Estreptococosis

Especies afectadas y susceptibilidad

La estreptococosis por Streptococcus phocae se ha descrito en Chile en salmón del Atlántico de cultivo, en juveniles y adultos, en estuarios y jaulas en el mar (Romalde et al., 2008). La especie S. phocae se describió originalmente en focas, y las cepas de salmón resultaron distintas de las de mamíferos marinos, lo que llevó a describir una subespecie propia, S. phocae subsp. salmonis (Avendaño-Herrera et al., 2014).

El agente

S. phocae es un coco Gram positivo, negativo a las pruebas de oxidasa y catalasa (Romalde et al., 2008). Las cepas chilenas de salmón son serológicamente homogéneas, lo que los autores señalan como una ventaja para desarrollar medidas preventivas (Romalde et al., 2008).

En 2014 se describió la subespecie S. phocae subsp. salmonis, a partir de la comparación de cepas de salmón con cepas de mamíferos marinos (Avendaño-Herrera et al., 2014).

Epidemiología en Chile

Primeros brotes. La enfermedad apareció en Chile en 1999 y se repitió durante los meses de verano, con temperaturas del agua sobre 15 °C. En algunos brotes, la mortalidad acumulada llegó a 25% (Romalde et al., 2008).

Un brote en agua fría. En julio y agosto de 2010 se describió un brote en Puerto Natales, en Magallanes, con el agua a 5 °C, en salmones de 700 a 750 g. La mortalidad acumulada fue menor a 1% (Yañez et al., 2013). El hallazgo muestra que la enfermedad no se limita al agua cálida.

Situación actual. Esta ficha no encontró datos publicados recientes sobre la frecuencia de la estreptococosis en los centros chilenos.

Marco regulatorio. La estreptococosis es una enfermedad de alto riesgo de Lista 3, según la Res. Ex. 2858/2024 (Subpesca, 2024). No tiene programa específico.

Fase productiva y factores de riesgo

La enfermedad se presenta en estuarios y en el mar. Los factores descritos son:

• Temperatura del agua sobre 15 °C, asociada a los brotes de verano (Romalde et al., 2008).
• Peces juveniles y adultos: ambas etapas se han visto afectadas.

El brote de Magallanes a 5 °C indica que la temperatura alta favorece la enfermedad, pero no es una condición necesaria (Yañez et al., 2013).

Signos clínicos

Los signos descritos en Chile son:

• Exoftalmia, con acumulación de líquido purulento y hemorrágico alrededor de los ojos (Romalde et al., 2008).
• Panoftalmitis, es decir, inflamación de todo el ojo (Yañez et al., 2013).
• Petequias en la región ventral (Romalde et al., 2008; Yañez et al., 2013).

Hallazgos de necropsia

Los hallazgos internos descritos son:

• Hemorragias en la grasa abdominal (Romalde et al., 2008; Yañez et al., 2013).
• Pericarditis (Romalde et al., 2008).
• Hígado, bazo y riñón aumentados de tamaño (Romalde et al., 2008).
• Hígado pálido con petequias (Yañez et al., 2013).
• Hemorragias en el músculo y, en algunos casos, licuefacción del músculo con úlceras profundas (Yañez et al., 2013).

Histopatología

Esta ficha no encontró una descripción histopatológica detallada de la estreptococosis por S. phocae en salmón con acceso abierto. Por el cuadro clínico y de necropsia, se esperan lesiones inflamatorias en el ojo, el corazón y el músculo con cocos Gram positivos, pero esa descripción es una inferencia y no un hallazgo publicado revisado aquí.

Diagnóstico de laboratorio

Muestras. Riñón, bazo, ojo con su contenido y músculo lesionado, de peces moribundos o recién muertos.

Qué pedir al laboratorio. Ante la sospecha, el panel de rutina combina pruebas que confirman el agente y pruebas que descartan otras causas:

Prueba	Muestra	Resultado que apoya el diagnóstico
Frotis con tinción de Gram	Contenido del ojo, riñón o lesión	Cocos Gram positivos
Cultivo en agar sangre Columbia o agar tripticasa soya con 1% de NaCl	Riñón, bazo y ojo	Colonias de cocos negativos a oxidasa y catalasa
PCR del 16S ARNr y del espaciador 16S-23S	Colonia	Identificación de S. phocae
Secuenciación del 16S ARNr	Colonia	Confirmación de especie
Antibiograma	Colonia	No confirma el diagnóstico; orienta la elección del antimicrobiano
qPCR de Piscirickettsia salmonis	Riñón, hígado y bazo	Negativo, o SRS concurrente
Cultivo o PCR de Renibacterium salmoninarum	Riñón	Negativo

Los métodos de cultivo y PCR son los usados en el brote de Magallanes (Yañez et al., 2013).

Antibiograma. Las cepas del brote de Magallanes no mostraron halos de inhibición frente a florfenicol, oxitetraciclina ni eritromicina, y se clasificaron como resistentes (Yañez et al., 2013). Es una razón de peso para cultivar y medir la sensibilidad antes de tratar.

Diagnóstico diferencial

Renibacteriosis. También es Gram positiva y produce exoftalmia, hemorragias y lesiones en el músculo. La morfología (diplobacilos en la BKD, cocos en la estreptococosis) y la PCR las separan. Ver la ficha de Renibacteriosis.

Piscirickettsiosis. Comparte hemorragias y órganos aumentados de tamaño. El Gram negativo y la qPCR la distinguen. Ver la ficha de Piscirickettsiosis.

Furunculosis atípica. Produce úlceras y forúnculos en el músculo, con bacterias Gram negativas. Ver la ficha de Furunculosis atípica.

Tratamiento

El tratamiento es antimicrobiano. Como las cepas del brote de Magallanes fueron resistentes a los tres antimicrobianos probados (Yañez et al., 2013), la elección debe basarse en el antibiograma del aislado. El producto, la dosis y la duración los define el médico veterinario tratante con la receta correspondiente.

Prevención

Esta ficha no encontró una vacuna comercial específica contra S. phocae registrada en Chile. La homogeneidad serológica de las cepas chilenas se ha señalado como una base favorable para desarrollarla (Romalde et al., 2008).

Medidas de manejo. A partir de la evidencia revisada:

• Vigilar la exoftalmia con contenido purulento en los meses cálidos.
• Cultivar y hacer antibiograma ante cada brote, por la resistencia descrita.
• No asumir que el agua fría excluye la enfermedad.

Impacto productivo

La estreptococosis tuvo brotes con mortalidad de hasta 25% en sus primeros años en Chile. No hay datos recientes que permitan dimensionar su peso actual. Su relevancia está en la resistencia antimicrobiana descrita en cepas chilenas y en su capacidad de presentarse en agua fría.

Referencias

1. Avendaño-Herrera R, Balboa S, Castro N, González-Contreras A, Magariños B, et al. Comparative polyphasic characterization of Streptococcus phocae strains with different host origin and description of the subspecies Streptococcus phocae subsp. salmonis subsp. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2014;64:1775-1781. https://doi.org/10.1099/ijs.0.056978-0
2. Romalde JL, et al. Streptococcus phocae, an emerging pathogen for salmonid culture. Veterinary Microbiology. 2008;130(1-2):198-207. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2007.12.021
3. Yañez AJ, Godoy MG, Gallardo A, Avendaño-Herrera R. Identification of Streptococcus phocae strains associated with mortality of Atlantic salmon (Salmo salar) farmed at low temperature in Chile. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 2013;33(2):59-66.
4. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). Resolución Exenta 2858/2024, que actualiza y reemplaza la clasificación de enfermedades de alto riesgo. Diciembre de 2024.