Necrosis pancreática infecciosa

Especies afectadas y susceptibilidad

Las tres especies cultivadas en Chile son susceptibles. Los más afectados son los alevines de trucha arcoíris y los post smolt de salmón del Atlántico, y en esos grupos las pérdidas pueden llegar al 80% o 90% del stock. En los alevines muy jóvenes, la mortalidad puede acercarse al 100% (Dopazo, 2020).

El virus también afecta a especies no salmónidas, como anguilas, palometas y peces planos como el turbot y el lenguado (Dopazo, 2020).

En Chile, en 2025 (Sernapesca, 2026):

• Trucha arcoíris en el mar: la IPN fue la segunda causa de mortalidad infecciosa, con 20,7%, después de la SRS.
• Salmón coho en agua dulce: explicó el 10,1% de la mortalidad infecciosa.
• Salmón del Atlántico en agua dulce: la mortalidad por IPN bajó 7% respecto de 2024.
• Reproductores: solo los de salmón coho fueron positivos al virus en la vigilancia.

El virus y sus variantes

El IPNV pertenece al género Aquabirnavirus, de la familia Birnaviridae. No tiene envoltura y su genoma tiene dos segmentos de ARN de doble hebra. La proteína VP2 forma la cápside, participa en el reconocimiento de la célula del pez y tiene una región muy variable que contiene los principales determinantes de virulencia (Godoy et al., 2022).

Virulencia. Las posiciones 217, 221 y 247 de la VP2 aparecen en varios estudios asociadas a la virulencia. La combinación treonina, alanina y treonina en esas posiciones se asocia a cepas muy virulentas (Dopazo, 2020). Aun así, no hay consenso sobre qué residuos definen una cepa virulenta (Godoy et al., 2022).

Variantes en Chile. Un estudio de 36 aislados chilenos de 2006 a 2011, de las tres especies y entre los 35° y 53° de latitud sur, clasificó 10 en el genogrupo 1 y 26 en el genogrupo 5 (Manríquez et al., 2017):

• El genogrupo 5 se asoció de preferencia, aunque no de forma obligada, al salmón del Atlántico.
• 15 aislados del genogrupo 5 y 9 del genogrupo 1 tenían los residuos de VP2 asociados a alta virulencia.
• Solo los aislados del genogrupo 5 tenían la huella molecular asociada a infecciones clínicas. Los del genogrupo 1 tenían sobre todo la asociada a infecciones subclínicas.

Resistencia del virus. Es muy estable en el ambiente. Resiste pH de 3 a neutro, salinidades de 0 a 40 y 60 °C por 30 minutos, y se replica entre 4 y 27,5 °C (Dopazo, 2020). Por eso la desinfección de instalaciones y equipos es exigente.

Epidemiología en Chile

La IPN está en la Lista 2 de enfermedades de alto riesgo, según la Res. Ex. 2858/2024 (Subpesca, 2024). No tiene programa específico propio. El virus se vigila en reproductores dentro del programa sanitario general de manejo de reproductores.

El efecto de la selección genética. La resistencia del salmón del Atlántico a la IPN tiene una base genética, identificada en un QTL del cromosoma 26. La región incluye un gen de cadherina epitelial cuya proteína se une al virus. El uso de peces genéticamente resistentes redujo de forma notable los casos de IPN (Godoy et al., 2022).

Brotes en peces resistentes. Entre 2021 y 2022 se describieron en Chile los primeros brotes de IPN en salmón del Atlántico genéticamente resistente. Fueron causados por virus del genotipo 5 con 11 mutaciones en la VP2, entre ellas cambios en las posiciones 217, 221 y 247 (Godoy et al., 2022). Antes se habían descrito brotes parecidos en Escocia en 2018 y en Noruega en 2019. El hallazgo indica que la resistencia genética no es una protección definitiva.

Fase productiva y factores de riesgo

La enfermedad tiene dos momentos de mayor riesgo (Dopazo, 2020):

• Agua dulce: los alevines justo después de absorber el saco vitelino y comenzar a comer.
• Mar: los post smolt, en las semanas siguientes al traslado.

Los factores de riesgo descritos son:

• Portadores: los peces que sobreviven quedan como portadores asintomáticos de por vida, y liberan el virus sobre todo en momentos de estrés y en los productos reproductivos (Dopazo, 2020).
• Transmisión vertical, a través de los productos reproductivos de reproductores portadores.
• Transmisión horizontal por el agua: una dosis infectiva de 1 TCID50 por mililitro basta para infectar. El virus entra por las branquias, el intestino o la piel (Dopazo, 2020).
• Estrés de manejo y traslado.
• Variantes del virus capaces de afectar a peces resistentes.

Signos clínicos

En alevines, el signo más característico es la natación errática, en espiral o tirabuzón. A eso se suman anorexia, oscurecimiento de la piel, exoftalmia y petequias en la superficie ventral (Dopazo, 2020).

En los brotes de smolts de salmón del Atlántico resistente descritos en Chile, todos los peces tenían menor consumo de alimento, letargo y natación superficial con pérdida del equilibrio. La mortalidad llegó a 0,40% diaria, con una mortalidad acumulada de 0,4% a 3,5% (Godoy et al., 2022).

Hallazgos de necropsia

En los brotes chilenos de 2020 a 2022, el cuadro se consideró clásico (Godoy et al., 2022):

• Órganos pálidos: branquias, corazón e hígado.
• Hígado amarillo.
• Petequias difusas en los ciegos pilóricos y hemorragias en la grasa visceral.
• Tracto digestivo sin alimento.
• Con menos frecuencia, contenido mucoso en el estómago.

Histopatología

La lesión que da nombre a la enfermedad es la necrosis del páncreas exocrino. En los brotes chilenos, las lesiones principales fueron (Godoy et al., 2022):

• Páncreas: necrosis difusa, con degeneración de las células acinares y formación de material eosinofílico amorfo.
• Hígado: necrosis difusa y grave.
• Ciegos pilóricos e intestino: necrosis del epitelio.

La inmunohistoquímica marca el virus en el tejido y confirma que las lesiones corresponden a la infección.

Diagnóstico de laboratorio

Muestras. Riñón, páncreas con ciegos pilóricos, hígado y bazo de peces moribundos o recién muertos; en alevines, el pez completo o sus vísceras.

Qué pedir al laboratorio. Ante la sospecha, el panel de rutina combina pruebas que confirman el agente y pruebas que descartan otras causas:

Prueba	Muestra	Resultado que apoya el diagnóstico
RT-qPCR o RT-PCR de IPNV	Riñón, páncreas y ciegos pilóricos	Positivo
Aislamiento en cultivo celular	Riñón y vísceras	Efecto citopático en células CHSE-214
Secuenciación de la VP2	Aislado o muestra positiva	Genogrupo y residuos de virulencia en las posiciones 217, 221 y 247
Histopatología	Páncreas, ciegos pilóricos, hígado e intestino en fijador	Necrosis del páncreas exocrino, del hígado y del epitelio intestinal
Inmunohistoquímica	Mismos tejidos	Antígeno viral en las lesiones
Cultivo de Flavobacterium psychrophilum	Riñón y lesiones, en agua dulce	Negativo, o flavobacteriosis concurrente
qPCR de Piscirickettsia salmonis	Riñón, hígado y bazo, en el mar	Negativo, o SRS concurrente

Los brotes chilenos de 2021 y 2022 se confirmaron por aislamiento en CHSE-214, RT-PCR y secuenciación de la VP2 (Godoy et al., 2022).

Por qué secuenciar. En un centro con peces genéticamente resistentes, la secuenciación de la VP2 muestra si el virus es una variante capaz de superar esa resistencia. Por eso conviene pedirla en los brotes en peces resistentes.

Portadores. Un positivo en peces sin signos puede corresponder a portadores. La histopatología y el cuadro clínico ayudan a distinguir la infección subclínica de la enfermedad.

Diagnóstico diferencial

Flavobacteriosis. Es una de las principales causas infecciosas de mortalidad en agua dulce en Chile y afecta a los mismos peces jóvenes (Sernapesca, 2026). El cultivo bacteriano la distingue.

Micosis. Fue la primera causa infecciosa en salmón del Atlántico en agua dulce en 2025 (Sernapesca, 2026). Las hifas en la piel y las branquias la identifican.

Piscirickettsiosis. En los post smolt en el mar, la palidez y las hemorragias pueden confundirse. La qPCR la separa. Ver la ficha de Piscirickettsiosis.

Problemas de alimentación o del agua. La anorexia y el tracto digestivo vacío también aparecen en problemas de calidad del agua o del alimento. Sin necrosis pancreática ni virus, el cuadro no es IPN.

Tratamiento

No hay tratamiento para la IPN. El manejo de un brote se basa en reducir el estrés, retirar la mortalidad a tiempo y evitar la diseminación a otras unidades. La decisión sobre el manejo de un grupo afectado la toma el médico veterinario tratante.

Prevención y vacunas

Selección genética. Es la herramienta que más redujo los casos en salmón del Atlántico (Godoy et al., 2022). La aparición de variantes que afectan a peces resistentes obliga a vigilarla con secuenciación.

Vacunas. La VP2 es el principal antígeno estudiado para vacunas (Dopazo, 2020). En Chile hay vacunas registradas que incluyen antígenos de IPN en formulaciones combinadas con otras enfermedades (SAG, 2009). Esta ficha no encontró evaluaciones publicadas de su efectividad en terreno en Chile.

Reproductores y ovas. El programa sanitario general exige analizar a los reproductores para IPN. Como el virus se transmite por los productos reproductivos, ese screening permite no usar ovas de padres positivos, lo que corta una vía de entrada a la piscicultura.

Medidas de manejo. A partir de la evidencia revisada:

• Usar reproductores y ovas de origen negativo.
• Desinfectar instalaciones y equipos con protocolos adecuados a un virus muy resistente.
• Reducir el estrés en la primera alimentación y en el traslado al mar.
• No mezclar grupos de distinto origen sanitario.
• Secuenciar los virus de los brotes en peces resistentes.

Impacto productivo

La IPN causa mortalidad en los momentos más sensibles del ciclo: la primera alimentación y la llegada al mar. Además, los sobrevivientes quedan como portadores que pueden mantener el virus en el centro. La selección genética cambió el panorama en el salmón del Atlántico, pero la enfermedad sigue siendo relevante en la trucha arcoíris en el mar, en el coho en agua dulce y en los centros donde aparecen variantes nuevas.

Referencias

1. Dopazo CP. The infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) and its virulence determinants: what is known and what should be known. Pathogens. 2020;9(2):94. https://doi.org/10.3390/pathogens9020094
2. Godoy M, Kibenge MJT, Montes de Oca M, Pontigo JP, Coca Y, Caro D, et al. Isolation of a new infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) variant from genetically resistant farmed Atlantic salmon (Salmo salar) during 2021-2022. Pathogens. 2022;11(11):1368. https://doi.org/10.3390/pathogens11111368
3. Manríquez RA, Vera T, Villalba MV, Mancilla A, Vakharia VN, Yañez AJ, Cárcamo JG. Molecular characterization of infectious pancreatic necrosis virus strains isolated from the three types of salmonids farmed in Chile. Virology Journal. 2017;14:17. https://doi.org/10.1186/s12985-017-0684-x
4. Servicio Agrícola y Ganadero. SAG registra vacuna contra el virus ISA. Agosto de 2009.
5. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de situación sanitaria de la salmonicultura en centros marinos, año 2025. Marzo de 2026.
6. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). Resolución Exenta 2858/2024, que actualiza y reemplaza la clasificación de enfermedades de alto riesgo. Diciembre de 2024.