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La vacunación de las vacas en el preparto contra rotavirus, coronavirus y E. coli K99 protege al ternero a través del calostro, por lo que su efecto depende de que el ternero tome suficiente calostro de buena calidad. No hay vacuna contra Cryptosporidium.

Diarrea neonatal del ternero

Sinónimos: Diarrea de los terneros, Diarrea neonatal, Enteritis neonatal, Scours · Inglés: Neonatal calf diarrhea

Especies afectadas y susceptibilidad

Afecta a terneros en su primer mes de vida. Es la principal causa de enfermedad y muerte de los terneros antes del destete (Carter et al., 2021; Jessop et al., 2024).

El agente

Cada agente predomina a una edad distinta (Jessop et al., 2024):

  • E. coli enterotoxigénica (ETEC, con el antígeno K99): la causa más frecuente en terneros de menos de 4 días. Su toxina hace que el intestino secrete agua sin dañar el epitelio, por lo que la diarrea no es hemorrágica.
  • Rotavirus y coronavirus bovinos: destruyen las vellosidades intestinales y causan diarrea por mala absorción.
  • Cryptosporidium parvum: una de las causas más importantes; afecta a terneros de menos de 20 días, sobre todo en la segunda semana de vida.
  • Salmonella spp.: sobre todo S. Typhimurium; invade el epitelio y puede causar diarrea aguda con úlceras de la mucosa.
  • Clostridium perfringens: su papel como agente principal está en discusión, porque vive normalmente en el intestino del ternero.

Infecciones mixtas. En un metaanálisis de 41 estudios, la combinación más frecuente fue rotavirus con Cryptosporidium (6,7% de los terneros con diarrea), seguida de rotavirus con coronavirus (2,8%) (Brunauer et al., 2021).

Epidemiología en Chile

Cryptosporidium en la zona central. En 205 terneros recién nacidos con diarrea de lecherías de la Región Metropolitana, se encontraron ooquistes en el 56,1% con tinción de auramina y en el 49,8% con Ziehl-Neelsen modificada; la especie fue C. parvum (Díaz-Lee et al., 2011). En un ternero con diarrea de la zona central se identificaron tres subtipos GP60 distintos de C. parvum, con predominio de IIaA17G4R1 (Mercado et al., 2015).

Terneros lecheros de Los Ríos. En 686 terneros no destetados de 29 lecherías, el 13,7% tenía diarrea (Calderón-Amor y Gallo, 2020).

Factores asociados a la diarrea (Calderón-Amor y Gallo, 2020):

  • Limpiar las camas una vez por semana o dos a tres veces por semana, en vez de todos los días.
  • Terneros moderadamente sucios.
  • Usar sustituto lácteo o leche de descarte sin tratar, en vez de leche tratada.
  • Crianzas con más terneros.

Manejo del calostro en esos predios (Calderón-Amor y Gallo, 2020):

  • El 48% dejaba al ternero con la vaca más de 24 horas, sin controlar el calostro que tomaba.
  • El 68,9% no evaluaba la calidad del calostro y el 72,4% no medía la transferencia pasiva.
  • El 51,7% daba leche de descarte sin tratar.

Leche de descarte. En 36 lecherías del sur, la leche de descarte tenía Salmonella spp. en el 2,8% de los predios y residuos de antimicrobiales en el 55,6% (Ulloa et al., 2025).

Lo que esto implica. Los puntos más débiles de la crianza chilena son el control del calostro y la leche de descarte, y los dos se pueden corregir en el predio.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios recientes publicados sobre la frecuencia de rotavirus, coronavirus y E. coli K99 en terneros con diarrea en Chile, ni sobre la mortalidad de terneros por diarrea a nivel nacional.

Transmisión y factores de riesgo

Fecal-oral. Los agentes se eliminan en las heces de terneros enfermos y de animales adultos portadores, y contaminan camas, comederos y el ambiente de la crianza. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de los factores de riesgo descritos.

Factores de riesgo:

  • Calostro insuficiente o de mala calidad: el manejo del calostro es el factor del predio con mayor asociación a la enfermedad y la muerte de los terneros (Carter et al., 2021).
  • Camas sucias y terneros sucios (Calderón-Amor y Gallo, 2020).
  • Leche de descarte sin tratar (Calderón-Amor y Gallo, 2020; Ulloa et al., 2025).
  • Crianzas grandes, con más terneros (Calderón-Amor y Gallo, 2020).

Signos clínicos

Diarrea, deshidratación, decaimiento y pérdida del reflejo de succión. Con Salmonella y algunas E. coli de terneros mayores, la diarrea puede ser hemorrágica (Jessop et al., 2024).

Evaluar la deshidratación (Constable et al., 2020):

  • Hundimiento del ojo en la órbita: el porcentaje de deshidratación se estima multiplicando los milímetros de hundimiento por 1,6.
  • Pliegue de piel en el cuello: el tiempo que tarda en volver.
  • Extremidades frías: una temperatura del menudillo bajo 32 °C, en un ambiente templado, indica mala perfusión.

Lo que esto implica. El ternero con diarrea muere por deshidratación y acidosis más que por el agente. Medir la deshidratación decide el tratamiento.

Hallazgos de necropsia

ETEC: sin lesiones macroscópicas, porque la toxina no daña el epitelio (Jessop et al., 2024).

Virus y Cryptosporidium: intestino delgado con contenido líquido; el daño está en las vellosidades y se ve mejor en la histopatología (Jessop et al., 2024).

Salmonella: úlceras y destrucción de la mucosa intestinal (Jessop et al., 2024).

Histopatología

Rotavirus y coronavirus destruyen los enterocitos maduros de las vellosidades del intestino delgado, que se reemplazan por células inmaduras sin capacidad de absorción; el coronavirus afecta también el intestino grueso (Jessop et al., 2024). C. parvum invade el epitelio intestinal (Jessop et al., 2024).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: en un ternero muerto, el intestino debe fijarse en formalina apenas se abre el cadáver, porque las vellosidades se autolisan en pocas horas.

Diagnóstico de laboratorio

Cryptosporidium: ooquistes en heces con tinción de auramina, más sensible, o de Ziehl-Neelsen modificada; las pruebas inmunocromatográficas confirman la especie (Díaz-Lee et al., 2011).

Ooquistes de Cryptosporidium parvum teñidos de rojo con la técnica ácido-resistente modificada; en dos de ellos se ven los esporozoítos.

Ooquistes de Cryptosporidium parvum teñidos de rojo con la técnica ácido-resistente modificada; en dos de ellos se ven los esporozoítos.

Laboratorio · Imagen: CDC (PHIL 7829), vía Wikimedia Commons (7829 lores.jpg) · Dominio público

Varios agentes a la vez. El método de diagnóstico influye mucho en qué agentes se detectan y en cuántas infecciones mixtas se encuentran (Brunauer et al., 2021).

E. coli: los laboratorios rara vez tipifican las E. coli de terneros de más de 5 días, por lo que su papel en esas edades no está bien establecido (Jessop et al., 2024).

Calostro y transferencia pasiva (Carter et al., 2021):

  • Calostro de buena calidad: más de 50 g/L de IgG.
  • Transferencia pasiva en el ternero: excelente sobre 25 g/L de IgG en suero, buena de 18 a 24,9, regular de 10 a 17,9 y mala bajo 10.

Diagnóstico diferencial

  • Diarrea viral bovina, que puede causar diarrea y lesiones erosivas, y un ternero persistentemente infectado.
  • Paratuberculosis: no da diarrea en el ternero, pero se contagia en la misma etapa y por las mismas vías fecales.

Es una inferencia de Evidencia Vet: también entran la diarrea nutricional por errores en la preparación del sustituto, la coccidiosis en terneros mayores de tres semanas y la septicemia.

Tratamiento

Fluidos: la base del tratamiento (Constable et al., 2020):

  • Intravenosos cuando la deshidratación se estima en 8% o más del peso, equivalente a un hundimiento del ojo de 4 mm o más. Un ternero de 50 kg deshidratado al 8% necesita al menos 3 a 5 litros.
  • Corrección en 4 a 6 horas, seguida de mantención por 2 a 4 días.
  • Soluciones intravenosas: Ringer lactato o acetato en terneros deshidratados; bicarbonato de sodio isotónico o hipertónico ante acidosis grave.
  • Vías subcutánea e intraperitoneal: inferiores a la intravenosa para recuperar a un ternero grave.
  • Electrolitos orales: su eficacia depende de la osmolalidad, el sodio, los agentes alcalinizantes y la energía.

Antimicrobiales. El tratamiento de la diarrea concentra más uso de antimicrobiales que la neumonía en los terneros, y las bacterias asociadas a diarrea tienen tasas de resistencia más altas (Zhang et al., 2022). Carter et al. (2021) revisan el calostro como alternativa para prevenir y tratar la diarrea y reducir ese uso.

Qué agente sospechar según la edad del ternero y cuándo pasar de electrolitos orales a intravenosos.

Qué agente sospechar según la edad del ternero y cuándo pasar de electrolitos orales a intravenosos.

Esquema · Elaboración propia, Evidencia Vet · A partir de Jessop et al. (2024), Constable et al. (2020) y Carter et al. (2021)

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: los antimicrobiales no sirven contra virus ni contra Cryptosporidium. Se reservan para terneros con signos de septicemia, y no reemplazan a los fluidos.

Pronóstico

Bueno si la deshidratación se corrige a tiempo. Empeora con la deshidratación grave, la acidosis y la pérdida del reflejo de succión (Constable et al., 2020).

Prevención

Calostro (Carter et al., 2021):

  • Controlar la calidad, la cantidad y la limpieza del calostro y que el ternero lo tome a tiempo.
  • El calostro de buena calidad tiene más de 50 g/L de IgG.

Higiene de la crianza. Limpiar las camas todos los días y mantener a los terneros limpios se asoció a menos diarrea (Calderón-Amor y Gallo, 2020).

Leche. No dar leche de descarte sin tratar (Calderón-Amor y Gallo, 2020; Ulloa et al., 2025). La leche de descarte o pasteurizada también se asoció a más resistencia antimicrobiana en los agentes de los terneros (Zhang et al., 2022).

Vacunación de las vacas. Es una inferencia de Evidencia Vet: las vacunas preparto contra rotavirus, coronavirus y E. coli K99 protegen al ternero solo si toma suficiente calostro.

Riesgo zoonótico

Cryptosporidium parvum y Salmonella son zoonóticos. En Chile, C. parvum se detectó también en roedores silvestres de la zona centro-norte (Carrera-Játiva et al., 2024).

Protección. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de las vías de contagio: lavado de manos, guantes y ropa exclusiva en la crianza, sobre todo para niños y personas inmunodeprimidas.

Referencias

  • Brunauer, M., Roch, F. F., & Conrady, B. (2021). Prevalence of worldwide neonatal calf diarrhoea caused by bovine rotavirus in combination with bovine coronavirus, Escherichia coli K99 and Cryptosporidium spp.: a meta-analysis. Animals, 11(4), 1014. https://doi.org/10.3390/ani11041014
  • Calderón-Amor, J., & Gallo, C. (2020). Dairy calf welfare and factors associated with diarrhea and respiratory disease among Chilean dairy farms. Animals, 10(7), 1115. https://doi.org/10.3390/ani10071115
  • Carrera-Játiva, P. D., Acosta-Jamett, G., & Muñoz, P. (2024). Molecular detection of Cryptosporidium parvum in wild rodents (Phyllotis darwini) inhabiting protected and rural transitional areas in north-central Chile. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 24, 100971. https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2024.100971
  • Carter, H. S. M., Renaud, D. L., Steele, M. A., Fischer-Tlustos, A. J., & Costa, J. H. C. (2021). A narrative review on the unexplored potential of colostrum as a preventative treatment and therapy for diarrhea in neonatal dairy calves. Animals, 11(8), 2221. https://doi.org/10.3390/ani11082221
  • Constable, P. D., Trefz, F. M., Sen, I., Berchtold, J., Nouri, M., Smith, G., & Grünberg, W. (2020). Intravenous and oral fluid therapy in neonatal calves with diarrhea or sepsis and in adult cattle. Frontiers in Veterinary Science, 7, 603358. https://doi.org/10.3389/fvets.2020.603358
  • Díaz-Lee, A., Mercado, R., Onuoha, E. O., Ozaki, L. S., Muñoz, P., Muñoz, V., Martínez, F. J., & Fredes, F. (2011). Cryptosporidium parvum in diarrheic calves detected by microscopy and identified by immunochromatographic and molecular methods. Veterinary Parasitology, 176(2-3), 139-144. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2010.11.001
  • Jessop, E., Li, L., Renaud, D. L., Verbrugghe, A., Macnicol, J., Gamsjäger, L., & Gomez, D. E. (2024). Neonatal calf diarrhea and gastrointestinal microbiota: etiologic agents and microbiota manipulation for treatment and prevention of diarrhea. Veterinary Sciences, 11(3), 108. https://doi.org/10.3390/vetsci11030108
  • Mercado, R., Peña, S., Ozaki, L. S., Fredes, F., & Godoy, J. (2015). Multiple Cryptosporidium parvum subtypes detected in a unique isolate of a Chilean neonatal calf with diarrhea. Parasitology Research, 114(5), 1985-1988. https://doi.org/10.1007/s00436-015-4364-8
  • Ulloa, F., Penati, M., Hernández-Agudelo, J. M., Tejeda, C., Steuer, P., Addis, M. F., Mella, A., Canales, N., Soto, J. P., & Salgado, M. (2025). Analysis of pathogenic bacteria and antimicrobial residues in bovine waste milk on dairy farms in southern Chile. Frontiers in Veterinary Science, 12, 1613185. https://doi.org/10.3389/fvets.2025.1613185
  • Zhang, X., Yi, X., Zhuang, H., Deng, Z., & Ma, C. (2022). Invited review: antimicrobial use and antimicrobial resistance in pathogens associated with diarrhea and pneumonia in dairy calves. Animals, 12(6), 771. https://doi.org/10.3390/ani12060771

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Conejeros, A. (2026). Diarrea neonatal del ternero. Guía de enfermedades, Evidencia Vet. URL permanente: https://evidenciavet.cl/rumiantes-ganaderia/enfermedades/diarrea-neonatal-ternero/.