Flavobacteriosis

Especies afectadas y susceptibilidad

Flavobacterium psychrophilum afecta a un amplio grupo de peces de agua dulce fría, y los salmónidos jóvenes de piscicultura son los más vulnerables (Starliper, 2011). En Chile es el patógeno bacteriano más importante de los salmónidos en agua dulce (Miranda et al., 2016).

En 2025, la flavobacteriosis fue la principal causa infecciosa de mortalidad en agua dulce en dos especies (Sernapesca, 2026):

• Trucha arcoíris: 95,1% de la mortalidad infecciosa.
• Salmón coho: 51,9%.
• Salmón del Atlántico: 24,9%, segunda después de las micosis.

El agente

F. psychrophilum es un bacilo Gram negativo, largo y delgado, de 0,75 a 1,0 por 3 a 5 micrómetros. Crece poco o nada en medios ricos en nutrientes, por lo que se aísla en medios pobres como el agar Cytophaga o el TYES, a 15 o 16 °C. Las colonias son amarillo pálido, de 2 a 3 mm a los 2 o 3 días, con aspecto de “huevo frito” (Starliper, 2011).

Temperatura. La enfermedad se presenta sobre todo con el agua a 16 °C o menos, y es más frecuente y grave a 10 °C o menos (Starliper, 2011).

Epidemiología en Chile

Marco regulatorio. La flavobacteriosis es una enfermedad de alto riesgo de Lista 3, según la Res. Ex. 2858/2024 (Subpesca, 2024). No tiene programa específico.

Antimicrobianos. En 2024, la flavobacteriosis explicó el 51,5% de los antimicrobianos usados en agua dulce, más que cualquier otra enfermedad. En esa fase, la oxitetraciclina fue el 72,5% de los principios activos usados, y el florfenicol el 23,6% (Sernapesca, 2025).

Resistencia. Un estudio con 125 aislados chilenos de peces con flavobacteriosis encontró que el 70% tenía sensibilidad reducida a la oxitetraciclina, frente al 8% para el florfenicol y el 24% para la amoxicilina. Para las quinolonas, la proporción fue de 38% a 45% (Miranda et al., 2016). Es decir, el antimicrobiano más usado en agua dulce es aquel frente al cual la mayoría de los aislados estudiados tiene sensibilidad reducida.

Coinfecciones. En Chile se ha documentado la coinfección con la cepa de Aeromonas salmonicida sin gen vapA. Ver la ficha de Furunculosis atípica.

Fase productiva y factores de riesgo

La enfermedad se presenta en agua dulce, en alevines y juveniles. Se distinguen dos formas (Starliper, 2011):

• Enfermedad bacteriana del agua fría: lesiones abiertas en la superficie del cuerpo, sobre todo en el pedúnculo y las aletas.
• Síndrome del alevín de trucha arcoíris: forma aguda de los primeros estadios, que puede causar 50% o más de mortalidad.

Los factores de riesgo descritos son (Starliper, 2011):

• Agua fría, bajo 10 °C.
• Transmisión vertical: la bacteria se ha encontrado en el líquido ovárico, dentro de las ovas, en la superficie de las ovas y en el semen de reproductores de varias especies, incluido el salmón del Atlántico. La desinfección de ovas con povidona yodada reduce la carga, pero no la elimina.
• Transmisión horizontal por el agua, que puede requerir abrasiones en la piel.
• Peces muertos en los estanques, que liberan muchas bacterias.

Signos clínicos

Los signos descritos son (Starliper, 2011):

• Iniciales: letargo, inapetencia y erosión de la punta de las aletas, a veces con zonas blancas tenues.
• Avanzados: exoftalmia, abdomen distendido con ascitis y branquias pálidas.
• Lesiones típicas: necrosis del pedúnculo y la aleta caudal, que puede dejar expuestas las vértebras, y lesiones en las aletas dorsal y adiposa.
• Forma crónica: natación en espiral o errática, oscurecimiento de la región caudal y deformaciones de la columna.

En un brote en trucha arcoíris en Corea se describieron úlceras en la mandíbula, abdomen distendido, branquias pálidas y congestión del hígado (Park et al., 2023).

Hallazgos de necropsia

Los hallazgos internos descritos son la palidez de las branquias, la ascitis y la congestión del hígado (Starliper, 2011; Park et al., 2023). En la forma crónica pueden verse deformaciones de la columna.

Histopatología

Las lesiones descritas son (Starliper, 2011):

• Órganos internos: necrosis focal en el bazo, el hígado y el riñón, con degeneración vacuolar y más hemosiderina en el riñón.
• Lesiones de la piel: necrosis, picnosis e infiltración de linfocitos en la dermis y el músculo subyacente.
• Forma crónica: periostitis, osteítis y meningitis, con proliferación en las vértebras.

En el brote de Corea se describieron además agregados de macrófagos con melanina en el riñón y el bazo, y necrosis de coagulación diseminada en el hígado (Park et al., 2023). Los bacilos largos y delgados pueden verse en los cortes, aunque el cultivo falle.

Diagnóstico de laboratorio

Muestras. Riñón, bazo y borde de las lesiones de piel de peces moribundos o recién muertos. En reproductores, líquido ovárico y semen.

Qué pedir al laboratorio. Ante la sospecha, el panel de rutina combina pruebas que confirman el agente y pruebas que descartan otras causas:

Prueba	Muestra	Resultado que apoya el diagnóstico
Frotis de lesión	Borde de la úlcera	Bacilos largos, delgados y Gram negativos
Cultivo en agar Cytophaga o TYES, a 15 °C	Riñón, bazo y lesión	Colonias amarillo pálido en 2 a 3 días
PCR de F. psychrophilum	Riñón, bazo o colonia	Positivo
IFAT o ELISA	Riñón o colonia	Positivo
Antibiograma por CIM	Colonia	No confirma el diagnóstico; orienta la elección entre oxitetraciclina, florfenicol y amoxicilina
Histopatología	Riñón, bazo, hígado y piel en fijador	Necrosis focal y bacilos en las lesiones
Cultivo de Aeromonas salmonicida	Riñón y lesión	Negativo, o furunculosis concurrente
RT-PCR de IPNV	Riñón y vísceras	Negativo, o IPN concurrente

Antibiograma. Con 70% de aislados chilenos con sensibilidad reducida a la oxitetraciclina, conviene medir la sensibilidad antes de tratar. El estudio chileno recomienda la concentración inhibitoria mínima por sobre la difusión en disco, porque fue más precisa (Miranda et al., 2016).

Diagnóstico diferencial

Furunculosis atípica. Produce úlceras y septicemia en agua dulce, y puede coexistir. El cultivo distingue ambas bacterias.

Necrosis pancreática infecciosa. Afecta a los mismos peces jóvenes y también causa natación en espiral. La RT-PCR y la histopatología del páncreas la separan. Ver la ficha de IPN.

Saprolegniasis. Produce lesiones de la piel en agua dulce, con crecimiento algodonoso. Ver la ficha de Saprolegniasis.

Daño mecánico. Las erosiones de las aletas por manejo no tienen bacilos ni lesiones internas.

Tratamiento

El tratamiento es antimicrobiano, en el alimento, y debe iniciarse pronto (Starliper, 2011). En Chile, los principios activos más usados en agua dulce son la oxitetraciclina y el florfenicol (Sernapesca, 2025). Por la frecuencia de sensibilidad reducida a la oxitetraciclina en aislados chilenos (Miranda et al., 2016), la elección debe apoyarse en el antibiograma. La dosis y la duración las define el médico veterinario tratante con la receta correspondiente.

Prevención

Vacunas. No hay vacuna comercial. Se han probado vacunas experimentales con bacterias inactivadas, fracciones de membrana y cepas atenuadas (Starliper, 2011).

Medidas de manejo. A partir de la evidencia revisada:

• Usar agua libre del patógeno para los alevines cuando sea posible.
• Retirar rápido los peces muertos de los estanques.
• Limpiar y desinfectar estanques y equipos.
• Desinfectar las ovas, sabiendo que eso no elimina la infección.
• Hacer inspecciones sanitarias periódicas antes de que aparezca la enfermedad.
• Aislar los lotes infectados.

Impacto productivo

La flavobacteriosis es el principal problema infeccioso de las pisciculturas chilenas en la trucha y el coho, y el mayor motivo de uso de antimicrobianos en agua dulce. La combinación de uso intensivo de oxitetraciclina y alta frecuencia de sensibilidad reducida a ese fármaco es un punto que conviene vigilar. La discusión sobre alternativas a los antibióticos se revisa en el artículo Resistencia antimicrobiana en acuicultura.

Referencias

1. Miranda CD, Smith P, Rojas R, Contreras-Lynch S, Vega JMA. Antimicrobial susceptibility of Flavobacterium psychrophilum from Chilean salmon farms and their epidemiological cut-off values using agar dilution and disk diffusion methods. Frontiers in Microbiology. 2016;7:1880. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.01880
2. Park J, Roh H, Lee Y, Lee JY, Kang HY, Seong MJ, et al. Characterization and pathogenicity of Flavobacterium psychrophilum isolated from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Korea. Microorganisms. 2023;11(10):2546. https://doi.org/10.3390/microorganisms11102546
3. Starliper CE. Bacterial coldwater disease of fishes caused by Flavobacterium psychrophilum. Journal of Advanced Research. 2011;2(2):97-108. https://doi.org/10.1016/j.jare.2010.04.001
4. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de uso de antimicrobianos y antiparasitarios en la salmonicultura nacional, año 2024. Julio de 2025.
5. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de situación sanitaria de la salmonicultura, año 2025. Marzo de 2026.
6. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). Resolución Exenta 2858/2024, que actualiza y reemplaza la clasificación de enfermedades de alto riesgo. Diciembre de 2024.