Atlas de huevos, quistes y ooquistes

Cómo usar este atlas

Medir antes de nombrar. El tamaño es muchas veces lo que separa especies. Para medir se usa un micrómetro ocular, calibrado con un micrómetro de platina para cada objetivo del microscopio; la calibración vale solo para esa combinación de ocular y objetivo (Zajac et al., 2021; Conboy, 2025).

Tres preguntas, en orden. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de las fuentes revisadas:

1. ¿Cuánto mide? Ubica el hallazgo en uno de los tres grupos de tamaño de la figura.
2. ¿Cómo es la pared? Gruesa o delgada, lisa o rugosa, con tapones, opérculo o estrías.
3. ¿Qué hay adentro? Una sola célula, una mórula, una larva, un embrión con ganchos o esporoquistes.

Lo que el atlas no hace. No reemplaza la PCR cuando dos especies tienen huevos iguales, ni distingue un hallazgo real de un seudoparásito por coprofagia (ver más abajo).

El atlas a escala

Cómo leer la figura. Todas las formas están dibujadas con la misma escala, así que la diferencia de tamaño que se ve es la real. Las formas son esquemas que resaltan el rasgo útil para identificar; no son fotos.

Nematodos

Parásito	Tamaño (µm)	Rasgos clave	Fuente
Toxocara canis	85 a 90 × 75	Redondo, café dorado, cáscara gruesa y rugosa; embrión oscuro	CAPC (2025a)
Toxocara cati	75 × 65	Igual a T. canis, más pequeño	CAPC (2025a)
Toxascaris leonina	75 a 85 × 60 a 75	Cáscara lisa con superficie interna ondulada; embrión más claro	CAPC (2025a)
Ancylostoma	55 a 75 × 34 a 47	Ovalado, pared delgada, en mórula	CAPC (s.f.-a)
Uncinaria	71 a 93 × 35 a 58	Igual forma, algo más grande; se superpone con Ancylostoma	CAPC (s.f.-a)
Trichuris vulpis	72 a 90 × 32 a 40	En barril, café amarillento, un tapón en cada extremo, cáscara lisa	CAPC (s.f.-b)
Eucoleus aerophilus	58 a 79 × 29 a 40	Dos tapones, superficie rugosa	CAPC (s.f.-b)
Eucoleus boehmi	54 a 60 × 30 a 35	Dos tapones, superficie rugosa, más pequeño	CAPC (s.f.-b)

Pares que confunden.

• Toxocara frente a Toxascaris: la superficie. Rugosa en Toxocara, lisa en Toxascaris (CAPC, 2025a).
• T. canis frente a T. cati: el tamaño. Un perro coprófago puede tener huevos de T. cati en sus heces sin estar infectado.
• Trichuris frente a capiláridos: el tamaño y la superficie. Trichuris es más grande y liso; Eucoleus es más pequeño y rugoso (CAPC, s.f.-b).
• Ancylostoma frente a Uncinaria: los rangos se superponen, por lo que una infección mixta no se separa bien por el huevo (CAPC, s.f.-a).

Cestodos y trematodos

Parásito	Tamaño (µm)	Rasgos clave	Fuente
Huevo de ténido (Echinococcus o Taenia)	30 a 35	Redondo, cubierta gruesa con estrías radiales, oncosfera con seis ganchos	CDC DPDx (s.f.-a)
Paquete de huevos de Dipylidium caninum	120 a 200 (paquete); 35 a 60 (huevo)	Varios huevos con seis ganchos dentro de una membrana común; 25 a 30 por paquete según CAPC	CAPC (s.f.-c)
Fasciola hepatica	130 a 150 × 60 a 90	Ovalado y grande, con opérculo; sale sin embrionar	CDC DPDx (s.f.-b)

El huevo de ténido no tiene especie al microscopio. Los de Echinococcus y Taenia son iguales (CDC DPDx, s.f.-a). En zonas con hidatidosis, un huevo de ténido en un perro se maneja como posible Echinococcus hasta identificarlo por PCR (ESCCAP, 2025a).

Fasciola no flota bien. Los huevos operculados se buscan por sedimentación (Conboy, 2025). El tamaño no separa F. hepatica de F. gigantica (CDC DPDx, s.f.-b).

Protozoos

Parásito	Tamaño (µm)	Rasgos clave	Fuente
Cystoisospora felis (gato)	45 × 33	Ooquiste ovoide, pared lisa	ESCCAP (2025b)
Cystoisospora canis (perro)	39 × 32	Ooquiste ovoide, pared lisa	ESCCAP (2025b)
Cystoisospora rivolta (gato)	26 × 24	Redondo a ovalado	ESCCAP (2025b)
Complejo C. ohioensis (perro)	21 × 18 a 24 × 20	Ovoide, pequeño	ESCCAP (2025b)
Toxoplasma gondii (gato)	10 × 12	Sin esporular al salir	CAPC (2025b)
Neospora o Hammondia (perro)	12 × 10	No se distinguen entre sí	ESCCAP (2025b)
Quiste de Giardia	8 a 12 × 7 a 10	Elipsoidal, transparente, pared refringente, 2 a 4 núcleos	CAPC (s.f.-d)
Trofozoíto de Giardia	12 a 18 × 10 a 12	Forma de pera, dos núcleos, disco adhesivo; móvil	CAPC (s.f.-d)
Cryptosporidium	4 a 6	Esférico; rojo o rosado con tinción ácido alcohol resistente	CAPC (s.f.-e)

Ooquistes que no se separan. Los de Toxoplasma no se distinguen de los de Hammondia y Besnoitia (CAPC, 2025b), y los de Neospora no se distinguen de los de Hammondia (ESCCAP, 2025b). La especie se define con PCR.

El estado del ooquiste. En heces de más de 12 horas, los ooquistes de Cystoisospora pueden verse ya con dos esporoquistes (ESCCAP, 2025b).

Quiste de Giardia frente a levaduras. Las levaduras se parecen, pero se reproducen por gemación y no tienen cuerpos medianos ni varios núcleos (CAPC, s.f.-d).

La solución cambia lo que se ve. El azúcar colapsa los quistes de Giardia, por lo que se buscan con sulfato de zinc (CAPC, s.f.-d).

Seudoparásitos y parásitos espurios

Dos tipos de impostores (Zajac et al., 2021):

• Seudoparásitos: objetos ingeridos que se parecen a parásitos, como polen, pelos de plantas o insectos, ácaros de alimentos, esporas de hongos y restos vegetales o animales.
• Parásitos espurios: huevos u ooquistes reales de parásitos de otro hospedador, que pasan por el intestino de un animal coprófago o cazador sin infectarlo.

Seudoparásitos frecuentes (Zajac et al., 2021):

Hallazgo	Cómo reconocerlo
Polen, por ejemplo de pino	Sin estructura interna clara y con la pared discontinua
Pelos de plantas o de insectos	Parecen larvas, pero no tienen tubo digestivo ni estructura interna, y un extremo se ve cortado
Ácaros de vida libre del alimento	Sin las estructuras de adherencia de las patas que tienen los ácaros parásitos
Huevos de ácaros de vida libre	Grandes, de más de 100 µm; a veces se ven las patas del ácaro adentro
Levadura Saccharomycopsis guttulatus	Común en conejos y ocasional en perros; no es patógena
Larvas de insectos o de moscas	Segmentadas, a veces vivas; las moscas ponen huevos en heces que quedan al aire en días calurosos
Nematodos de vida libre	En heces recogidas del suelo; hay adultos y estadios de distintos tamaños

Parásitos espurios frecuentes:

• Huevos de estrongílidos de rumiantes o equinos en perros que comen guano: se parecen a los de anquilostoma, pero son más grandes (Zajac et al., 2021).
• Ooquistes de coccidios de rumiantes o de Eimeria en heces de perro: se separan por tamaño y forma, y Eimeria nunca llega a la fase de dos células típica de Cystoisospora (Zajac et al., 2021; CAPC, 2025c).
• Huevos de parásitos de roedores en gatos que cazan (Zajac et al., 2021).
• Huevos de capiláridos en heces de gato: un huevo con dos tapones en un gato es más probablemente de Eucoleus aerophilus u otro capilárido que de un tricúrido felino (CAPC, s.f.-b).
• Huevos de T. cati en heces de perro.

Cómo salir de la duda. Conocer qué parásitos infectan normalmente a la especie es la mejor defensa. Ante una duda, se repite el examen después de 2 a 3 días con el animal confinado o paseado con correa (Zajac et al., 2021).

Por muestras viejas o del suelo. En heces que estuvieron mucho tiempo sobre tierra o pasto pueden aparecer nematodos de vida libre (Conboy, 2025).

Lo que no se sabe

• Las medidas vienen de guías internacionales. No se encontraron mediciones publicadas de huevos y ooquistes en muestras de animales chilenos.
• Las fuentes no siempre coinciden en los rangos: por ejemplo, los huevos por paquete de Dipylidium van de 5 a 15 o más según CDC DPDx, y de 25 a 30 según CAPC.

Referencias

1. Companion Animal Parasite Council. (2025a). Ascarid: Toxocara canis, Toxocara cati, Toxascaris leonina. https://capcvet.org/guidelines/ascarid/
2. Companion Animal Parasite Council. (2025b). Toxoplasma gondii. https://capcvet.org/guidelines/toxoplasma-gondii/
3. Companion Animal Parasite Council. (2025c). Coccidia. https://capcvet.org/guidelines/coccidia/
4. Companion Animal Parasite Council. (s.f.-a). Hookworms. https://capcvet.org/guidelines/hookworms/
5. Companion Animal Parasite Council. (s.f.-b). Trichuris vulpis. https://capcvet.org/guidelines/trichuris-vulpis/
6. Companion Animal Parasite Council. (s.f.-c). Dipylidium caninum. https://capcvet.org/guidelines/dipylidium-caninum/
7. Companion Animal Parasite Council. (s.f.-d). Giardia. https://capcvet.org/guidelines/giardia/
8. Companion Animal Parasite Council. (s.f.-e). Cryptosporidium. https://capcvet.org/guidelines/cryptosporidium/
9. Centers for Disease Control and Prevention. (s.f.-a). Taeniasis. DPDx. https://www.cdc.gov/dpdx/taeniasis/
10. Centers for Disease Control and Prevention. (s.f.-b). Fascioliasis. DPDx. https://www.cdc.gov/dpdx/fascioliasis/
11. Conboy, G. (2025). Parasitology in veterinary practice. En MSD Veterinary Manual (revisión de mayo de 2025). https://www.msdvetmanual.com/veterinary/clinical-pathology-and-procedures/diagnostic-procedures-for-the-private-practice-laboratory/parasitology
12. ESCCAP. (2025a). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). https://www.esccap.org/guidelines/gl1/
13. ESCCAP. (2025b). Control of intestinal protozoa in dogs and cats (Guideline 06, 3.ª ed., marzo de 2025). https://www.esccap.org/guidelines/gl6/
14. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Fecal examination for the diagnosis of parasitism. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 1-41). Wiley-Blackwell.