Reovirosis aviar

Especies afectadas y susceptibilidad

Los reovirus aviares infectan a muchas especies de aves, pero los que causan tenosinovitis y artritis se encuentran sobre todo en pollos y pavos. También se ha establecido su papel como patógenos en patos y gansos (Nour y Mohanty, 2024).

Edad. Las aves jóvenes son más sensibles a la infección y a la enfermedad clínica; los pollitos de menos de dos semanas son los más sensibles. Las aves mayores pueden infectarse sin enfermar (Nour y Mohanty, 2024).

Tipo de ave. La artritis se asocia sobre todo a pollos de carne pesados, más sensibles que las gallinas livianas de postura, aunque estas también pueden enfermar (Nour y Mohanty, 2024).

El agente

Virus del género Orthoreovirus, familia Reoviridae (Rafique et al., 2024). Su genoma es de ARN de doble cadena segmentado, con proteínas de las clases lambda, mu y sigma (Nour y Mohanty, 2024).

Grupos genéticos. Según la secuencia del gen de la proteína σC, las cepas se dividen en seis grupos genéticos. Como todos tienen una distribución geográfica propia, una vacuna eficaz contra la artritis necesitaría antígenos de los seis (Rafique et al., 2024).

Variantes. En los últimos años surgió en pollos y pavos una nueva clase de reovirus, antigénica y genéticamente distinta de las cepas clásicas (Nour y Mohanty, 2024).

Resistencia en el ambiente. Sobrevive mucho tiempo en materiales del galpón como madera, plumas, cáscaras de huevo y agua de bebida (Nour y Mohanty, 2024).

Epidemiología en Chile

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios publicados sobre reovirus aviar, sus grupos genéticos ni el uso de vacunas en Chile. No es enfermedad de denuncia obligatoria (SAG, 2019) y no figura en el informe sanitario del SAG (SAG, 2024).

Región. Las enfermedades asociadas a reovirus aumentaron en Sudamérica en la última década, por cepas patógenas de distintos linajes. En Brasil, la artritis causó el decomiso parcial o total de muchas canales en planta, y las secuencias brasileñas se agruparon en los grupos genéticos II y V (Rafique et al., 2024).

Lo que esto implica. Un aumento de cojeras y de decomisos por tarsos dañados en pollos de engorde chilenos debe estudiarse por RT-PCR y secuenciación, para saber qué grupos genéticos circulan antes de elegir una vacuna.

Transmisión y factores de riesgo

Vías (Nour y Mohanty, 2024; Rafique et al., 2024):

• Horizontal: sobre todo fecal-oral; también por vía respiratoria y por la piel dañada de los pollitos en la cama, que puede llevar el virus a tendones y articulaciones.
• Vertical: por el huevo.

Persistencia. El virus puede persistir en las patas infectadas hasta 285 días (Nour y Mohanty, 2024).

Frecuencia. Es casi universal en la producción avícola comercial, con prevalencias cercanas a 100% (Nour y Mohanty, 2024).

Factores de riesgo (Nour y Mohanty, 2024):

• Pollitos de menos de dos semanas, cuando los anticuerpos maternos dejan de proteger.
• Granjas de edades múltiples, que mantienen el virus entre lotes.
• Agua y alimento contaminados.

Signos clínicos

Artritis y tenosinovitis. Son los problemas más frecuentes: cojera, dificultad para moverse, peor conversión alimenticia y menor ganancia de peso (Rafique et al., 2024). Los signos suelen verse entre las 4 y 7 semanas de edad. Los lotes afectados tienen más mortalidad por desnutrición y deshidratación (Rafique et al., 2024).

Casos graves (Nour y Mohanty, 2024):

• Tarsos muy hinchados y tendones gastrocnemios o flexores digitales engrosados.
• Rotura de tendones, sobre todo en aves pesadas, que quedan echadas cerca del agua o del alimento.
• La rotura bilateral da una marcha característica, porque el ave no puede mover el metatarso.
• Coloración verdosa de la piel sobre el tendón roto, por la sangre extravasada.

Otras formas (Nour y Mohanty, 2024; Rafique et al., 2024): síndrome de mala absorción y enanismo, inmunosupresión, enfermedad entérica, hepatitis, miocarditis, pericarditis y plumas primarias anormales, llamadas alas de helicóptero.

Pérdidas en planta. Las canales con tarsos dañados se decomisan (Rafique et al., 2024).

Hallazgos de necropsia

Tendones (Nour y Mohanty, 2024):

• Engrosamiento de los tendones gastrocnemio, flexores digitales y extensores metatarsianos.
• El engrosamiento bajo el tarso suele deberse a la rotura y el plegado de los tendones flexores, con líquido gelatinoso.
• Al inicio, edema de las vainas tendinosas y petequias en las membranas sinoviales sobre el tarso.

Articulación del tarso. Suele tener poco exudado, color paja o con sangre. Rara vez el exudado es purulento y se parece al de la sinovitis por M. synoviae (Nour y Mohanty, 2024).

Fase crónica. Las vainas tendinosas se endurecen y fusionan; aparecen erosiones en el cartílago articular del extremo del tibiotarso y un pannus fibrocartilaginoso (Nour y Mohanty, 2024).

Histopatología

Fase aguda (Nour y Mohanty, 2024): edema de las vainas del tendón gastrocnemio, hiperplasia de los sinoviocitos e infiltrado de linfocitos y macrófagos bajo la sinovial.

Fase crónica (Nour y Mohanty, 2024): fibroplasia y acumulación de tejido conectivo fibroso bajo la sinovial, con prolongaciones vellosas. Puede haber periostitis y más actividad de osteoclastos.

Diagnóstico de laboratorio

RT-PCR. Es el método de referencia por su rapidez, especificidad y sensibilidad (Nour y Mohanty, 2024). Como el virus se localiza y persiste en las patas (Nour y Mohanty, 2024), los tendones y la membrana sinovial de aves con lesiones son la muestra lógica.

Genotipificación. La secuencia del gen σC asigna la cepa a uno de los seis grupos genéticos (Rafique et al., 2024). Es la información que se necesita para evaluar si una vacuna corresponde a las cepas de campo.

Serología. El ELISA se usa mucho para evaluar el estado inmune de los lotes (Nour y Mohanty, 2024). Como el virus es casi universal y las reproductoras se vacunan, un resultado positivo no basta para diagnosticar la enfermedad.

Histopatología de tendones, para confirmar la tenosinovitis.

Diagnóstico diferencial

• Micoplasmosis por M. synoviae, con sinovitis y exudado purulento.
• Artritis bacterianas, por Staphylococcus aureus, E. coli (colibacilosis) o Enterococcus cecorum.
• Problemas locomotores no infecciosos, como la discondroplasia tibial.
• Cólera aviar crónico, con artritis en aves adultas.

Tratamiento

No hay tratamiento antiviral. Las aves con rotura bilateral de tendones quedan inmovilizadas (Nour y Mohanty, 2024); su eliminación humanitaria es una decisión de bienestar animal, según criterio de Evidencia Vet. Las fuentes revisadas centran el control en la vacunación de reproductoras y la bioseguridad (Nour y Mohanty, 2024).

Pronóstico

Reservado en los lotes con artritis, por las pérdidas de peso, la mortalidad por desnutrición y deshidratación, y los decomisos (Rafique et al., 2024).

Prevención

Bioseguridad (Nour y Mohanty, 2024):

• Evitar alimento y agua contaminados.
• Evitar granjas de edades múltiples.
• Limpiar y desinfectar a fondo los galpones afectados, con desinfectantes de varios componentes.

Vacunar a las reproductoras (Nour y Mohanty, 2024):

• El objetivo es que tengan niveles altos de anticuerpos neutralizantes, para evitar la transmisión por el huevo y proteger a los pollitos con anticuerpos maternos.
• El periodo crítico son los primeros días de vida: los anticuerpos maternos tienen una vida media de unos 5 días y dejan de proteger entre los 10 y 15 días.
• Existen vacunas vivas atenuadas e inactivadas, basadas sobre todo en cepas clásicas del grupo 1.

Vacunas y variantes (Nour y Mohanty, 2024):

• Por la diferencia antigénica con las cepas de campo actuales, las vacunas comerciales clásicas protegen poco.
• En la industria del pollo de engorde de Estados Unidos se usan mucho vacunas autógenas inactivadas, hechas con cepas de campo, que deben actualizarse con frecuencia.
• El uso de vacunas autógenas con pocas cepas se ha asociado a la selección de nuevas variantes.

Riesgo zoonótico

Sin riesgo descrito para las personas.

Notificación. No es enfermedad de denuncia obligatoria al SAG (SAG, 2019).

Referencias

• Nour, I., & Mohanty, S. K. (2024). Avian reovirus: From molecular biology to pathogenesis and control. Viruses, 16(12), 1966. https://doi.org/10.3390/v16121966
• Rafique, S., Rashid, F., Wei, Y., Zeng, T., Xie, L., & Xie, Z. (2024). Avian orthoreoviruses: A systematic review of their distribution, dissemination patterns, and genotypic clustering. Viruses, 16(7), 1056. https://doi.org/10.3390/v16071056
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2019). Enfermedades de denuncia obligatoria. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/enfermedades_denuncia_obligatoria_sag_9-10-2019.pdf
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2024). Sanidad animal en 2023, Chile. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/Informe%20Sanitario%20Animal%202023%20(Reducido).pdf