Viruela aviar

Especies afectadas y susceptibilidad

Gallinas y pavos: son los hospedadores principales del virus de la viruela aviar (OMSA, 2023).

Otras aves. También se infectan otras especies. En palomas se usa la vacuna de viruela de la paloma o una vacuna atenuada de viruela aviar (OMSA, 2023). En Chile se describió un brote en psitácidos en cautiverio (González Hein et al., 2008).

Mamíferos. La infección no se considera significativa (OMSA, 2023).

El agente

Virus ADN de la familia Poxviridae, género Avipoxvirus, de distribución mundial (OMSA, 2023).

Relación con la reticuloendoteliosis. Las cepas de campo suelen llevar secuencias del provirus de la reticuloendoteliosis integradas en su genoma, lo que se asocia a mayor virulencia; las cepas vacunales conservan solo restos (OMSA, 2023).

Resistencia. El virus persiste mucho tiempo en el ambiente avícola (OMSA, 2023).

Epidemiología en Chile

Brote en psitácidos. En una colonia de psitácidos en cautiverio enfermaron 50 de 188 aves de los géneros Agapornis, Neophema, Polytelis y Platycercus, y murieron 11. El virus se aisló de un Polytelis swainsonii. Las lesiones estaban en la piel sin plumas de la cara y las patas (González Hein et al., 2008).

Serología en psitácidos. En psitácidos en cautiverio de la Región Metropolitana, 8 de 201 aves (4%) tenían anticuerpos contra el virus (González Hein, 2006).

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios publicados sobre viruela aviar en planteles comerciales ni en aves de traspatio chilenas, ni datos sobre el uso de vacunas. No es enfermedad de denuncia obligatoria (SAG, 2019) y no figura en el informe sanitario del SAG (SAG, 2024).

Lo que esto implica. Hay avipoxvirus en el país. Según criterio de Evidencia Vet, los planteles con aves de vida larga, como reproductoras y postura en piso o al aire libre, con más exposición a insectos, son los que más dependen de la vacunación.

Transmisión y factores de riesgo

Vías (OMSA, 2023):

• Contaminación de heridas abiertas.
• Insectos picadores, como mosquitos, y el ácaro rojo Dermanyssus gallinae.

Diseminación lenta. La enfermedad se disemina lentamente dentro del lote (OMSA, 2023).

Persistencia. El virus sobrevive mucho tiempo en el ambiente del plantel (OMSA, 2023).

Signos clínicos

Forma cutánea o seca (OMSA, 2023): lesiones proliferativas tipo verruga en la cresta, las barbillas y otras zonas de piel sin plumas. La mortalidad suele ser baja, salvo que las lesiones estén alrededor de los ojos.

Forma diftérica o húmeda (OMSA, 2023): membranas diftéricas amarillentas en la boca, la lengua, el esófago, la laringe o la tráquea. La mortalidad es mayor, a veces cerca de 50% en aves jóvenes, y las lesiones de las vías respiratorias pueden asfixiar al ave.

Producción. Baja pasajera de postura y menor crecimiento en aves jóvenes (OMSA, 2023).

Hallazgos de necropsia

Forma cutánea: lesiones proliferativas tipo verruga en la piel sin plumas (OMSA, 2023).

Forma diftérica: membranas amarillentas adheridas a la mucosa de la boca, la laringe y la tráquea (OMSA, 2023). Ante lesiones traqueales, la laringotraqueítis infecciosa es el principal diferencial.

Histopatología

Hiperplasia del epitelio con inclusiones intracitoplasmáticas eosinofílicas grandes, los cuerpos de Bollinger, que contienen los cuerpos elementales o de Borrel (OMSA, 2023).

Clave para el diferencial. La laringotraqueítis infecciosa produce inclusiones intranucleares, en lugar de las intracitoplasmáticas de la viruela (OMSA, 2023).

Diagnóstico de laboratorio

Histopatología. La presencia de cuerpos de Bollinger en las lesiones confirma el diagnóstico (OMSA, 2023).

PCR y PCR en tiempo real. Son los métodos moleculares preferidos. Sirven tráqueas, hisopos traqueales, lesiones de piel y tejidos fijados en formalina (OMSA, 2023).

Otras pruebas (OMSA, 2023):

• Frotis teñidos con Gimenez, para ver los cuerpos elementales.
• Aislamiento en la membrana corioalantoidea de embriones de 9 a 12 días o en cultivos celulares.
• Serología, con el ELISA como la prueba más sensible.

Control de la vacunación. En lotes vacunados se revisa la “toma” de la vacuna en la membrana del ala 7 a 10 días después (OMSA, 2023).

Diagnóstico diferencial

• Laringotraqueítis infecciosa, ante la forma diftérica traqueal; se distingue por las inclusiones intranucleares (OMSA, 2023).
• Coriza infecciosa y micoplasmosis por M. gallisepticum, ante lesiones de la cara y los ojos.
• Heridas por picaje y deficiencias nutricionales, ante lesiones de la piel y la boca.

Tratamiento

No hay tratamiento antiviral. La OMSA recomienda vacunar cuando la enfermedad ya se diagnosticó en el plantel (OMSA, 2023). Las lesiones con infección bacteriana secundaria pueden requerir tratamiento según el agente y el antibiograma.

Pronóstico

Bueno en la forma cutánea, de baja mortalidad. Reservado en la forma diftérica, por la mortalidad por asfixia (OMSA, 2023).

Prevención

Vacunas vivas (OMSA, 2023):

• De viruela aviar o de viruela de la paloma, modificadas, de origen embrionario o de cultivo celular. También hay vacunas recombinantes que usan el virus como vector.
• Se recomiendan donde la enfermedad es endémica o ya se diagnosticó en el plantel.
• Vía: punción en la membrana del ala. Las recombinantes pueden aplicarse in ovo o al día de edad.
• Los anticuerpos maternos, que duran unas 2 a 3 semanas, pueden bloquear la vacuna, por lo que la progenie de lotes vacunados o infectados se vacuna después.
• Las aves en postura en general no se vacunan.
• La inmunidad dura de 6 a 12 meses.

Control de vectores. Como mosquitos y el ácaro rojo transmiten el virus (OMSA, 2023), controlarlos reduce el riesgo, sobre todo en sistemas sin jaula. Es una inferencia de Evidencia Vet.

Riesgo zoonótico

Sin riesgo descrito para las personas. La OMSA recomienda evitar el contacto humano con la vacuna viva (OMSA, 2023).

Notificación. No es enfermedad de denuncia obligatoria al SAG (SAG, 2019).

Referencias

• González Hein, G. A. (2006). Estudio serológico de Chlamydophila psittaci, Salmonella spp., virus Pox aviar, adenovirus y virus polioma en aves del orden Psittaciforme en cautiverio en Chile central [Tesis de pregrado, Universidad de Chile]. https://repositorio.uchile.cl/handle/2250/130847
• González Hein, G. A., González, C., & Hidalgo, H. (2008). Case report: An avian pox outbreak in captive psittacine birds in Chile. Journal of Exotic Pet Medicine, 17(3), 210-215. https://doi.org/10.1053/j.jepm.2008.05.008
• Organización Mundial de Sanidad Animal. (2023). Fowlpox. En Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (cap. 3.3.10). https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.03.10_FOWLPOX.pdf
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2019). Enfermedades de denuncia obligatoria. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/enfermedades_denuncia_obligatoria_sag_9-10-2019.pdf
• Servicio Agrícola y Ganadero. (2024). Sanidad animal en 2023, Chile. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/Informe%20Sanitario%20Animal%202023%20(Reducido).pdf