Furunculosis atípica

Especies afectadas y susceptibilidad

Aeromonas salmonicida afecta a salmónidos y a otras especies de peces, en agua dulce y en el mar (Godoy et al., 2023). En Chile, la furunculosis atípica se describió por primera vez en salmón del Atlántico en agua dulce (Godoy et al., 2010), y esa sigue siendo la especie y la fase donde más pesa.

Según el estudio de Mancilla et al. (2026), la furunculosis pasó de una incidencia casi marginal a representar el 7,8% de la mortalidad infecciosa del salmón del Atlántico en agua dulce. El informe oficial de 2025 registró un aumento de la mortalidad asociada en esa especie respecto de 2024 (Sernapesca, 2026).

El agente

A. salmonicida es un bacilo Gram negativo, anaerobio facultativo e inmóvil, de unos 1,3 a 2,0 por 0,8 a 1,3 micrómetros. Se divide en cinco subespecies. La subespecie salmonicida causa la furunculosis clásica; las demás cepas se agrupan como atípicas (Godoy et al., 2023).

Tres agentes, no uno. Lo que en Chile se diagnostica como furunculosis corresponde hoy a al menos tres organismos con perfiles distintos:

• Cepa con gen vapA. Es la cepa que dominó durante más de una década. El gen vapA codifica la capa A, una proteína de superficie que es factor de virulencia, blanco de la PCR de rutina y antígeno principal de las vacunas.
• Cepa sin gen vapA. En 2024, el 88% de las muestras positivas a furunculosis correspondió a una cepa que no tiene el gen vapA, reemplazado por genes de una cápsula bacteriana. En desafío experimental fue mucho menos virulenta que la cepa clásica, pero su mortalidad subió cuando los peces se sometieron a hacinamiento (Mancilla et al., 2025).
• Aeromonas piscicola. Una especie emparentada, nunca antes descrita en Chile, identificada por secuenciación en cuadros parecidos a furunculosis. Produjo enfermedad en desafío experimental, con mucha variación de virulencia entre cepas, y una de ellas mostró resistencia marcada a oxitetraciclina (Mancilla et al., 2026).

Temperatura. El análisis genómico separa clados psicrófilos, que crecen mejor en agua fría, y mesófilos (Godoy et al., 2023). Los aislados que emergen en Chile crecen mejor a 23 °C que a 10 °C, un tema que se revisa en el artículo Del frío al agua templada.

Inmunosupresión. A. salmonicida tiene un sistema de secreción tipo III que, según la hipótesis mejor sustentada, inyecta efectores en las células del pez y suprime su respuesta inmune mientras dura la infección. Eso da una base biológica al riesgo de infecciones secundarias. En Chile está documentada la coinfección con Flavobacterium psychrophilum en los casos de la cepa sin vapA (Mancilla et al., 2025).

Epidemiología en Chile

Marco regulatorio. La furunculosis atípica es una enfermedad de alto riesgo de Lista 3, según la Res. Ex. 2858/2024 (Subpesca, 2024). La furunculosis clásica, causada por A. salmonicida subespecie salmonicida, figuraba en la Lista 1 en la clasificación de 2008 (Subpesca, 2008) y no está en la lista vigente.

Brotes. En 2022 se analizaron 27 casos clínicos de furunculosis atípica en salmón del Atlántico en Chile, con una mortalidad media de 4,66% y brotes de unas 8 semanas (Godoy et al., 2023).

Antimicrobianos. En 2024, la furunculosis atípica explicó el 12,5% de los antimicrobianos usados en agua dulce, después de la flavobacteriosis y la renibacteriosis (Sernapesca, 2025).

Fase productiva y factores de riesgo

La enfermedad se presenta sobre todo en agua dulce, aunque A. salmonicida también afecta en el mar. La vacunación controló la furunculosis en la fase de mar, y la enfermedad reaparece en la ventana previa, en agua dulce, un punto que se revisa en el artículo Furunculosis en fase de mar.

Los factores de riesgo descritos son:

• Estrés y hacinamiento: la cepa sin vapA necesitó condiciones de estrés para expresarse clínicamente en el desafío experimental (Mancilla et al., 2025).
• Temperatura del agua: los aislados emergentes crecen mejor en agua templada.
• Cobertura vacunal incompleta: la vacuna en uso genera una respuesta débil contra las variantes nuevas (Mancilla et al., 2025; 2026).
• Coinfecciones, en particular con F. psychrophilum.

Signos clínicos

En los brotes chilenos de 2022 y 2023 se describieron (Godoy et al., 2023):

• Menor apetito, letargo y exoftalmia.
• Hemorragias alrededor de los ojos, en la base de las aletas, en el abdomen, el ano y el pedúnculo.
• Forúnculos: zonas que fluctúan a la palpación y que corresponden a necrosis del músculo.
• Descamación, erosiones y úlceras de la piel, únicas o múltiples, que pueden dejar el músculo expuesto, con bordes blancos o rojos.

Los casos de la cepa sin vapA muestran un cuadro distinto: predominan las lesiones de la piel en el dorso, el abdomen y las aletas, y la inflamación de los órganos internos es poco frecuente, aunque la bacteria se aísla de ellos (Mancilla et al., 2025). Es un cuadro que puede parecer más leve de lo que es.

Hallazgos de necropsia

Los hallazgos internos descritos en los brotes chilenos son (Godoy et al., 2023):

• Petequias en el hígado, la vejiga natatoria, el corazón y la grasa visceral.
• Hemorragias perirrenales.
• En algunos casos, riñón y bazo aumentados de tamaño.
• Enteritis hemorrágica y mucosa gástrica hiperémica.

Histopatología

Las lesiones microscópicas descritas en los brotes chilenos incluyen colonias de bacterias cocobacilares en el músculo rojo y en el músculo esquelético, con necrosis y hemorragia del tejido muscular (Godoy et al., 2023). Las colonias bacterianas en el músculo corresponden a los forúnculos que dan nombre a la enfermedad.

Diagnóstico de laboratorio

Muestras. Riñón y bazo, y el borde de las úlceras y del músculo afectado, de peces moribundos o recién muertos.

Qué pedir al laboratorio. Ante la sospecha, el panel de rutina combina pruebas que confirman el agente y pruebas que descartan otras causas:

Prueba	Muestra	Resultado que apoya el diagnóstico
Cultivo bacteriano	Riñón, bazo y borde de lesión	Colonias de A. salmonicida
PCR del gen vapA	Tejido o colonia	Positivo en la cepa clásica. Un negativo no descarta furunculosis
PCR de un segundo marcador, como fstA	Tejido o colonia	Positivo también en la cepa sin vapA
Secuenciación del aislado	Colonia	Distingue A. salmonicida de A. piscicola cuando las PCR no lo resuelven
Antibiograma	Colonia	Sensibilidad a oxitetraciclina, florfenicol y otros
Histopatología	Músculo, piel, riñón, bazo e hígado en fijador	Colonias cocobacilares con necrosis y hemorragia
Cultivo de Flavobacterium psychrophilum	Lesiones de piel y riñón	Negativo, o coinfección

El problema del vapA. La PCR de rutina se dirige al gen vapA, y la cepa que dominó en 2024 no lo tiene. Ante un cuadro compatible con PCR de vapA negativa, corresponde pedir un segundo marcador antes de descartar la enfermedad (Mancilla et al., 2025).

Antibiograma. El hallazgo de una cepa de A. piscicola resistente a oxitetraciclina (Mancilla et al., 2026) justifica cultivar y medir la sensibilidad antes de tratar.

Diagnóstico diferencial

Flavobacteriosis. Afecta a los mismos peces en agua dulce, con lesiones en la piel y las aletas, y puede coexistir con la furunculosis. El cultivo distingue ambas bacterias.

Renibacteriosis. También causa hemorragias, exoftalmia y lesiones en la piel. El Gram (R. salmoninarum es Gram positiva) y la PCR la separan. Ver la ficha de Renibacteriosis.

Micosis. Fue la primera causa infecciosa en salmón del Atlántico en agua dulce en 2025 (Sernapesca, 2026). Las hifas en las lesiones la identifican.

Daño por manejo. Las erosiones de la piel por manejo no tienen colonias bacterianas en el músculo.

Tratamiento

El tratamiento es antimicrobiano. En agua dulce, los principios activos más usados en 2024 fueron la oxitetraciclina y el florfenicol (Sernapesca, 2025). La elección del antimicrobiano, la dosis y la duración las define el médico veterinario tratante con la receta correspondiente, de preferencia con el antibiograma del aislado.

Prevención y vacunas

Vacunas. La vacuna pentavalente usada en Chile genera una respuesta de anticuerpos robusta contra la cepa clásica con vapA, pero baja o modesta contra la cepa sin vapA y contra A. piscicola (Mancilla et al., 2025; 2026). Sigue protegiendo contra la cepa para la que fue diseñada, pero su cobertura no se extiende de forma automática a las variantes que hoy explican la mayoría de los casos.

Selección genética. La resistencia a la furunculosis tiene una heredabilidad alta, con una interacción con la vacuna que se revisa en el artículo Selección genética contra furunculosis.

Medidas de manejo. A partir de la evidencia revisada:

• Evitar el hacinamiento en el transporte, la transición al mar y la vacunación.
• No descartar furunculosis por una PCR de vapA negativa.
• Cultivar y hacer antibiograma en los brotes.
• Registrar las coinfecciones en la necropsia.
• Revisar con el proveedor la cobertura de la vacuna frente a las variantes presentes en el centro.

Impacto productivo

La furunculosis no compite en magnitud con la SRS, pero su composición cambió. Lo que se diagnosticaba como una sola enfermedad por una sola bacteria corresponde hoy a al menos tres variantes con distinta virulencia, presentación y cobertura vacunal. El diagnóstico y la vacunación vigentes se diseñaron antes de conocer esa diversidad. El análisis completo está en el artículo Furunculosis en salmonicultura chilena: por qué el diagnóstico de rutina no está viendo todo el problema.

Referencias

1. Godoy M, Gherardelli V, Heisinger A, Fernández J, Olmos P, Ovalle L, et al. First description of atypical furunculosis in freshwater farmed Atlantic salmon, Salmo salar L., in Chile. Journal of Fish Diseases. 2010;33:441-449. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2010.01142.x
2. Godoy M, Montes de Oca M, Suarez R, Martinez A, Pontigo JP, Caro D, et al. Genomics of re-emergent Aeromonas salmonicida in Atlantic salmon outbreaks. Microorganisms. 2023;12(1):64. https://doi.org/10.3390/microorganisms12010064
3. Mancilla M, Ojeda A, Yuivar Y, Grandón M, Grothusen H, Oyarzún M, et al. Major antigenic differences in Aeromonas salmonicida isolates correlate with the emergence of a new strain causing furunculosis in Chilean salmon farms. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2025;15:1508135. https://doi.org/10.3389/fcimb.2025.1508135
4. Mancilla M, Ojeda A, Yuivar Y, Grandón M, Valderrama S, Oyarzún M, et al. Aeromonas piscicola in Chilean salmon farming: genomic insights, phenotypic traits, virulence and field immune response. Pathogens. 2026;15(4):402. https://doi.org/10.3390/pathogens15040402
5. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de uso de antimicrobianos y antiparasitarios en la salmonicultura nacional, año 2024. Julio de 2025.
6. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de situación sanitaria de la salmonicultura, año 2025. Marzo de 2026.
7. Subsecretaría de Pesca (Subpesca). Resolución 2352/2008, que establece la clasificación de enfermedades de alto riesgo.
8. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). Resolución Exenta 2858/2024, que actualiza y reemplaza la clasificación de enfermedades de alto riesgo. Diciembre de 2024.