Mastitis bovina

Especies afectadas y susceptibilidad

Afecta a todas las hembras en lactancia; en esta ficha el foco es la vaca lechera.

Vacas con más riesgo. En lecherías del sur de Chile, las vacas con producción sobre el promedio, más partos y recuento de células somáticas alto en el primer control lechero tuvieron más probabilidad de mastitis clínica en los primeros 200 días de lactancia (Astorga-Jorquera et al., 2022).

Cojera antes del parto. En 25 lecherías a pastoreo del sur, las vacas cojas en el preparto tuvieron más mastitis clínica después del parto (Calderón-Amor et al., 2021).

Frecuencia. La mastitis clínica es la enfermedad que más se registra en las vacas lecheras y aparece en alrededor del 20% al 40% de las lactancias en Estados Unidos, con más casos en vacas multíparas (Ruegg, 2025).

El agente

Casi toda mastitis se debe a una infección intramamaria, sobre todo bacteriana, aunque también la causan algas, levaduras y otros agentes (Ruegg, 2025).

Contagiosos y ambientales. Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae y Mycoplasma bovis pasan de una vaca a otra en la ordeña. Los coliformes y los estreptococos ambientales llegan desde las camas, el barro y las heces. En Latinoamérica circulan ambos tipos, a diferencia de Europa y Norteamérica, donde predominan los contagiosos (Dhital et al., 2026).

Clínica y subclínica tienen agentes distintos. En Norteamérica, las bacterias gramnegativas, como los coliformes, predominan en los casos clínicos con cultivo positivo, y las grampositivas en los subclínicos (Ruegg, 2025).

Cultivo negativo. Entre el 25% y el 35% de las muestras de mastitis clínica no crecen en el cultivo. La mayoría corresponde a infecciones que ya se curaron solas y tienen buen pronóstico sin antimicrobial (Ruegg, 2025).

Agentes estudiados en Chile:

• Mycoplasma bovis: los aislados chilenos de mastitis y neumonía son muy homogéneos; el 97,8% pertenece a un mismo clon, ST60, emparentado con cepas de Canadá (Goddard et al., 2025).
• Prototheca: de 66 aislados de mastitis y de leche de estanque, 65 fueron Prototheca bovis y uno P. ciferrii, primer reporte de esta especie en mastitis en Chile. No tiene tratamiento eficaz y su control exige eliminar a las vacas infectadas (Rodriguez et al., 2025).

Epidemiología en Chile

Primer control lechero como alerta. En 8.772 vacas de 10 lecherías del sur, los días de lactancia, la grasa, la urea, el número de partos, la estación y el recuento de células somáticas del primer control lechero se asociaron a mastitis clínica hasta los 200 días. Una grasa más alta se asoció a menos mastitis (Astorga-Jorquera et al., 2022).

Costo reproductivo. En 30.757 lactancias de 26 lecherías de tres zonas de Chile, las vacas con al menos una enfermedad en los primeros 50 días, incluida la mastitis, tardaron más en preñarse. Tuvieron 0,84 veces la probabilidad de preñez a los 150 días y 0,25 veces la de seguir en el rebaño a esa fecha, comparadas con vacas sanas (Pinedo et al., 2016).

Leche de descarte. En 36 lecherías del sur, la leche de descarte, que incluye la de vacas tratadas por mastitis y que muchas veces se da a las terneras, contenía S. aureus en el 33,3% de los predios, residuos de antimicrobiales en el 55,6% y E. coli productora de betalactamasas de espectro extendido en cinco predios (Ulloa et al., 2025).

Lo que esto implica. La mastitis no se queda en la ubre: resta preñez y vida productiva, y su tratamiento vuelve a la lechería en la leche de las terneras como residuos y bacterias resistentes.

Lo que no se sabe. No se encontraron datos nacionales publicados de incidencia de mastitis clínica, de recuento de células somáticas de estanque promedio ni de los agentes más frecuentes por zona en Chile.

Transmisión y factores de riesgo

Agentes contagiosos. Viven en la ubre y pasan de vaca a vaca durante la ordeña, por el equipo, las manos de los ordeñadores u otras formas de contaminación cruzada (Dhital et al., 2026).

Agentes ambientales. Vienen del ambiente de la vaca, como las camas y el barro (Dhital et al., 2026).

Factores de riesgo en lecherías chilenas:

• Más partos y mayor producción (Astorga-Jorquera et al., 2022).
• Recuento de células somáticas alto en el primer control (Astorga-Jorquera et al., 2022).
• Cojera en el preparto (Calderón-Amor et al., 2021).

Signos clínicos

Mastitis subclínica. La leche y la ubre se ven normales. Se detecta midiendo las células somáticas, sobre todo neutrófilos: se define cuando el recuento de un cuarto supera las 200.000 células por mililitro (Ruegg, 2025).

Mastitis clínica (Ruegg, 2025):

• Solo leche anormal: alrededor de la mitad de los casos.
• Leche anormal y ubre inflamada: alrededor del 35%.
• Vaca con signos generales: entre el 5% y el 15%.

Evolución. Con o sin curación bacteriológica, la leche suele volver a verse normal en 3 a 5 días. El recuento de células puede tardar más de 4 a 6 semanas en bajar de 200.000 aunque la infección se haya curado (Ruegg, 2025).

Lo que esto implica. Que la leche vuelva a verse normal no significa que la vaca se curó, y que el recuento siga alto no significa que el tratamiento falló.

Hallazgos de necropsia

Es una inferencia de Evidencia Vet: la mastitis rara vez se diagnostica en la necropsia. En una vaca muerta por una mastitis grave, la necropsia muestra la glándula afectada y los cambios de la toxemia, y el cultivo de la leche y de la glándula identifica el agente y orienta las medidas en el rebaño.

Histopatología

La infección intramamaria provoca una respuesta inflamatoria con llegada de neutrófilos a la leche, que es lo que mide el recuento de células somáticas (Ruegg, 2025). La histopatología de la glándula no se usa en el diagnóstico de rutina.

Diagnóstico de laboratorio

Recuento de células somáticas (Ruegg, 2025):

• Por cuarto o por vaca: sobre 200.000 células por mililitro indica mastitis subclínica.
• De estanque: indicador del rebaño. En Estados Unidos, el promedio bajó de 326.000 a 181.000 células por mililitro entre 2000 y 2024.

Prueba de California (CMT). Estima en el pie de la vaca el contenido de células de cada cuarto y sirve para elegir qué cuartos cultivar (Ruegg, 2025).

Cultivo de leche. Identifica el agente y permite decidir el tratamiento. Un cultivo negativo en un cuarto con recuento alto no siempre indica un cuarto sano: la infección puede estar bajo el límite de detección, de 100 unidades formadoras de colonias por mililitro (Ruegg, 2025).

Agentes que no responden al tratamiento. Prototheca no tiene tratamiento eficaz; en Chile todas sus cepas resistieron fluoroquinolonas, betalactámicos y sulfonamidas (Rodriguez et al., 2025).

Diagnóstico diferencial

• Lesiones de pezones por enfermedades vesiculares, como la fiebre aftosa, que en Chile está ausente y es de denuncia obligatoria (SAG, 2025).

Es una inferencia de Evidencia Vet a partir del cuadro clínico: ante una ubre aumentada sin cambios en la leche entra el edema de ubre del periparto; ante sangre en la leche, los traumatismos; y ante una caída brusca de la leche en varias vacas sin cambios en la ubre, la leptospirosis y las enfermedades metabólicas del periparto.

Tratamiento

Tratar según el agente. La mayoría de los antimicrobiales de una lechería se usa para tratar y prevenir la mastitis, por lo que los protocolos deben basarse en evidencia (Ruegg, 2025):

• Muchos casos clínicos se deben a agentes que se curan solos o que están fuera del espectro de los antimicrobiales aprobados.
• Los protocolos selectivos guiados por cultivo usan antimicrobiales sobre todo en los casos por grampositivos.
• Los antimicrobiales intramamarios de espectro reducido contra grampositivos son los apropiados para el tratamiento de rutina; los de amplio espectro y los inyectables se reservan para casos seleccionados.

Mastitis subclínica. La mayoría se trata al secado, con antimicrobiales intramamarios (Ruegg, 2025). Para la decisión de qué vacas tratar al secado, ver secado selectivo en lecherías.

Tratamientos alternativos. La mayoría carece de datos de eficacia (Ruegg, 2025).

Pronóstico

Mastitis clínica con cultivo negativo: muy bueno sin antimicrobial (Ruegg, 2025).

Mastitis por Prototheca: malo; la vaca se elimina (Rodriguez et al., 2025).

Para la vaca: una enfermedad al inicio de la lactancia reduce la probabilidad de preñez y de permanecer en el rebaño (Pinedo et al., 2016).

Prevención

Higiene de la ordeña. Buena preparación de la ubre, equipo de ordeña limpio y desinfectado y desinfección de pezones después de la ordeña (Dhital et al., 2026). Es una inferencia de Evidencia Vet que ordeñar al final a las vacas infectadas reduce el contagio de los agentes contagiosos.

Ambiente limpio y seco. Camas limpias y secas y buena ventilación reducen la carga de agentes en el ambiente (Dhital et al., 2026).

Secado. Es el momento de tratar la mastitis subclínica y de prevenir infecciones nuevas (Ruegg, 2025).

Salud del preparto. Prevenir y tratar las cojeras antes del parto se asocia a menos mastitis después (Calderón-Amor et al., 2021).

Leche de descarte. No dar a las terneras leche de vacas tratadas sin pasteurizar (Ulloa et al., 2025).

Lo que esto implica. Para usar menos antimicrobial en la mastitis hay que saber qué agente hay en cada caso, y el cultivo en el predio es la herramienta que lo permite.

Riesgo zoonótico

No es una zoonosis en sí. El riesgo para las personas está en la leche cruda, que puede llevar bacterias de la ubre, y en la resistencia antimicrobiana: la mastitis es el principal motivo de uso de antimicrobiales en las lecherías (Dhital et al., 2026; Ruegg, 2025).

En Chile. La leche de descarte de lecherías del sur tenía E. coli productora de betalactamasas de espectro extendido en cinco predios (Ulloa et al., 2025).

Referencias

• Astorga-Jorquera, F., Aly, S. S., Cornuy, C., Mella, A., Ulloa, F., & Pereira, R. (2022). First test-day postcalving risk factors for clinical mastitis in southern Chile dairy farms: a retrospective cohort study. Journal of Dairy Science, 105(6), 5462-5470. https://doi.org/10.3168/jds.2021-21302
• Calderón-Amor, J., Hernández-Gotelli, C., Strappini, A., Wittwer, F., & Sepúlveda-Varas, P. (2021). Prepartum factors associated with postpartum diseases in pasture-based dairy cows. Preventive Veterinary Medicine, 196, 105475. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2021.105475
• Dhital, B., Pudasaini, R., Hsieh, J. C., Pudasaini, R., Chen, Y. T., Chao, D. Y., & Chiang, H. I. (2026). One Health perspective on antimicrobial resistance in bovine mastitis pathogens: a narrative review. Antibiotics, 15(1), 84. https://doi.org/10.3390/antibiotics15010084
• Goddard, M., Martín, J. S., Molina-Mora, J. A., Collado, L., Rodriguez, J., Galarce, N., & Mella, A. (2025). Genetic diversity of Mycoplasma bovis isolated from bovine respiratory disease and bovine mastitis in Chile. Veterinary Microbiology, 311, 110752. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2025.110752
• Pinedo, P. J., Melendez, P., Paudyal, S., Krauss, R., Arias, F., Lopez, H., Luco, A., & Vergara, C. F. (2016). Association between disease occurrence and fertility of dairy cows in three geographic regions of Chile. Theriogenology, 86(3), 817-823. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.03.001
• Rodriguez, J., Sepúlveda-García, P., Canales, N., Goddard, M., Cornuy, C., Morales, Á. G., Collado, L., & Mella, A. (2025). Molecular and phenotypic characterization of Prototheca species isolates associated with bovine mastitis cases in Chile. Animals, 15(19), 2869. https://doi.org/10.3390/ani15192869
• Ruegg, P. L. (2025). The future of udder health: antimicrobial stewardship and alternative therapy of bovine mastitis. JDS Communications, 6(Suppl. 1), S31-S36. https://doi.org/10.3168/jdsc.2025-0839
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2025). Sanidad animal en 2024, Chile. https://sag.cl/sites/default/files/Informe%20Sanidad%202024%20%2816-05-2025%29%20Pliego.pdf
• Ulloa, F., Penati, M., Hernández-Agudelo, J. M., Tejeda, C., Steuer, P., Addis, M. F., Mella, A., Canales, N., Soto, J. P., & Salgado, M. (2025). Analysis of pathogenic bacteria and antimicrobial residues in bovine waste milk on dairy farms in southern Chile. Frontiers in Veterinary Science, 12, 1613185. https://doi.org/10.3389/fvets.2025.1613185