Distomatosis

Especies afectadas y susceptibilidad

En Chile, sobre todo bovinos y equinos. En los mataderos chilenos en 2024 se decomisó por distomatosis el hígado del 42,9% de los bovinos y del 20,1% de los equinos faenados, y del 0,12% de los ovinos (SAG, 2025).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: la baja cifra en ovinos refleja en parte que el 92% de los ovinos se faena en Magallanes, región sin decomisos por distomatosis (SAG, 2025), y no necesariamente una menor susceptibilidad.

Personas. La fasciolosis es zoonótica; hay zonas endémicas en regiones andinas, incluida Chile (Cuervo et al., 2025).

El agente

Fasciola hepatica es el único agente de la fasciolosis en América (Cuervo et al., 2025).

Ciclo de vida (Hou et al., 2026):

• El animal ingiere metacercarias con el pasto.
• Las fasciolas juveniles atraviesan la pared intestinal y el peritoneo, y migran por el hígado durante varias semanas.
• Llegan a los conductos biliares a las 6 a 8 semanas, y los huevos aparecen en las heces desde las 8 a 12 semanas.

El caracol. En Chile y Argentina, el caracol nativo Lymnaea viator facilitó el establecimiento del parásito y su avance hacia zonas más frías (Cuervo et al., 2025).

Diversidad genética. La primera caracterización genética de F. hepatica en Chile, con fasciolas de bovinos y equinos de la zona central, encontró un 80% de secuencias únicas del gen cox1 completo (Cabrera et al., 2024).

Epidemiología en Chile

Principal causa de decomiso. De 487.703 decomisos por las principales patologías inspeccionadas en mataderos en 2024, la distomatosis explicó el 70% (67% en 2023). Los animales afectados fueron el 5% del total faenado (SAG, 2025).

Regiones (SAG, 2025):

• Biobío: 691 hígados decomisados por cada 1.000 animales faenados.
• Ñuble: 585 por cada 1.000.
• Región Metropolitana: 378 por cada 1.000.
• Arica y Parinacota y Magallanes: sin decomisos.

Los datos corresponden a la región donde se faenó el animal, no a la de su origen (SAG, 2025).

Denuncias. En 2024, la distomatosis fue el 3,7% de los diagnósticos de las denuncias atendidas en ovinos (SAG, 2025).

Avance hacia el sur. En la Patagonia, el área endémica se ha extendido hacia el sur, y un estudio vinculó esa expansión con el cambio climático (Cuervo et al., 2025).

Transmisión y factores de riesgo

Contacto con el hábitat del caracol. Los animales se infectan al pastorear donde vive el caracol; el riesgo depende de la humedad y la temperatura, y la reinfección puede ocurrir poco después de tratar si los animales vuelven a esas zonas (Hou et al., 2026).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: los potreros con vegas, acequias, bordes de tranques o zonas que se inundan concentran el riesgo.

Signos clínicos

Infección crónica. Causa pérdidas productivas a menudo subestimadas: menor ganancia de peso, menos leche, menor fertilidad y menor valor de la canal, además de más susceptibilidad a infecciones bacterianas secundarias (Hou et al., 2026).

Cambios en la sangre (Temesgen et al., 2025):

• Menos hemoglobina, hematocrito y glóbulos rojos.
• Menos proteínas totales y albúmina.
• Más eosinófilos y enzimas hepáticas (AST, ALT y fosfatasa alcalina).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: la baja de albúmina explica el edema submandibular. En ovinos, una infección masiva con muchas fasciolas juveniles puede causar muerte súbita por daño hepático agudo.

Hallazgos de necropsia

Distomatosis aguda: hígado aumentado de tamaño con bordes redondeados, hemorragias puntiformes y fasciolas juveniles en el parénquima (Temesgen et al., 2025).

Distomatosis crónica: hígado pequeño y firme, con la cápsula arrugada y los conductos biliares dilatados con fasciolas en su interior (Temesgen et al., 2025).

Histopatología

Fase aguda. Focos de necrosis por la migración de las larvas e infiltración de eosinófilos en los trayectos (Herrera-Torres et al., 2024; Temesgen et al., 2025).

Fase crónica. Fibrosis, proliferación de conductos biliares y metaplasia del epitelio biliar (Temesgen et al., 2025). En ovinos, focos de necrosis y hemorragia junto a conductos biliares agrandados con fasciolas adultas, que sugieren daño mientras el parásito se alimenta (Herrera-Torres et al., 2024).

Diagnóstico de laboratorio

El problema de las primeras semanas. La infección temprana puede tener consecuencias clínicas y no ser detectable por huevos en las heces (Hou et al., 2026).

Pruebas disponibles:

• Huevos en heces: desde las 8 a 12 semanas de infección; sensibilidad relativamente baja (Hou et al., 2026; Nur Hafizah et al., 2023).
• Coproantígeno por ELISA en heces: detecta infección activa desde las 5 a 6 semanas y se vuelve negativo cuando el parásito muere (Hou et al., 2026).
• ELISA en suero: los ELISA indirectos tienen alta sensibilidad y especificidad; la catepsina L es el antígeno más favorable (Nur Hafizah et al., 2023).
• PCR en heces: puede detectar la infección antes de que aparezcan huevos (Hou et al., 2026).

Matadero. El decomiso de hígados es en Chile la principal fuente de datos sobre la enfermedad (SAG, 2025).

Diagnóstico diferencial

Hidatidosis, la segunda causa de decomiso de vísceras en Chile; pueden coexistir en el mismo hígado (SAG, 2025; Baquedano et al., 2026).

Es una inferencia de Evidencia Vet a partir del cuadro clínico: ante adelgazamiento y anemia también entran los nematodos gastrointestinales y la paratuberculosis; ante muerte súbita en ovinos, la enterotoxemia y otras clostridiosis.

Tratamiento

Triclabendazol. Es el fármaco central porque es muy activo contra las fasciolas juveniles y adultas (Hou et al., 2026).

Otros fasciolicidas (albendazol, closantel, clorsulón, nitroxinil, oxiclozanida, rafoxanida). Actúan sobre todo contra las formas adultas; tratar cuando predominan las juveniles con uno de ellos puede parecer falta de eficacia sin que haya resistencia (Hou et al., 2026).

Resistencia en Chile. En un predio del valle central con distomatosis permanente, el triclabendazol a 12 y 24 mg/kg no redujo los huevos en heces respecto de los bovinos sin tratar, mientras que el nitroxinil sí los redujo. Fue la primera descripción de resistencia a triclabendazol en Chile (Romero et al., 2019).

Cómo evaluar si el tratamiento funcionó (Hou et al., 2026):

• Comparar huevos o coproantígeno antes y después del tratamiento.
• Una reducción de 95% o más indica eficacia adecuada; de 90 a 94%, eficacia dudosa; menos de 90%, compatible con resistencia, una vez descartados error de dosis, etapa del parásito y reinfección.

Pronóstico

Es una inferencia de Evidencia Vet: bueno con tratamiento eficaz en la infección crónica; la fibrosis del hígado no se revierte. Después del tratamiento con triclabendazol, en un estudio algunas alteraciones metabólicas persistieron (Rodríguez et al., 2026).

Prevención

Manejo integrado (Hou et al., 2026):

• Manejar potreros y agua para limitar el contacto con el hábitat del caracol.
• Separar el pastoreo en los períodos de mayor riesgo.
• Tratar a los grupos de mayor riesgo en vez de a todo el rebaño.
• Registrar el fármaco, el momento y el resultado de cada tratamiento.

Respuesta a vacunas. En terneros, la infección por F. hepatica después de vacunar contra fiebre aftosa redujo la calidad de los anticuerpos inducidos por la vacuna (Rodríguez et al., 2026).

Riesgo zoonótico

Personas. Hay zonas endémicas de fasciolosis humana en regiones andinas de Bolivia, Perú, Chile, Ecuador y Venezuela (Cuervo et al., 2025). El triclabendazol es también el fármaco de elección en personas, por lo que la resistencia en el ganado es una preocupación (Cuervo et al., 2025).

Resistencia en personas en Chile. Se describieron cuatro pacientes chilenos con F. hepatica que no respondió a dosis repetidas de triclabendazol; todos habían consumido berros o agua de vegas donde pastoreaba ganado (Peña-Espinoza, 2018).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir del ciclo: la infección humana ocurre al comer berros u otros vegetales de agua crudos, o al beber agua con metacercarias, no por el contacto con el ganado.

Referencias

• Baquedano, M. S., Stoore, C., Hidalgo, C., & Paredes, R. (2026). Distribution of CD3⁺ T lymphocytes in the adventitial layer of Echinococcus granulosus sensu stricto cysts in cattle and sheep with or without Fasciola hepatica co-infection. Veterinary Parasitology, 347, 110864. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2026.110864
• Cabrera, G., Cabezas, C., Estay-Olea, D., Stoore, C., Baquedano, M. S., Paredes, R., & Hidalgo, C. (2024). Molecular characterization of Fasciola hepatica obtained from cattle and horse in Central Chile. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, 56, 101130. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2024.101130
• Cuervo, P. F., Mera y Sierra, R., Artigas, P., Fantozzi, M. C., Bargues, M. D., & Mas-Coma, S. (2025). Impact of climate change on the spread of fascioliasis into the extreme south of South America. PLoS Neglected Tropical Diseases, 19(8), e0013433. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013433
• Herrera-Torres, G., et al. (2024). Liver histopathological and immunohistochemical evaluation from Fasciola hepatica experimentally infected and reinfected sheep. Animals, 14(12), 1833. https://doi.org/10.3390/ani14121833
• Hou, M., Gao, J., Liu, X., Zhou, J., Ma, T., Zhang, Y., Qiu, H., & Wang, C. (2026). Triclabendazole and other fasciolicides: resistance of Fasciola hepatica in ruminants. Animals, 16(7), 1044. https://doi.org/10.3390/ani16071044
• Nur Hafizah, S., Noor Izani, N. J., Ahmad Najib, M., & Wan-Nor-Amilah, W. A. W. (2023). Immunodiagnosis of fascioliasis in ruminants by ELISA method: a mini-review. Malaysian Journal of Medical Sciences, 30(4), 25-32. https://doi.org/10.21315/mjms2023.30.4.3
• Peña-Espinoza, M. (2018). Drug resistance in parasitic helminths of veterinary importance in Chile: status review and research needs. Austral Journal of Veterinary Sciences, 50(2). https://doi.org/10.4067/S0719-81322018000200065
• Rodríguez, C., Parodi, P., Menchaca, A., Saravia, A., Wilda, M., Capozzo, A. V., & Freire, T. (2026). Timing of Fasciola hepatica infection selectively impairs antibody avidity after foot-and-mouth disease vaccination in cattle. Frontiers in Immunology, 17, 1874141. https://doi.org/10.3389/fimmu.2026.1874141
• Romero, J., Villaguala, C., Quiroz, F., Landaeta-Aqueveque, C., Alfaro, G., & Pérez, R. (2019). Flukicide efficacy against Fasciola hepatica of triclabendazole and nitroxynil in cattle of the central valley of Chile. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 28(1), 164-167. https://doi.org/10.1590/s1984-296120180089
• SAG. (2025). Sanidad animal en 2024, Chile. Servicio Agrícola y Ganadero. https://sag.cl/sites/default/files/Informe%20Sanidad%202024%20%2816-05-2025%29%20Pliego.pdf
• Temesgen, A. B., et al. (2025). Haematobiochemical alterations and pathological lesions induced by fasciolosis in slaughtered cattle at Gondar ELFORA Abattoir, Northwest Ethiopia. Veterinary Medicine and Science, 11(4), e70461. https://doi.org/10.1002/vms3.70461