Bronquitis infecciosa

Especies afectadas y susceptibilidad

La gallina es el hospedador principal. La enfermedad es aguda y contagiosa, y en las aves en crecimiento se caracteriza sobre todo por signos respiratorios (OMSA, 2018).

Según la edad y el tipo de producción (OMSA, 2018):

• Pollos en crecimiento: cuadro respiratorio, que se agrava con otros patógenos.
• Ponedoras y reproductoras: baja de la postura y de la calidad del huevo.
• Aves muy jóvenes: la infección del oviducto puede dejar un daño permanente.

El agente

El virus de la bronquitis infecciosa es un gammacoronavirus con genoma de ARN de cadena simple y polaridad positiva (OMSA, 2018).

Genotipos. Las cepas varían mucho en sus antígenos. Hoy se clasifican por la secuencia del gen S1 de la espícula, y los genotipos se nombran por cepas de referencia como Massachusetts o 793B (OMSA, 2018). Las vacunas protegen mejor contra el genotipo que comparten.

Recombinación. El virus cambia sobre todo por recombinación entre cepas, y la protección cruzada entre genotipos es limitada (Guzmán et al., 2025).

Epidemiología en Chile

Presente y frecuente. La bronquitis infecciosa está presente en Chile. En 2023 fue la tercera enfermedad de denuncia obligatoria con más diagnósticos, con 98 denuncias, después de la influenza aviar y la micoplasmosis aviar (SAG, 2024).

Treinta y cinco años de linajes. El análisis de cepas de brotes clínicos chilenos entre 1986 y 2021 identificó cuatro linajes (Guzmán et al., 2025):

• GI-31, un linaje nuevo, propio de Sudamérica, en aislados de 1986 a 1988, con 22% a 24% de diferencia respecto de los linajes conocidos.
• GI-16, probablemente llegado desde Asia, en aislados de 2009.
• Un recombinante en 2015, cuatro años después de la introducción de la vacuna 4/91.
• GI-13, con aislados de 2017 idénticos en más del 99% a la vacuna 4/91, lo que sugiere variantes derivadas de la vacuna.
• GI-1 reapareció en 2021 con señales de recombinación entre cepas Massachusetts y 4/91, atribuidas a programas de vacunación subóptimos o poco consistentes.

La vacuna 4/91. En los brotes de 2009 la única vacuna autorizada era Massachusetts. Las aves vacunadas con 4/91 y desafiadas con el aislado chileno de 2017 tuvieron menos virus en la tráquea y ningún signo, a diferencia de las desafiadas con los aislados de 2009 y 2015 (Guzmán et al., 2019).

Traspatio. En 88 planteles de traspatio de Coquimbo, Valparaíso y la Región Metropolitana muestreados en 2021, el 82,2% de 449 aves y el 95,5% de los planteles tenía anticuerpos contra el virus. Por RT-PCR, el virus se detectó en el 4,3% de los hisopados en 2021 y en el 0,6% en 2024. No se determinó si eran cepas de campo o vacunales (Baumberger et al., 2025).

Lo que esto implica. El virus circula de forma permanente en Chile y cambia con la presión de las vacunas. Elegir y aplicar bien la vacuna depende de saber qué genotipo está presente en cada zona.

Lo que no se sabe. No se encontraron datos publicados sobre las pérdidas productivas por bronquitis infecciosa en planteles comerciales chilenos, ni sobre qué genotipos predominan después de 2021.

Transmisión y factores de riesgo

El virus se transmite por vía respiratoria y por las heces de aves infectadas. En el ciego y en las heces puede detectarse sin que refleje la infección actual (OMSA, 2018).

Factores de riesgo:

• Vacunación mal aplicada o poco uniforme, asociada en Chile a la aparición de recombinantes (Guzmán et al., 2025).
• Genotipo de campo distinto del vacunal, con protección cruzada limitada (Guzmán et al., 2019, 2025).
• Coinfecciones bacterianas, que convierten un cuadro respiratorio en aerosaculitis crónica (OMSA, 2018).
• Aves de traspatio cercanas a planteles, con alta exposición al virus (Baumberger et al., 2025).

Signos clínicos

Respiratorios. Son la forma principal: tos, estertores y secreción nasal en aves en crecimiento. Con otros patógenos, el cuadro se complica y evoluciona a una aerosaculitis crónica (OMSA, 2018).

En ponedoras. Baja la postura y empeora la calidad del huevo (OMSA, 2018). En gallinas de postura infectadas en forma experimental, la postura cayó cerca de 28% con una cepa Massachusetts y 25% con una cepa GI-25, frente a 4% en las aves control (Ali et al., 2024).

Daño permanente del oviducto. Si el oviducto se infecta a muy temprana edad, la gallina puede no llegar a poner o poner huevos de cáscara delgada, deformes o sin pigmento (OMSA, 2018).

Forma renal. Las cepas nefropatógenas causan nefritis intersticial, urolitiasis y mortalidad. La nefritis crónica puede causar muertes más tarde (OMSA, 2018).

Lo que esto implica. En un plantel de postura, una baja de producción con huevos deformes o pálidos debe hacer pensar en bronquitis infecciosa aunque no haya signos respiratorios evidentes.

Hallazgos de necropsia

Riñón. Con cepas nefropatógenas, los riñones se ven aumentados de tamaño (Ali et al., 2024), y puede haber urolitiasis (OMSA, 2018).

Aparato reproductivo. En gallinas infectadas con una cepa GI-25 se vieron ovario y oviducto regresionados, peritoneo amarillento y huevos o yemas libres en la cavidad abdominal. Con una cepa Massachusetts se vieron folículos ováricos congestionados (Ali et al., 2024).

Vías respiratorias. Exudado en tráquea y bronquios, y aerosaculitis cuando hay complicación bacteriana.

Histopatología

En gallinas de postura infectadas en forma experimental con cepas Massachusetts y GI-25 (Ali et al., 2024):

• Tráquea y pulmón: cambios del epitelio e infiltrado inflamatorio.
• Riñón: dilatación de los túbulos, infiltrado y depósitos.
• Oviducto (magno, istmo y útero): pérdida de epitelio y de cilios, congestión, infiltrado y edema.

El antígeno viral se detectó en tejidos respiratorios, renales, intestinales y reproductivos. La cepa GI-25 replicó más que la Massachusetts en riñón, colon y oviducto (Ali et al., 2024).

Diagnóstico de laboratorio

Muestras (OMSA, 2018):

• Cuadro respiratorio: hisopados de las vías respiratorias altas en aves vivas, o tráquea y pulmón de aves enfermas.
• Sospecha de nefritis: riñón.
• Problemas de postura: oviducto.
• Serología: sangre de la fase aguda y de la convalecencia.

Pruebas (OMSA, 2018):

• RT-PCR en tiempo real: da resultados en menos de 3 horas. Un positivo en hisopados no prueba que el riñón esté infectado.
• Secuenciación del gen S1: identifica el genotipo. Es lo que permite saber si una cepa es de campo o vacunal y elegir la vacuna.
• Aislamiento en huevos embrionados libres de patógenos específicos o en cultivos de tráquea.
• ELISA: la mejor opción para el monitoreo de rutina. La inhibición de la hemaglutinación y la neutralización viral son poco confiables en ponedoras y reproductoras, por reacciones cruzadas.

Diagnóstico diferencial

• Enfermedad de Newcastle, que también da signos respiratorios y baja de la postura.
• Influenza aviar, sobre todo la de baja patogenicidad.
• Laringotraqueítis infecciosa, que en el mismo estudio de traspatio chileno tuvo 57,2% de seroprevalencia en aves (Baumberger et al., 2025).
• Micoplasmosis y coriza infecciosa, ante signos respiratorios crónicos.
• Metapneumovirus aviar, ante signos respiratorios y caída de la postura.
• Causas nutricionales o tóxicas de daño renal, ante nefritis y gota.

Tratamiento

No existe tratamiento antiviral. El manejo apunta a controlar las complicaciones bacterianas, con diagnóstico y antibiograma, y a mejorar la ventilación y el ambiente del galpón.

Pronóstico

Bueno en los cuadros respiratorios sin complicaciones. Peor con cepas nefropatógenas, con complicaciones bacterianas o en ponedoras infectadas a muy temprana edad, que pueden quedar con daño permanente del oviducto (OMSA, 2018).

Prevención

Vacunas en Chile. Las vacunas vivas atenuadas Massachusetts (GI-1) y 4/91 (GI-13) son la base del control (Guzmán et al., 2025). Massachusetts y 4/91 no son antigénicamente relacionadas, por lo que cubren genotipos distintos (Guzmán et al., 2019).

Vivas e inactivadas (OMSA, 2018):

• Vacunas vivas: dan mejor inmunidad local en las vías respiratorias, pero el virus vacunal puede pasar entre aves y recuperar virulencia.
• Vacunas inactivadas: se inyectan ave por ave y necesitan una vacuna viva previa para funcionar.
• Ponedoras y reproductoras: vacuna viva de base y refuerzos inactivados para proteger durante la postura.
• Vacunas autógenas: las cepas variantes pueden usarse en vacunas inactivadas autógenas, según la ley de cada país.

Aplicación correcta. En Chile, la reaparición de GI-1 recombinante en 2021 se atribuyó a estrategias de vacunación subóptimas o poco consistentes (Guzmán et al., 2025). Una vacunación pareja de todo el lote reduce la circulación de virus vacunales y el riesgo de recombinantes.

Vigilancia del genotipo. Secuenciar los virus de los brotes permite ajustar el programa de vacunación al genotipo presente.

Riesgo zoonótico

No se han descrito infecciones en personas (OMSA, 2018).

Notificación. Figura entre las enfermedades de denuncia obligatoria más diagnosticadas por el SAG (SAG, 2024).

Referencias

• Ali, A., Farooq, M., Altakrouni, D., Najimudeen, S. M., Hassan, M. S. H., Isham, I. M., Shalaby, A. A., Gallardo, R. A., & Abdul-Careem, M. F. (2024). Comparative pathogenicity of CA1737/04 and Mass infectious bronchitis virus genotypes in laying chickens. Frontiers in Veterinary Science, 11, 1338563. https://doi.org/10.3389/fvets.2024.1338563
• Baumberger, C., Di Pillo, F., Tapia, D., Coloma, C., Orozco, K., Galdames, P., Oyarzun, C., Gárate, D., Torreblanca, C., … Hamilton-West, C. (2025). Prevalence and seroprevalence of infectious bronchitis virus and infectious laryngotracheitis virus in backyard poultry in central Chile. Animals, 15(16), 2364. https://doi.org/10.3390/ani15162364
• Guzmán, M., Sáenz, L., & Hidalgo, H. (2019). Molecular and antigenic characterization of GI-13 and GI-16 avian infectious bronchitis virus isolated in Chile from 2009 to 2017 regarding 4/91 vaccine introduction. Animals, 9(9), 656. https://doi.org/10.3390/ani9090656
• Guzmán, M., Cádiz, L., Sáenz, L., Hidalgo, H., & Verdugo, C. (2025). Thirty-five years of IBV evolution in Chile reveals a novel lineage and evidence of vaccine-driven recombination. Viruses, 17(8), 1111. https://doi.org/10.3390/v17081111
• Organización Mundial de Sanidad Animal. (2018). Avian infectious bronchitis. En Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (cap. 3.3.2). https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.03.02_AIB.pdf
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2024). Sanidad animal en 2023, Chile. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/Informe%20Sanitario%20Animal%202023%20(Reducido).pdf