Sedimentación fecal: simple y con formalina y acetato de etilo

Para qué sirve

El principio inverso a la flotación. En vez de hacer subir los huevos con una solución densa, se deja que se vayan al fondo en agua o formalina y se descarta el líquido de arriba con el detrito fino (Zajac et al., 2021).

Para huevos que no flotan. Se usa para los huevos de trematodos, acantocéfalos y algunos cestodos y nematodos que no flotan en las soluciones habituales (Zajac et al., 2021; Barrantes Murillo y Duncan, 2026). Los huevos operculados de trematodos, como los de Fasciola, son el caso típico (Conboy, 2025).

Con heces fijadas. También recupera quistes de Giardia de muestras fijadas en formalina (Barrantes Murillo y Duncan, 2026).

Qué detecta y qué no

Detecta:

• Huevos de Fasciola hepatica y de otros trematodos (Conboy, 2025).
• Huevos de acantocéfalos y de algunos cestodos y nematodos densos (Zajac et al., 2021).
• Quistes de Giardia fijados en formalina (Barrantes Murillo y Duncan, 2026).

Limitaciones (Zajac et al., 2021; Barrantes Murillo y Duncan, 2026):

• La sedimentación simple concentra poco: limpia la muestra, pero el sedimento sigue lleno de detrito y la lectura toma tiempo.
• No reemplaza a la flotación para los huevos comunes de perros y gatos.

Cuándo pedirla. Es una inferencia de Evidencia Vet: en rumiantes de zonas con Fasciola, en heces que llegan fijadas en formalina, y cuando la sospecha clínica no se explica con una flotación negativa.

Paso a paso: sedimentación simple

La idea. Heces diluidas en agua y coladas, reposo para que los huevos bajen, descarte del sobrenadante y nuevos lavados hasta que el líquido quede claro; al final se lee una gota del fondo a 10X.

Parámetros según la fuente:

Fuente	Muestra	Reposo entre lavados	Lavados
Zajac et al. (2021), en vaso	~10 g en ~100 mL de agua	1 hora	al menos 2
Zajac et al. (2021), en tubo	poca muestra	3 a 5 minutos	varios
Conboy (2025), en tubo	1 a 2 g	5 minutos	3
Barrantes Murillo y Duncan (2026)	~10 g en ~100 mL	1 hora	hasta que el sobrenadante quede claro

Dos ayudas (Zajac et al., 2021):

• Una gota de detergente en el agua suelta los huevos del detrito.
• Una gota de azul de metileno al 0,1% tiñe el fondo de azul y deja los huevos de trematodos de color amarillo pardo, más fáciles de ver.

Una excepción. Para buscar huevos de Heterobilharzia americana se usa suero fisiológico en vez de agua, porque el agua los hace eclosionar (Conboy, 2025). Este parásito no se ha descrito en Chile en las fuentes revisadas.

Paso a paso: sedimentación con formalina y acetato de etilo

Por qué agregar un solvente. El acetato de etilo disuelve la grasa y arrastra el detrito hacia arriba, donde forma un tapón. El sedimento que queda al fondo sale mucho más limpio que en la sedimentación simple (Zajac et al., 2021; Manser et al., 2016).

La idea. Las heces se diluyen en formalina, se cuelan, se agitan con el solvente en un tubo tapado y se centrifugan. Al sacar el tubo se ven, de arriba abajo, el solvente con la grasa, un tapón de detrito pegado a la pared, la formalina y el sedimento. Se suelta el tapón, se descarta todo lo de arriba y se lee el sedimento resuspendido en unas gotas (Zajac et al., 2021; Manser et al., 2016).

Parámetros según la fuente:

Parámetro	Zajac et al. (2021)	Manser et al. (2016)
Muestra	~1 g	~1 g
Fijador	formalina tamponada al 10% o agua	formalina al 10% en agua, no en suero
Malla	no la especifica	0,5 mm o menos
Solvente	acetato de etilo	acetato de etilo con Triton X-100 al 0,1%
Centrifugación	~500 g, 3 a 5 minutos	1.200 g, 3 minutos
Tubo	vidrio o polipropileno, con tapa	no lo especifica

El tubo. Se usa vidrio o polipropileno, porque los solventes orgánicos disuelven algunos plásticos (Zajac et al., 2021).

Un sustituto menos tóxico. Zajac et al. (2021) mencionan Hemo-De como alternativa al acetato de etilo, con resultados equivalentes en la sedimentación por centrifugación.

Los protocolos varían, y eso cambia el resultado

Una encuesta a laboratorios. En una evaluación externa de calidad del Reino Unido, el 96% de 200 laboratorios usaba alguna versión de la misma técnica de formalina y solvente, pero con diferencias en la dilución de la formalina, el tamaño de la malla (de 0,35 a 1,5 mm, o ninguna), la velocidad de centrifugación (de 500 a 3.500 rpm), el tiempo (de 1 a 10 minutos) y el solvente (éter, acetato de etilo o ninguno) (Manser et al., 2016).

Qué recuperó más (Manser et al., 2016):

• Formalina diluida en agua, mejor que en suero fisiológico.
• Una malla de 425 µm, mejor que una más gruesa, que deja pasar detrito que tapa los huevos.
• Acetato de etilo con Triton X-100 al 0,1%, mejor que el éter, que atrapaba huevos y quistes en el tapón.
• Más fuerza y tiempo: 3.000 rpm (1.200 g) por 3 minutos, mejor que 1 minuto, sin dañar los parásitos a los 10 minutos.

Las fuentes difieren en la fuerza. Zajac et al. (2021) centrifugan a unos 500 g; Manser et al. (2016) recomiendan 1.200 g. El estudio de Manser se hizo en laboratorios de parasitología humana; es una inferencia de Evidencia Vet que el principio se aplica a muestras veterinarias, pero no se encontró una validación equivalente en heces de animales.

El método de Telemann en Chile

Se usa en laboratorios chilenos. El método de concentración de Telemann modificado se usó, por ejemplo, en el estudio de parásitos intestinales de perros de criaderos de la Región Metropolitana (Correa Robles, 2014) y en encuestas de enteroparásitos en escolares (Boletín Chileno de Parasitología, 1990).

Qué es. Es una inferencia de Evidencia Vet: el Telemann es una concentración por sedimentación con formalina y un solvente, de la misma familia que la técnica con acetato de etilo de esta página. No se encontró una descripción publicada de los pasos exactos de la versión modificada que se usa en Chile, así que esta página no los describe.

Cómo leer el sedimento

Aumento. El sedimento se recorre a 10X (Zajac et al., 2021).

Lo que se busca. Los huevos de trematodos son operculados y, en el caso de Fasciola, grandes y de color amarillo pardo. Sus medidas se describen en el atlas de este manual.

Errores frecuentes

Error	Qué produce	Fuente
Buscar Fasciola con una flotación salina	Huevos que no flotan y un falso negativo	Zajac et al. (2021)
Leer una sedimentación simple sin decantar varias veces	Placa llena de detrito	Barrantes Murillo y Duncan (2026)
Malla gruesa o sin colar	Detrito que tapa los huevos	Manser et al. (2016)
Tubos de plástico común con solvente	Tubo que se deforma o se disuelve	Zajac et al. (2021)
Usar acetato de etilo sin ventilación o cerca de llamas	Riesgo para quien trabaja	Zajac et al. (2021)
Formalina en suero fisiológico	Menos parásitos recuperados	Manser et al. (2016)

Seguridad. El acetato de etilo es tóxico y muy inflamable: se guarda en un mueble ignífugo y se usa solo en lugares ventilados (Zajac et al., 2021). La formalina también se maneja con guantes y ventilación.

Lo que no se sabe

• Los pasos exactos del Telemann modificado que usan los laboratorios chilenos, y cómo se compara con la técnica de acetato de etilo.
• Si los parámetros que mejoraron la recuperación en laboratorios de parasitología humana dan el mismo resultado en heces de rumiantes, perros y gatos.

Referencias

Libro y guías

1. Barrantes Murillo, D. F., & Duncan, K. T. (2026). Comparison of current fecal examination techniques for diagnosing parasites in companion animals. Today’s Veterinary Practice, septiembre-octubre de 2026. https://todaysveterinarypractice.com/wp-content/uploads/sites/4/2026/08/TVP-2026-0910_FecalExam.pdf
2. Conboy, G. (2025). Parasitology in veterinary practice. En MSD Veterinary Manual (revisión de mayo de 2025). https://www.msdvetmanual.com/veterinary/clinical-pathology-and-procedures/diagnostic-procedures-for-the-private-practice-laboratory/parasitology
3. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Fecal examination for the diagnosis of parasitism. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 1-41). Wiley-Blackwell.

Estudios

4. Manser, M. M., Saez, A. C. S., & Chiodini, P. L. (2016). Faecal parasitology: concentration methodology needs to be better standardised. PLOS Neglected Tropical Diseases, 10(4), e0004579. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0004579

Estudios en Chile

5. Correa Robles, M. F. (2014). Fauna parasitaria gastrointestinal en perros de criaderos en la Región Metropolitana de Santiago, Chile [Tesis de pregrado, Universidad de Chile]. https://repositorio.uchile.cl/handle/2250/143088
6. Enteroparasitosis en la V Región, Chile: estudio en escolares rurales de Santo Domingo, 1987. (1990). Boletín Chileno de Parasitología, 45(1-2), 24-27. https://search.bvsalud.org/gim/resource/es/lil-96519