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ParasitariaSin vacuna

No hay vacunas. El control se basa en el manejo de la cama y el ambiente y en desparasitaciones dirigidas.

Nematodos intestinales (Ascaridia, Heterakis, Capillaria)

Sinónimos: Ascaridiosis, Heterakiosis, Capilariosis, Lombrices de las gallinas, Helmintiasis aviar · Inglés: Intestinal nematode infections of poultry

Especies afectadas y susceptibilidad

Gallinas. Se han descrito más de 30 helmintos en gallinas; Ascaridia galli es el más común, seguido de Heterakis gallinarum, con frecuencia en infección mixta (Höglund et al., 2023).

Sistemas de producción. A. galli era menos frecuente en jaulas convencionales, donde las gallinas no tienen contacto con sus heces. Con el paso a sistemas en piso y libre pastoreo, su frecuencia aumentó en Europa y otros países industrializados (Höglund et al., 2023).

Edad. Las aves jóvenes son las más afectadas por los nematodos (Hauck, 2024). En gallinas de postura en piso, la infección suele mantenerse y a veces aumenta con la edad hasta el final del ciclo, que dura hasta unas 80 semanas (Höglund et al., 2023).

El agente

Ascaridia galli (Hauck, 2024; Höglund et al., 2023):

  • Gusano redondo de hasta unos 116 mm, en el intestino delgado, sobre todo el duodeno.
  • Ciclo directo: los huevos eliminados en las heces se vuelven infectantes en 10 a 12 días en buenas condiciones.
  • Las larvas penetran la mucosa, vuelven al lumen y maduran en 28 a 30 días; los adultos eliminan huevos por varios meses.
  • Hasta 3% de los huevos sobrevive hasta dos años en el ambiente.
Gusanos adultos de Ascaridia galli obtenidos de una gallina.

Gusanos adultos de Ascaridia galli obtenidos de una gallina.

Agente o vector · Imagen: Chhandama, vía Wikimedia Commons (Ascaridia galli.jpg) · CC BY-SA 3.0

Heterakis gallinarum (Hauck, 2024):

  • Vive en los ciegos; periodo prepatente de unas 2 semanas.
  • Poco patógeno por sí mismo, pero transmite Histomonas meleagridis, el agente de la histomonosis.
  • Las lombrices de tierra pueden ingerir sus huevos y ser fuente de infección.

Capillaria (Hauck, 2024):

  • C. obsignata: intestino delgado y ciegos, ciclo directo, considerada grave.
  • C. caudinflata: intestino delgado, con lombrices de tierra como hospedadores intermediarios.
  • C. annulata: esófago y buche, con lombrices de tierra.
  • C. contorta: boca, esófago y buche; ciclo directo o con lombrices; considerada grave.

Epidemiología en Chile

Traspatio de Chile central, 2025. En 51 planteles de traspatio de las regiones Metropolitana, de O’Higgins y de Valparaíso, el 96% tenía al menos un parásito y la mayoría más de uno (Cantin-Rosas et al., 2025):

ParásitoPlanteles positivos
Capillaria spp.50,9%
Ascaridia galli49%
Heterakis gallinarum25,4%
Trichostrongylus spp.25,4%
Huevo de tipo cestodo2%

En 94 a 100% de los planteles la carga estimada de nematodos fue baja. Hubo un conglomerado de alto riesgo de A. galli en la Región de O’Higgins (Cantin-Rosas et al., 2025).

Factores asociados (Cantin-Rosas et al., 2025): el agua potable se asoció a 88,9% menos riesgo de A. galli. El 84,4% de los planteles no restringía el acceso, el 55,5% no limpiaba con regularidad y el 68,8% no usaba desinfectantes.

Valdivia, 1974. En 20 gallinas, el 70% tenía helmintos: H. gallinarum 60%, A. galli 35%, y cuatro especies de Capillaria (C. obsignata, C. caudinflata, C. contorta y otra no identificada) entre 15 y 25% (Torres et al., 1974).

Lo que esto implica. Los nematodos son casi universales en el traspatio chileno, aunque con cargas bajas. En planteles comerciales sin jaula, la experiencia europea anticipa un aumento de A. galli; es una inferencia de Evidencia Vet.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios en planteles comerciales chilenos ni sobre resistencia a antihelmínticos en el país.

Transmisión y factores de riesgo

Vía fecal-oral. Las aves se infectan al ingerir huevos infectantes del ambiente o, en algunas especies, lombrices de tierra (Hauck, 2024).

Acumulación. Por la alta fecundidad de A. galli y la débil respuesta inmune de la gallina, la intensidad de la infección aumenta con el tiempo. Más aves por superficie significa más contaminación (Höglund et al., 2023).

Factores de riesgo:

  • Sistemas en piso y libre pastoreo (Höglund et al., 2023).
  • Algunas líneas comerciales son más susceptibles (Höglund et al., 2023).
  • Lluvia, que hace subir las lombrices a la superficie (Hauck, 2024).
  • Agua no potable, en el traspatio chileno (Cantin-Rosas et al., 2025).

Signos clínicos

Inespecíficos (Hauck, 2024): mal desarrollo, menos actividad y apetito, peor rendimiento; en casos graves, muerte.

Cargas altas de A. galli (Höglund et al., 2023): pérdida de apetito, diarrea, obstrucción intestinal, menor absorción de nutrientes, menor ganancia de peso y más mortalidad.

Capillaria (Hauck, 2024): en infecciones intensas, debilidad, adelgazamiento y muerte.

Huevos con gusanos. A. galli puede migrar al oviducto y quedar dentro del huevo; es sobre todo un problema de aspecto (Hauck, 2024).

Hallazgos de necropsia

A. galli: gusanos adultos visibles a simple vista en el intestino delgado (Höglund et al., 2023). Las larvas en la mucosa causan hemorragias (Hauck, 2024).

Heterakis: en infecciones intensas, paredes de los ciegos engrosadas, inflamadas o con nódulos (Hauck, 2024).

Capillaria: engrosamiento e inflamación marcados de buche, esófago o intestino (Hauck, 2024).

Histopatología

La penetración de las larvas de A. galli daña la mucosa y causa irritación e inflamación (Höglund et al., 2023). H. gallinarum se asocia a granulomas en el ciego y el hígado en infecciones intensas (Hauck, 2024).

Diagnóstico de laboratorio

Necropsia. Los gusanos se separan, se lavan en suero fisiológico y se identifican al microscopio; requiere experiencia (Hauck, 2024).

Coprología. La flotación o sedimentación confirma la infección, pero en general no identifica la especie. La eliminación de huevos es intermitente, así que un resultado negativo no descarta la infección (Hauck, 2024).

Parásitos gastrointestinales en traspatios de Chile central (400X): ooquistes de Eimeria (A), huevos de Ascaridia galli (B), Heterakis gallinarum (C), Capillaria (D), Trichostrongylus (E) y un huevo de tipo cestodo (F).

Parásitos gastrointestinales en traspatios de Chile central (400X): ooquistes de Eimeria (A), huevos de Ascaridia galli (B), Heterakis gallinarum (C), Capillaria (D), Trichostrongylus (E) y un huevo de tipo cestodo (F).

Prueba diagnóstica · Imagen: Cantin-Rosas et al. (2025), Veterinary Sciences, figura 1. https://doi.org/10.3390/vetsci12050448 · CC BY 4.0

Infecciones tempranas. Por la fase en la mucosa, ni el tamizado del contenido intestinal detecta las infecciones tempranas de A. galli (Höglund et al., 2023).

PCR. Permite identificar la especie con marcadores genéticos (Hauck, 2024).

Diagnóstico diferencial

  • Coccidiosis aviar, a menudo presente al mismo tiempo (Cantin-Rosas et al., 2025).
  • Enteritis necrótica, ante diarrea y mal rendimiento.
  • Cestodos, poco frecuentes en el traspatio chileno (Cantin-Rosas et al., 2025).

Tratamiento

Antihelmínticos eficaces contra A. galli (Höglund et al., 2023): benzimidazoles (fenbendazol y flubendazol), imidazotiazoles (levamisol y pirantel) y lactonas macrocíclicas (ivermectina).

Productos aprobados. En Estados Unidos, el fenbendazol es el único tratamiento aprobado para ascáridos de aves (Collins et al., 2025); en Europa se usa mucho el flubendazol (Hauck, 2024). En Chile, la elección depende de los productos registrados en el SAG para aves y de sus periodos de resguardo en carne y huevo.

Resistencia. Ya se describió resistencia al fenbendazol en H. gallinarum y en Ascaridia dissimilis del pavo (Collins et al., 2025).

Tratamiento dirigido. Para retrasar la resistencia, se propone tratar según diagnóstico y no por calendario fijo (Höglund et al., 2023).

Precaución (Hauck, 2024): no dar fenbendazol durante la muda; respetar dosis y periodos de resguardo.

Pronóstico

Bueno con cargas bajas, como las descritas en el traspatio chileno (Cantin-Rosas et al., 2025). Las cargas altas reducen el peso y la postura y pueden causar muertes (Höglund et al., 2023).

Prevención

Ambiente (Hauck, 2024):

  • Manejo de la cama y saneamiento, la base del control.
  • Separar por completo grupos de distinta especie o edad.
  • Insecticidas en pisos y nidales vacíos, para cortar el ciclo con hospedadores intermediarios.
  • Tierra de diatomeas al 2% en el alimento redujo Heterakis y Capillaria en gallinas.

Traspatio (Cantin-Rosas et al., 2025): agua potable, ventilación del gallinero, limpieza regular y uso de desinfectantes.

Separar pavos y gallinas, para cortar el ciclo de Heterakis y la histomonosis (Hauck, 2024).

Dónde vive cada nematodo, cómo se diagnostica y cómo se controla.

Dónde vive cada nematodo, cómo se diagnostica y cómo se controla.

Esquema · Elaboración propia, Evidencia Vet · A partir de Höglund et al. (2023), Hauck (2024) y Cantin-Rosas et al. (2025)

Riesgo zoonótico

Sin riesgo para las personas.

Notificación. No es enfermedad de denuncia obligatoria al SAG (SAG, 2019).

Referencias

  • Cantin-Rosas, B., Tomazic, M. L., Rodríguez, A. E., Enciso, N., Brante-Bernier, J., Honores, P., Godoy-Alfaro, C., Abarca, C., Alegría-Morán, R., & Ramírez-Toloza, G. (2025). Risk factors and spatial distribution of gastrointestinal parasites in backyard poultry production systems in Central Chile. Veterinary Sciences, 12(5), 448. https://doi.org/10.3390/vetsci12050448
  • Collins, J. B., Choo, R., Shaver, A. O., Schaye, E. S., Volpe, T., Nunn, L., Lighty, M. E., Niel, K. R., Frye, E. M., Zamanian, M., & Andersen, E. C. (2025). A small-scale survey of fenbendazole resistance in Ascaridia galli and Heterakis gallinarum, two common ascarid parasites of poultry. Poultry Science, 104(11), 105808. https://doi.org/10.1016/j.psj.2025.105808
  • Höglund, J., Daş, G., Tarbiat, B., Geldhof, P., Jansson, D. S., & Gauly, M. (2023). Ascaridia galli: An old problem that requires new solutions. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 23, 1-9. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2023.07.003
  • Servicio Agrícola y Ganadero. (2019). Enfermedades de denuncia obligatoria. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/enfermedades_denuncia_obligatoria_sag_9-10-2019.pdf
  • Torres, P., Franjola, R., Yáñez, L., Díaz, V., González, E., & Montecinos, M. I. (1974). Estudio preliminar sobre helmintos y artrópodos del Gallus gallus domesticus en la Provincia de Valdivia, Chile. Boletín Chileno de Parasitología, 29, 115-117.
  • Hauck, R. (2024). Helmintiasis en aves de producción. En Manual de veterinaria de MSD. https://www.msdvetmanual.com/es/aves-de-corral/helmintiasis/helmintiasis-en-aves-de-producción

Cómo citar esta ficha

Conejeros, A. (2026). Nematodos intestinales (Ascaridia, Heterakis, Capillaria). Guía de enfermedades, Evidencia Vet. URL permanente: https://evidenciavet.cl/monogastricos/enfermedades-aves/nematodos-intestinales/.