelines for canine pyoderma by the International Society for Companion Animal Infectious Diseases (ISCAID). Veterinary Dermatology, 36(3), 234-282. https://doi.org/10.1111/vde.13342
• Loeffler, A., Cain, C. L., Ferrer, L., Nishifuji, K., Varjonen, K., Papich, M. G., Guardabassi, L., Frosini, S. M., Barker, E. N., & Weese, J. S. (2025b). Synopsis of the antimicrobial use guidelines for canine pyoderma by the International Society for Companion Animal Infectious Diseases (ISCAID). Veterinary Dermatology, 36(5), 552-565. https://doi.org/10.1111/vde.13365
• Núñez, A., Lapierre, L., Escobar, B., & Castro, R. (2025). Antimicrobial resistance of Staphylococcus isolated from the ear canal of a group of dogs with otitis externa in Talca, Chile, South America: preliminary results. Open Veterinary Journal, 15(6), 2895-2902. https://doi.org/10.5455/ovj.2025.v15.i6.59