Evidencia VetLa vacunación de chanchillas y cerdas antes de la cubierta es la base del control. PPV1 es el único genotipo incluido en las vacunas.
Parvovirosis porcina
Sinónimos: Parvovirus porcino, PPV, PPV1, Síndrome SMEDI, Porcine parvovirus · Inglés: Porcine parvovirus infection
Especies afectadas y susceptibilidad
Cerdos y jabalíes. Infecta a todos los suidos; los hospedadores principales son el cerdo doméstico y el jabalí (Liu et al., 2025).
Chanchillas primerizas. Son las más susceptibles (Liu et al., 2025).
Cerdas no gestantes, verracos y engorda. Los signos son mínimos o ausentes (Vargas-Bermudez et al., 2025); en cerdos de engorda la infección suele ser subclínica, con una linfopenia pasajera entre los 5 y 10 días (Liu et al., 2025).
El agente
Virus. Virus ADN de cadena simple sin envoltura. PPV1 se describió en la década de 1960 y es el agente principal del síndrome SMEDI (Liu et al., 2025).
Estructura del genoma de los distintos genotipos de parvovirus porcino (PPV1 a PPV8).
Esquema · Imagen: Liu et al. (2025), Viruses, figura 1. https://doi.org/10.3390/v17091262 · CC BY 4.0
Nuevos genotipos. Desde 2001 se identificaron PPV2 a PPV8, cuya patogenicidad no está aclarada (Liu et al., 2025). Se han encontrado en tejidos reproductivos, pero sin una relación causal establecida con la falla reproductiva (Vargas-Bermudez et al., 2025).
Resistencia. Persiste meses fuera del hospedador y resiste la mayoría de los desinfectantes (Liu et al., 2025).
Epidemiología en Chile
Lo que no se sabe. Las fuentes revisadas no informan la prevalencia de PPV1 en Chile ni su situación oficial; no está en la lista de enfermedades del SAG.
En la región. En Colombia se ha seguido la circulación de PPV1 junto a PCV2, PRRS, PCV3 y nuevos parvovirus en cerdas primerizas y multíparas (Vargas-Bermudez et al., 2025).
En Europa. En 199 casos de aborto analizados en Europa central entre 2021 y 2023, el parvovirus se detectó en 4, menos que PRRS, clamidias y PCV2 (Bischoff et al., 2026).
Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: en planteles que vacunan bien, el parvovirus explica pocos abortos, y su aparición sugiere fallas en la vacunación de reemplazos.
Transmisión y factores de riesgo
Vías (Liu et al., 2025):
- Digestiva y respiratoria.
- Monta y semen.
- Placentaria.
- Indirecta, por roedores, alimento, agua y utensilios contaminados.
Excreción. Se elimina por heces, secreciones y semen (Liu et al., 2025).
Coinfecciones. Los fetos infectados a la vez con PCV2 y PPV1 tienen lesiones más graves y más momias pequeñas, y las chanchillas positivas a PCV2 tienen más infección por PPV1 (Vargas-Bermudez et al., 2025).
Signos clínicos
Según el momento de la gestación (Vargas-Bermudez et al., 2025; Liu et al., 2025):
- Gestación temprana: retorno al celo, reabsorción, muerte fetal y camadas más chicas.
- Hasta los 70 días: muerte y momificación de fetos.
- Después de los 70 días: es una inferencia de Evidencia Vet a partir del límite anterior: los fetos suelen sobrevivir.
Signos en la cerda. Generalmente ninguno; el problema se ve en el parto (Vargas-Bermudez et al., 2025).
Verracos. Puede bajar la calidad del semen (Liu et al., 2025).
Cepas. Las cepas de baja patogenicidad, como NADL-2, rara vez atraviesan la placenta (Liu et al., 2025).
Hallazgos de necropsia
Fetos. Fetos muertos y momificados, mortinatos y abortos (Liu et al., 2025).
Fetos de chanchillas primerizas inoculadas con dos cepas vietnamitas de PPV1 (grupos 1 y 2) y de un grupo control (grupo 3), a los 90 días de la inoculación.
Necropsia · Imagen: Trinh et al. (2024), Veterinary World, figura 8. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.1530-1537 · CC BY 4.0
Experimento en Vietnam. Dos cepas de campo de PPV1 inoculadas en chanchillas primerizas produjeron lesiones fetales (Trinh et al., 2024).
Histopatología
Lechones y fetos. Miocarditis linfohistiocitaria, neumonía intersticial, encefalitis no supurativa y nefritis intersticial (Vargas-Bermudez et al., 2025).
Diagnóstico de laboratorio
PCR. Detecta el ADN viral en fetos, mortinatos y suero; en Vietnam fue positivo el 8,2% de 392 muestras de planteles con falla reproductiva (Trinh et al., 2024).
Hemoaglutinación. El aislamiento viral con efecto citopático y hemoaglutinación es el estándar de referencia; la inhibición de la hemoaglutinación mide anticuerpos (Liu et al., 2025).
Panel de aborto. El parvovirus se analiza junto a PRRS, PCV2, clamidias y leptospiras (Bischoff et al., 2026).
Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: las momias pequeñas y los fetos son las mejores muestras, y la serología de cerdas vacunadas es difícil de interpretar.
Diagnóstico diferencial
Es una inferencia de Evidencia Vet: circovirosis, PRRS, leptospirosis, enfermedad de Aujeszky, peste porcina clásica, brucelosis porcina, clamidias y causas no infecciosas como micotoxinas.
Tratamiento
No tiene tratamiento específico (Liu et al., 2025).
Pronóstico
Para la cerda, bueno. Es una inferencia de Evidencia Vet: la cerda no enferma, pero la camada afectada se pierde en parte o completa.
Para el plantel. Es una inferencia de Evidencia Vet: el impacto depende de cuántas chanchillas lleguen sin inmunidad a la cubierta.
Prevención
Vacunación de reemplazos. Las pruebas y la vacunación son las principales herramientas de prevención; PPV1 es el único genotipo incluido en las vacunas (Liu et al., 2025).
Parvovirosis porcina: qué se ve según el momento de la gestación y cómo se previene.
Esquema · Elaboración propia, Evidencia Vet · A partir de Liu et al. (2025), Vargas-Bermudez et al. (2025) y Trinh et al. (2024)
Eficacia frente a cepas nuevas. Tres vacunas comerciales basadas en la cepa NADL-2, desafiadas con una cepa 27a, dejaron entre 64% y 92% de fetos vivos y entre 8% y 36% de momias (Trinh et al., 2024).
Limitaciones. Las vacunas actuales tienen protección cruzada limitada y no impiden del todo la excreción viral (Liu et al., 2025).
Higiene. Es una inferencia de Evidencia Vet: por la resistencia del virus, la limpieza y el control de roedores ayudan, pero no reemplazan la vacunación.
Riesgo zoonótico
Las fuentes revisadas no la tratan como una zoonosis.
Referencias
- Bischoff, H., Beumer, M., Helmer, C., Spiekermeier, I., Buch, J. M., Hundehege, C., Menke, T., Humann-Ziehank, E., & Hennig-Pauka, I. (2026). Retrospective analysis of infectious agents in swine abortion materials in the years 2021 to 2023. Veterinary Research Communications, 50(4), 357. https://doi.org/10.1007/s11259-026-11252-x
- Liu, Y., Chen, Y., Shang, Y., Deng, X., & Hao, H. (2025). Porcine parvovirus in China: recent advances, epidemiology, and vaccine strategies. Viruses, 17(9), 1262. https://doi.org/10.3390/v17091262
- Trinh, T. T. H., Do, V. T., Do, V. K., & Vu-Khac, H. (2024). Isolation and characterization of porcine parvovirus in Vietnam. Veterinary World, 17(7), 1530-1537. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.1530-1537
- Vargas-Bermudez, D. S., Mogollon, J. D., & Jaime, J. (2025). Effects of primary viruses (PCV2, PPV1, and PRRSV) involved in porcine reproductive failure as mono- and coinfections with each other and with emerging viruses (PCV3 and nPPVs). Viruses, 17(8), 1137. https://doi.org/10.3390/v17081137
Cómo citar esta ficha
Conejeros, A. (2026). Parvovirosis porcina. Guía de enfermedades, Evidencia Vet. URL permanente: https://evidenciavet.cl/monogastricos/enfermedades-cerdos/parvovirosis-porcina/.