Rinotraqueítis infecciosa bovina

Especies afectadas y susceptibilidad

Afecta a los bovinos de todas las edades. La mayoría de las infecciones no da signos clínicos (OMSA, 2017).

Terneros. Los anticuerpos del calostro los protegen de la enfermedad clínica por BoHV-1 (OMSA, 2017).

En la fauna chilena. En la Patagonia, 18 huemules no tenían anticuerpos contra BoHV-1, mientras que los bovinos de la misma zona sí los tenían (Corti et al., 2013).

El agente

El herpesvirus bovino 1 (BoHV-1) tiene tres subtipos: 1.1, 1.2a y 1.2b. El antiguo subtipo 1.3 se reclasificó como herpesvirus bovino 5 (BoHV-5), que puede causar encefalitis en terneros (OMSA, 2017).

Latencia. Después de la infección, el virus queda latente de por vida en los ganglios nerviosos sensitivos. El estrés o el uso de corticoides pueden reactivarlo, y el animal vuelve a eliminar virus (OMSA, 2017).

Lo que esto implica. Todo bovino con anticuerpos por infección natural se considera portador del virus, aunque esté sano.

Epidemiología en Chile

Presente. El SAG clasifica la rinotraqueítis infecciosa bovina y la vulvovaginitis pustular infecciosa como presentes, con vigilancia pasiva por denuncia (SAG, 2025).

Evidencia en terreno. En la Patagonia chilena se detectaron anticuerpos contra BoHV-1 en bovinos (35 muestreados) que compartían territorio con huemules (Corti et al., 2013).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: con el virus presente y sin programa oficial, la condición de cada predio depende de sus compras, de su manejo reproductivo y de si vacuna.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios recientes publicados sobre la prevalencia de BoHV-1 en rebaños chilenos de leche o de carne, ni sobre su participación en los abortos o en el complejo respiratorio bovino del país.

Transmisión y factores de riesgo

Vía aérea. El virus se replica en las vías respiratorias altas después de entrar por el aire (OMSA, 2017).

Vía venérea. Se transmite por monta natural y por inseminación artificial con semen infectado (OMSA, 2017).

Reactivación. Un portador latente vuelve a eliminar virus con el estrés o con corticoides (OMSA, 2017).

Factores de riesgo. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de las vías de transmisión:

• Compra de animales sin conocer su condición.
• Uso de toros o semen sin certificación sanitaria.
• Situaciones de estrés en rebaños con portadores: transporte, destete, agrupamiento y parto.

Signos clínicos

La mortalidad es baja y la mayoría de las infecciones son subclínicas (OMSA, 2017).

Forma respiratoria (OMSA, 2017):

• Descarga nasal, que puede ser mucopurulenta.
• Enrojecimiento del morro (“nariz roja”).
• Conjuntivitis.

Signos generales (OMSA, 2017): fiebre, decaimiento, falta de apetito, abortos y caída de la producción de leche.

Forma genital (OMSA, 2017): vulvovaginitis pustular en las hembras y balanopostitis en los machos.

Encefalitis en terneros. La causa sobre todo el BoHV-5 (OMSA, 2017).

Hallazgos de necropsia

En la necropsia se observan rinitis, laringitis y traqueítis (OMSA, 2017).

En un aborto, el feto y la placenta se envían al laboratorio para buscar el virus junto con las otras causas de aborto.

Histopatología

La histopatología acompaña al diagnóstico, pero no lo confirma: la confirmación se hace con PCR o con aislamiento del virus (OMSA, 2017).

Diagnóstico de laboratorio

Detección del virus (OMSA, 2017):

• PCR en tiempo real: el método recomendado para detectar el virus directamente.
• Aislamiento viral: de hisopados nasales o genitales tomados en la fase aguda; el efecto citopático aparece en 2 a 4 días.

Serología (OMSA, 2017):

• Neutralización viral y ELISA indirectos o de bloqueo, en suero o leche.
• ELISA de glicoproteína E (gE): distingue a los animales infectados de los vacunados con una vacuna marcadora sin gE.
• Leche de estanque: el ELISA de bloqueo de gE solo da positivo cuando más del 10% a 15% del rebaño está infectado. Un resultado negativo no descarta la infección.

Lo que esto implica. En un rebaño vacunado con vacunas convencionales, la serología no distingue la vacuna de la infección. Solo las vacunas marcadoras permiten seguir vacunando y vigilar al mismo tiempo.

Diagnóstico diferencial

• Diarrea viral bovina, que también causa abortos, signos respiratorios e inmunosupresión.
• Brucelosis bovina, ante abortos; todo aborto bovino se denuncia al SAG.
• Mycoplasma bovis, presente en Chile en casos de enfermedad respiratoria bovina y de mastitis (Goddard et al., 2025).

Es una inferencia de Evidencia Vet a partir del cuadro clínico: ante fiebre alta con lesiones oculares y nasales también entra la fiebre catarral maligna, y ante conjuntivitis sola, la queratoconjuntivitis infecciosa bovina.

Tratamiento

No hay tratamiento antiviral. Es una inferencia de Evidencia Vet: en la forma respiratoria se tratan las infecciones bacterianas secundarias y se evitan los corticoides, que reactivan el virus latente (OMSA, 2017).

Pronóstico

Bueno para la mayoría de los animales: la mortalidad es baja (OMSA, 2017). La pérdida principal está en los abortos, la caída de la leche y la condición de portador de por vida.

Prevención

Vacunación (OMSA, 2017):

• Hay vacunas vivas atenuadas e inactivadas.
• Las vacunas marcadoras sin gE, vivas o inactivadas, permiten una estrategia de diferenciación entre vacunados e infectados (DIVA).

Bioseguridad. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de las vías de transmisión: comprar animales de rebaños libres o con serología negativa, usar semen de centros con control sanitario y aislar a los animales que ingresan.

Lo que esto implica. La vacuna reduce la enfermedad, pero no saca el virus de los portadores. Erradicar la IBR de un rebaño exige identificar y eliminar a los positivos, y eso solo es compatible con la vacunación si se usan vacunas marcadoras.

Riesgo zoonótico

No es una zoonosis: el BoHV-1 no afecta a las personas.

Notificación. Es enfermedad de denuncia obligatoria al SAG (SAG, 2025).

Referencias

• Corti, P., Saucedo, C., & Herrera, P. (2013). Evidence of bovine viral diarrhea, but absence of infectious bovine rhinotracheitis and bovine brucellosis in the endangered huemul deer (Hippocamelus bisulcus) in Chilean Patagonia. Journal of Wildlife Diseases, 49(3), 744-746. https://doi.org/10.7589/2012-04-105
• Goddard, M., Martín, J. S., Molina-Mora, J. A., Collado, L., Rodriguez, J., Galarce, N., & Mella, A. (2025). Genetic diversity of Mycoplasma bovis isolated from bovine respiratory disease and bovine mastitis in Chile. Veterinary Microbiology, 311, 110752. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2025.110752
• Organización Mundial de Sanidad Animal. (2017). Infectious bovine rhinotracheitis/infectious pustular vulvovaginitis. En Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (cap. 3.4.11). https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.04.11_IBR_IPV.pdf
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2025). Sanidad animal en 2024, Chile. https://sag.cl/sites/default/files/Informe%20Sanidad%202024%20%2816-05-2025%29%20Pliego.pdf