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BacterianaSin vacunaZoonosisNotificación obligatoria SAGNotificación obligatoria MINSAL (casos humanos)

No hay vacunas en uso para cerdos; el control se basa en la inspección en matadero, la bioseguridad y evitar el contacto con bovinos y fauna silvestre infectados.

Tuberculosis porcina

Sinónimos: Tuberculosis porcina, Mycobacterium bovis en cerdos, Micobacteriosis porcina, Complejo Mycobacterium avium en cerdos, Swine tuberculosis · Inglés: Tuberculosis in pigs

Especies afectadas y susceptibilidad

Cerdos y jabalíes. En Corea, la seroprevalencia de M. bovis fue de 4,54% en cerdas y 5,91% en jabalíes, y la de M. avium de 10,10% y 7,71% (Moon et al., 2026).

Sistemas al aire libre. La prevalencia es mayor en cerdos criados al aire libre y en zonas con mucha fauna silvestre (Moon et al., 2026).

El agente

Dos grupos. En países donde la tuberculosis bovina es endémica, como Argentina, M. bovis es la especie más informada en cerdos; en países sin ella dominan las micobacterias del complejo M. avium (Cuerda et al., 2026).

Virulencia. Una cepa de M. bovis aislada de un cerdo en Argentina fue hipervirulenta en un modelo de tuberculosis pulmonar en ratones (Cuerda et al., 2026).

Resistencia natural. M. bovis es naturalmente resistente a la pirazinamida, un fármaco de primera línea contra la tuberculosis humana (Sadoff y Dorjee, 2026).

Epidemiología en Chile

Presente. La tuberculosis porcina por M. bovis está en la lista de enfermedades del SAG, presente, con vigilancia pasiva (SAG, 2025).

Tuberculosis porcina: agentes, situación en Chile, diagnóstico en el matadero y riesgo para las personas.

Tuberculosis porcina: agentes, situación en Chile, diagnóstico en el matadero y riesgo para las personas.

Esquema · Elaboración propia, Evidencia Vet · A partir de SAG (2025), Moon et al. (2026), Cuerda et al. (2026) y Sadoff y Dorjee (2026)

Matadero 2024. Se detectaron 69 cerdos con lesiones granulomatosas compatibles con tuberculosis, el 0,001% de los faenados (uno de cada 100.000), todos en plantas de La Araucanía, igual que en 2023 (SAG, 2025).

Lo que no se sabe. El informe no indica cuántas lesiones se confirmaron como M. bovis y cuántas eran del complejo M. avium.

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: la concentración en La Araucanía puede reflejar cerdos de crianza familiar en contacto con bovinos; tipificar las lesiones aclararía el riesgo real.

Transmisión y factores de riesgo

Fauna silvestre y aire libre. La exposición a fauna y la crianza al aire libre aumentan la infección (Moon et al., 2026).

Bovinos. Es una inferencia de Evidencia Vet: en Chile, donde la tuberculosis bovina está presente, el contacto con bovinos infectados, la leche sin pasteurizar y los restos de faena son las vías más probables de M. bovis hacia los cerdos.

Signos clínicos

Casi siempre subclínica. Es una inferencia de Evidencia Vet: el hallazgo típico es la lesión en el matadero, sin signos previos, como ocurre en la vigilancia del SAG.

Hallazgos de necropsia

Linfonodos. El complejo M. avium causa granulomas en los linfonodos mesentéricos que se detectan en el matadero (Moon et al., 2026).

En jabalíes. Lesiones localizadas en el linfonodo submandibular o generalizadas en los pulmones (Risco et al., 2014).

Jabalíes con lesiones compatibles con tuberculosis bovina: localizada en el linfonodo submandibular (a) y generalizada en los pulmones (b).

Jabalíes con lesiones compatibles con tuberculosis bovina: localizada en el linfonodo submandibular (a) y generalizada en los pulmones (b).

Necropsia · Imagen: Risco et al. (2014), PLOS ONE, figura 2, vía Wikimedia Commons. https://commons.wikimedia.org/wiki/File:BTB_in_boar.png · CC BY 3.0

Histopatología

Granulomas. Las lesiones son granulomatosas (SAG, 2025).

Lo que no se sabe. Las fuentes revisadas no describen la histopatología en cerdos.

Diagnóstico de laboratorio

Tinción. La tinción de Ziehl-Neelsen muestra bacilos ácido alcohol resistentes.

Tinción de Ziehl-Neelsen: bacilos ácido alcohol resistentes (Mycobacterium bovis BCG) en rosado y bacterias no ácido alcohol resistentes en azul. 1000x.

Tinción de Ziehl-Neelsen: bacilos ácido alcohol resistentes (Mycobacterium bovis BCG) en rosado y bacterias no ácido alcohol resistentes en azul. 1000x.

Laboratorio · Imagen: Y tambe, vía Wikimedia Commons. https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Ziehl_Neelsen_stain.jpg · CC BY-SA 3.0

Serología. El ELISA se ha usado para estimar la seroprevalencia de M. bovis y M. avium en cerdas y jabalíes (Moon et al., 2026).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: la tinción no distingue M. bovis del complejo M. avium; para eso se necesita cultivo o PCR, y es lo que define el riesgo zoonótico.

Diagnóstico diferencial

Es una inferencia de Evidencia Vet: linfadenitis por Rhodococcus equi, por Streptococcus y abscesos por Trueperella pyogenes; granulomas parasitarios; y brucelosis porcina cuando hay lesiones en testículos o articulaciones.

Tratamiento

No se trata. Es una inferencia de Evidencia Vet: en cerdos no se trata; las canales afectadas se decomisan según la extensión de las lesiones.

Pronóstico

Sin impacto productivo visible. Es una inferencia de Evidencia Vet: la pérdida es el decomiso en el matadero y el riesgo para las personas.

Prevención

Bioseguridad. Es una inferencia de Evidencia Vet: evitar el contacto con bovinos y fauna infectados, no dar leche sin pasteurizar ni restos de faena y controlar aves en los alimentos para el complejo M. avium.

Vigilancia en matadero. Es la herramienta del SAG en cerdos (SAG, 2025).

Riesgo zoonótico

Tuberculosis zoonótica. Se estima que hay cerca de 140.000 casos humanos de tuberculosis zoonótica al año en el mundo (Sadoff y Dorjee, 2026).

Tratamiento humano. La resistencia natural de M. bovis a la pirazinamida complica el tratamiento de las personas (Sadoff y Dorjee, 2026).

Una Salud. La vigilancia en cerdos y jabalíes se enmarca en el enfoque Una Salud (Moon et al., 2026).

Referencias

  • Cuerda, M. X., Colombatti, M. A., Berná, L., Moyano, R. D., Alonso, N., Gravisaco, M. J., Zumárraga, M. J., Caimi, K., Marques Da Silva, W., & Santangelo, M. P. (2026). A porcine-isolated Mycobacterium bovis strain exhibits hypervirulence in a murine pulmonary tuberculosis model. Biology, 15(4), 335. https://doi.org/10.3390/biology15040335
  • Moon, S. J., Bae, D. Y., Cho, Y. C., Yoo, D. S., Oh, Y., & Cho, H. S. (2026). Nationwide seroprevalence of Mycobacterium bovis and Mycobacterium avium in domestic sows and wild boars in Korea under a one health framework. Frontiers in Microbiology, 17, 1773768. https://doi.org/10.3389/fmicb.2026.1773768
  • Risco, D., Serrano, E., Fernández-Llario, P., Cuesta, J. M., Gonçalves, P., García-Jiménez, W. L., Martínez, R., Cerrato, R., Velarde, R., Gómez, L., Segalés, J., & Hermoso de Mendoza, J. (2014). Severity of bovine tuberculosis is associated with co-infection with common pathogens in wild boar. PLOS ONE, 9(10), e110123. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110123
  • Sadoff, R. C., & Dorjee, K. (2026). Animals as overlooked victims and vectors of tuberculosis: review of Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium bovis. One Health Advances, 4(1), 25. https://doi.org/10.1186/s44280-026-00136-z
  • SAG. (2025). Sanidad animal en 2024, Chile. Servicio Agrícola y Ganadero. https://sag.cl/sites/default/files/Informe%20Sanidad%202024%20%2816-05-2025%29%20Pliego.pdf

Cómo citar esta ficha

Conejeros, A. (2026). Tuberculosis porcina. Guía de enfermedades, Evidencia Vet. URL permanente: https://evidenciavet.cl/monogastricos/enfermedades-cerdos/tuberculosis-porcina/.