Evidencia VetLas vacunas son bacterinas inactivadas y su protección es específica de serovar. En lecherías chilenas, vacunar se asoció a mucho menor riesgo de que el rebaño estuviera infectado, pero no evita que las vacas se infecten ni que excreten en la orina.
Leptospirosis en rumiantes
Sinónimos: Leptospirosis bovina, Leptospirosis ovina, Hardjo · Inglés: Leptospirosis in ruminants
Especies afectadas y susceptibilidad
Las leptospiras patógenas infectan a casi todos los mamíferos. Cada especie actúa como hospedero de mantención de ciertos serovares, que se mantienen en ella con pocos signos, o como hospedero accidental de otros, que le causan una enfermedad más grave (Azócar-Aedo, 2023).
Bovinos. Son el hospedero de mantención del serovar Hardjo, lo que permite planificar su control (OMSA, 2021).
En Chile. Las prevalencias de anticuerpos publicadas van de 59% a 91% en bovinos, 24% en caprinos y 7,1% en ovinos, aunque la mayoría de esos estudios tiene décadas (Salgado et al., 2015; Azócar-Aedo, 2023).
Fauna. El 15,4% de los pudúes silvestres de Chile tenía anticuerpos contra leptospiras, con altas seroprevalencias contra Hardjo, lo que sugiere transmisión desde el ganado (Hidalgo-Hermoso et al., 2024).
Perros y gatos. Ver la leptospirosis en perros y en gatos.
El agente
Las leptospiras son espiroquetas que colonizan los túbulos renales y se eliminan por la orina durante largos períodos (Monti et al., 2023).
Hardjo, dos tipos. En bovinos circulan Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo (tipo Hardjo bovis) y Leptospira interrogans serovar Hardjo (tipo Hardjoprajitno). Según la literatura que revisan Salgado et al. (2015), el segundo se asocia a una tasa de abortos de alrededor de 30%, frente a 3% a 10% del primero.
En Chile. En 2015 se aisló por primera vez L. interrogans Hardjoprajitno en bovinos chilenos, de un ternero muerto en una lechería de Los Ríos (Salgado et al., 2015).
Epidemiología en Chile
Lecherías del sur. En 147 lecherías y 4.876 vacas en ordeña, la prevalencia fue de 42,2% de los rebaños y 5,9% de las vacas. En los rebaños no vacunados, los serovares más frecuentes fueron Hardjo, Tarassovi y Pomona (Montes y Monti, 2021).
Pequeños productores. En 69 lecherías campesinas del sur, el 75% tenía animales con anticuerpos, y Hardjo fue el serovar del 81% de los positivos (Salgado et al., 2014).
Excreción sin signos. En seis lecherías del sur, las vacas excretaron leptospiras en la orina en forma intermitente durante 79 a 259 días (Monti et al., 2023).
En el ambiente. En sistemas agrícolas regados de la zona central, el 29,1% de 605 muestras de agua y suelo tenía ADN de leptospiras patógenas, con más positivos en verano (41,7%) (San Martin et al., 2026).
Fuera de la lista del SAG. La leptospirosis no figura entre las enfermedades de denuncia obligatoria al SAG y no hay un programa oficial de control en bovinos (Salgado et al., 2014; SAG, 2025).
Lo que esto implica. En el sur, cerca de la mitad de las lecherías tiene vacas infectadas, y muchas excretan la bacteria sin signos durante meses. El riesgo para los trabajadores existe todo el año, también cuando no hay animales enfermos.
Lo que no se sabe. No se encontraron estudios recientes en ovinos, caprinos o bovinos de carne en Chile, ni estimaciones de las pérdidas reproductivas por leptospirosis en el país (Azócar-Aedo, 2023).
Transmisión y factores de riesgo
Vías. Los animales portadores eliminan leptospiras por la orina y el aparato genital, y la infección puede llegar al feto. El contagio ocurre a través de las mucosas de los ojos, la boca y el aparato genital (OMSA, 2021).
Factores de riesgo en lecherías chilenas (Montes y Monti, 2021):
- Uso de toros para la monta: triplica el riesgo de que el rebaño esté infectado.
- Partos distribuidos todo el año: también lo triplica.
- Vacunación contra leptospira: reduce mucho el riesgo.
En pequeños productores (Salgado et al., 2014): la monta natural y el uso de un área de partos específica se asociaron a más seropositividad.
Ambiente. Agua y suelo contaminados con orina mantienen la bacteria fuera del animal (San Martin et al., 2026).
Signos clínicos
Forma aguda (OMSA, 2021):
- Vacas en ordeña: caída brusca de la leche (agalactia).
- Animales jóvenes: ictericia y hemoglobinuria (orina roja).
Forma crónica (OMSA, 2021): abortos, mortinatos, terneros débiles o prematuros e infertilidad.
El brote chileno. En una lechería de Los Ríos murieron 11 de 130 terneros, con decaimiento y orina rojiza (Salgado et al., 2015).
Abortos en Chile. En 77 lecherías del sur, la incidencia de abortos fue de 1,74 por cada 100 vacas-mes en riesgo, y la vacunación contra leptospirosis fue una de las prácticas asociadas al riesgo de aborto (Gädicke y Monti, 2013).
Hallazgos de necropsia
En el ternero de Los Ríos (Salgado et al., 2015):
- Ictericia marcada en las mucosas, el tejido subcutáneo, la grasa y los músculos.
- Petequias aisladas en los riñones.
- Vejiga con unos dos litros de orina rojiza.
Ternero de una lechería de Los Ríos muerto por leptospirosis por L. interrogans Hardjoprajitno: ictericia de mucosas, grasa e hígado, y vejiga con orina rojiza.
Necropsia · Imagen: Salgado et al. (2015), BMC Veterinary Research, figura 1. https://doi.org/10.1186/s12917-015-0369-x · CC BY 4.0
En el feto abortado. Las lesiones suelen ser poco específicas; el diagnóstico depende del laboratorio (OMSA, 2021).
Histopatología
La tinción de plata y la inmunohistoquímica ayudan a ver las leptospiras en los tejidos, pero su rendimiento depende de cuántas bacterias haya (OMSA, 2021).
Diagnóstico de laboratorio
Serología: prueba de aglutinación microscópica (MAT) (OMSA, 2021):
- Es la prueba estándar. Un título de 1/100 se considera positivo, y un aumento de cuatro veces en sueros pareados confirma una infección aguda.
- Para el rebaño: muestrear al menos 10 animales o el 10% del rebaño, lo que sea mayor.
- Limitación con Hardjo: su sensibilidad es de solo 41% con el corte de 1/100.
- Vacunación: hay que considerarla al interpretar los títulos.
ELISA (OMSA, 2021): útil para infecciones recientes y para Hardjo en leche de estanque, pero los rebaños vacunados también dan positivo.
Detección de la bacteria (OMSA, 2021):
- PCR: sensible en tejidos y fluidos, pero no identifica el serovar.
- Orina: un resultado negativo no descarta que el animal sea portador renal.
- Cultivo: muy específico, pero poco sensible; se incuba al menos 16 semanas.
Cómo diagnosticar la leptospirosis en un rebaño: qué muestra tomar, cuántos animales y cómo interpretar la serología si hay vacunación.
Esquema · Elaboración propia, Evidencia Vet · A partir de OMSA (2021), Montes y Monti (2021) y Monti et al. (2023)
Diagnóstico diferencial
Ante abortos:
- Brucelosis bovina, de denuncia obligatoria: todo aborto bovino se informa al SAG.
- Diarrea viral bovina y rinotraqueítis infecciosa bovina.
Es una inferencia de Evidencia Vet a partir del cuadro clínico: ante ictericia y orina roja en terneros también entran la hemoglobinuria bacilar por clostridios y las intoxicaciones por plantas o por cobre; ante caída brusca de la leche, la mastitis.
Tratamiento
Es una inferencia de Evidencia Vet: los antibióticos se usan en los animales enfermos y, en un brote, en el rebaño para reducir la excreción, siempre bajo indicación veterinaria y respetando los resguardos de la leche y la carne.
Pronóstico
Bueno en la mayoría de los adultos, que se infectan sin signos o con una caída de la leche en la fase aguda (OMSA, 2021; Monti et al., 2023). Grave en terneros con la forma aguda: en el brote de Los Ríos murió el 8,5% de los terneros (Salgado et al., 2015).
Prevención
Vacunación (OMSA, 2021):
- Bacterinas inactivadas; la inmunidad es en gran parte específica de serovar.
- No eliminan las infecciones ya establecidas, y los animales vacunados pueden infectarse y excretar.
Lo que muestra la evidencia chilena. Los rebaños vacunados tuvieron mucho menos riesgo de estar infectados (Montes y Monti, 2021). Pero las vacas vacunadas también se infectaron, aunque con cargas distintas de leptospiras en la orina (Monti et al., 2023). Tras aislar Hardjoprajitno en Chile, los autores recomendaron ajustar las vacunas a las cepas que circulan (Salgado et al., 2015).
Manejo reproductivo. Los rebaños que usaban toros y los que tenían partos todo el año tuvieron más riesgo (Montes y Monti, 2021). Es una inferencia de Evidencia Vet que la inseminación artificial y la concentración de los partos ayuden a reducirlo.
Riesgo zoonótico
Quiénes se exponen. Agricultores, ordeñadores, trabajadores de mataderos y médicos veterinarios, por el contacto con orina de vacas que excretan sin signos (Monti et al., 2023).
Cómo se contagian. Por contacto directo con animales infectados o, indirectamente, con agua o suelo contaminados (Monti et al., 2023).
Protección. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de las vías de contagio: protección ocular y guantes en la ordeña y en la atención de partos y abortos, y lavado de manos y heridas.
Notificación. En personas es de notificación inmediata al Ministerio de Salud (Ministerio de Salud, 2019). En animales no es de denuncia obligatoria al SAG.
Referencias
- Azócar-Aedo, L. (2023). Basic aspects and epidemiological studies on leptospirosis carried out in animals in Chile: a bibliographic review. Tropical Medicine and Infectious Disease, 8(2), 97. https://doi.org/10.3390/tropicalmed8020097
- Gädicke, P., & Monti, G. (2013). Factors related to the level of occurrence of bovine abortion in Chilean dairy herds. Preventive Veterinary Medicine, 110(2), 183-189. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2012.11.022
- Hidalgo-Hermoso, E., Verasay Caviedes, S., Pizarro-Lucero, J., et al. (2024). High exposure to livestock pathogens in southern pudu (Pudu puda) from Chile. Animals, 14(4), 526. https://doi.org/10.3390/ani14040526
- Ministerio de Salud. (2019). Decreto 7: Aprueba el reglamento sobre notificación de enfermedades transmisibles de declaración obligatoria y su vigilancia. Diario Oficial, 24 de enero de 2020. https://www.diariooficial.interior.gob.cl/publicaciones/2020/01/24/42561/01/1715587.pdf
- Montes, V., & Monti, G. (2021). Pathogenic Leptospira spp. seroprevalence and herd-level risk factors associated with Chilean dairy cattle. Animals, 11(11), 3148. https://doi.org/10.3390/ani11113148
- Monti, G., Montes, V., Tortosa, P., Tejeda, C., & Salgado, M. (2023). Urine shedding patterns of pathogenic Leptospira spp. in dairy cows. Veterinary Research, 54, 64. https://doi.org/10.1186/s13567-023-01190-w
- Organización Mundial de Sanidad Animal. (2021). Leptospirosis. En Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (cap. 3.1.12). https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.01.12_LEPTO.pdf
- Salgado, M., Otto, B., Moroni, M., Sandoval, E., Reinhardt, G., Boqvist, S., Encina, C., & Muñoz-Zanzi, C. (2015). Isolation of Leptospira interrogans serovar Hardjoprajitno from a calf with clinical leptospirosis in Chile. BMC Veterinary Research, 11, 66. https://doi.org/10.1186/s12917-015-0369-x
- Salgado, M., Otto, B., Sandoval, E., Reinhardt, G., & Boqvist, S. (2014). A cross sectional observational study to estimate herd level risk factors for Leptospira spp. serovars in small holder dairy cattle farms in southern Chile. BMC Veterinary Research, 10, 126. https://doi.org/10.1186/1746-6148-10-126
- San Martin, M. F., Quiroga, N., Casanovas-Massana, A., Botto-Mahan, C., Bacigalupo, A., Cattan, P. E., Arroyo, P., Contardo, J., Salgado, R., Yefi-Quinteros, E., & Correa, J. P. (2026). Environmental detection of pathogenic Leptospira DNA in agricultural ecosystems from a Mediterranean-climate region of central Chile. Pathogens, 15(7), 661. https://doi.org/10.3390/pathogens15070661
- Servicio Agrícola y Ganadero. (2025). Sanidad animal en 2024, Chile. https://sag.cl/sites/default/files/Informe%20Sanidad%202024%20%2816-05-2025%29%20Pliego.pdf
Cómo citar esta ficha
Conejeros, A. (2026). Leptospirosis en rumiantes. Guía de enfermedades, Evidencia Vet. URL permanente: https://evidenciavet.cl/rumiantes-ganaderia/enfermedades/leptospirosis-rumiantes/.