Costiasis

Especies afectadas y susceptibilidad

Ichthyobodo parasita la piel y las branquias de muchas especies de peces. En los salmónidos es uno de los principales agentes de enfermedad en las pisciculturas, y causa brotes típicamente en las primeras semanas después del inicio de la alimentación (Todal et al., 2004).

Etapas más sensibles. Los alevines y los juveniles son los más afectados. En un seguimiento de 11 meses en una piscicultura noruega de salmón del Atlántico, la infección tuvo dos peaks: en alevines y en juveniles previos a la esmoltificación, con una prevalencia máxima de 54% (Isaksen et al., 2010).

El agente

Ichthyobodo es un protozoo flagelado muy pequeño, con forma de pera o de gota y dos flagelos desiguales. Se adhiere a la superficie de las células de la piel y las branquias con un disco, y se multiplica por división simple (Isaksen et al., 2011).

Más de una especie. Lo que se llamaba Ichthyobodo necator es en realidad un grupo de especies parecidas. En salmones de cultivo en Noruega se encontraron dos (Todal et al., 2004; Isaksen et al., 2011):

• I. necator en sentido estricto: en la piel de los juveniles en agua dulce.
• I. salmonis: con preferencia por las branquias, y capaz de vivir en agua dulce, salobre y de mar. Es más pequeña que I. necator.

Tamaño. Las formas libres de I. salmonis miden en promedio cerca de 10 por 9 µm, y las de I. necator, cerca de 16 por 13 µm (Isaksen et al., 2011). Por su tamaño, se requiere un buen microscopio para verlas.

Temperatura. Tolera rangos muy amplios de temperatura. En pisciculturas de salmónidos en Japón se registró entre 2 y 14 °C (Todal et al., 2004).

Epidemiología en Chile

Estudio de 1997. En pisciculturas de la zona de Puerto Montt, entre enero y abril de 1997, se examinaron 287 peces de alevines a smolts, y 90 tenían protozoos. Ichthyobodo fue el género más frecuente, con 45% de los hallazgos, seguido de Hexamita, Ichthyophthirius y Balantidium. Se encontró en la piel, las aletas, las branquias y el intestino, y solo en salmón del Atlántico (Soria-Galvarro, 1997). El mismo estudio cita registros anteriores en pisciculturas de la zona de Llanquihue.

Situación actual. El informe sanitario de 2025 no menciona Ichthyobodo (Sernapesca, 2026). Esta ficha no encontró estudios chilenos recientes ni registros de los tratamientos usados en agua dulce.

Marco regulatorio. La costiasis no es una enfermedad de alto riesgo y no figura en la Res. Ex. 2858/2024 (Subpesca, 2024).

Fase productiva y factores de riesgo

Agua dulce. La enfermedad se presenta sobre todo en alevines y juveniles. Es más común en peces con mala calidad de agua (Fishpathogens.net, s. f.). En la piscicultura noruega estudiada, los peces silvestres de los lagos que abastecían el agua estaban infectados y eran la fuente probable (Isaksen et al., 2010).

Traslado al mar. Las infecciones adquiridas en agua dulce pueden sobrevivir al traslado de los smolts al mar, y el parásito puede proliferar allí y causar enfermedad branquial (Isaksen et al., 2011). En agua dulce el parásito es más común en la piel, y en el mar, casi solo en las branquias (Todal et al., 2004).

Efecto en la adaptación al mar. En salmones chum juveniles infectados experimentalmente, la mortalidad en agua dulce fue de 12,4%, frente a 1,9% en los controles. Al pasarlos a agua de mar, la mortalidad subió a 63 a 70%, frente a 0 a 3,3% en los controles, con erosiones y hemorragias en la piel y alteración del cloruro en la sangre (Urawa, 1993). La infección compromete la capacidad del pez para regular las sales.

Signos clínicos

Los signos descritos son (Petty et al., Manual Merck de Veterinaria):

• Exceso de mucus, que da a la piel un tono gris azulado, el “velo azul”.
• Peces que se frotan contra las superficies, inapetentes y letárgicos.
• Respiración rápida y branquias hinchadas.
• Lesiones de la piel, asociadas a menor condición corporal y menor hematocrito (Isaksen et al., 2010).

Lesiones y efectos en el pez

En las branquias, el parásito produce hiperplasia del epitelio y fusión de las lamelas (Fishpathogens.net, s. f.). En la piel, se adhiere a las células superficiales y produce erosiones. El daño del epitelio altera la respiración y el equilibrio de sales, lo que explica la mayor mortalidad al traslado al mar (Urawa, 1993).

Diagnóstico y monitoreo

Registro o prueba	Muestra	Qué entrega
Examen directo al microscopio, 400×	Raspado de piel y branquias	Flagelados pequeños, con movimiento en espiral o parpadeante
Frotis teñido	Raspado de piel y branquias	Confirma la morfología
Histopatología	Branquia y piel en fijador	Parásitos adheridos e hiperplasia del epitelio
PCR o qPCR	Raspado o tejido	Identifica la especie, útil para distinguir I. necator de I. salmonis
Calidad del agua	Estanques	Factores que favorecen el brote

En la piscicultura noruega se examinaron raspados a 250 y 400 aumentos, con una escala de 1 a 3 según el número de parásitos, junto con frotis teñidos e histología (Isaksen et al., 2010). Existen métodos moleculares para detectar e identificar las especies (Isaksen et al., 2012).

Por qué identificar la especie. Si la especie presente en agua dulce es I. salmonis, puede acompañar a los smolts al mar. Esa información sirve para decidir el tratamiento antes del traslado. Es una inferencia de Evidencia Vet a partir de la biología descrita.

Diagnóstico diferencial

Ictioftiriasis. También es un protozoo de la piel y las branquias en agua dulce, pero mucho más grande, con puntos blancos visibles. Ver la ficha de Ictioftiriasis.

Flavobacteriosis. Produce lesiones en la piel y las branquias de alevines, con bacterias en el frotis. Ver la ficha de Flavobacteriosis.

Amebiasis branquial. En el mar, produce lesiones branquiales con amebas, mucho más grandes que Ichthyobodo. Ver la ficha de Amebiasis branquial.

Enfermedad nodular de la branquia. En agua dulce, produce nódulos branquiales con amebas. Ver la ficha de Enfermedad nodular de la branquia.

Tratamiento

Formalina. Es el tratamiento clásico. En Chile hay una formalina registrada en el SAG para el control de protozoos externos en peces. Su etiqueta indica, para salmones y truchas en estanques, 170 µL/L sobre 10 °C y 250 µL/L bajo 10 °C, por no más de una hora (SAG, Reg. 2254).

Puede fallar. En la piscicultura noruega, la prevalencia siguió subiendo pese a dos tratamientos con formalina (Isaksen et al., 2010). Esta ficha no encontró estudios en salmónidos que comparen la eficacia de la sal, el peróxido de hidrógeno o el ácido peracético contra Ichthyobodo.

El producto, la concentración y la frecuencia los define el médico veterinario tratante, después de probar la tolerancia en un grupo pequeño de peces.

Prevención

A partir de la evidencia revisada:

• Examinar al microscopio raspados de piel y branquias de forma rutinaria en alevines y juveniles.
• Mantener una buena calidad del agua y densidades adecuadas.
• Considerar a los peces silvestres del agua de origen como fuente del parásito (Isaksen et al., 2010).
• Revisar las branquias antes del traslado al mar y tratar si hay infección.

Impacto productivo

La costiasis fue el protozoo más frecuente en las pisciculturas chilenas estudiadas en 1997, pero no aparece en los informes sanitarios actuales. Su efecto más costoso puede ser indirecto: los smolts infectados se adaptan peor al mar. La falta de datos chilenos recientes impide saber cuánto pesa hoy.

Referencias

1. Fishpathogens.net. Ichthyobodo. Sin fecha. https://fishpathogens.net/pathogen/ichthyobodo
2. Isaksen TE, Karlsbakk E, Sundnes GA, Nylund A. Patterns of Ichthyobodo necator sensu stricto infections on hatchery-reared Atlantic salmon Salmo salar in Norway. Diseases of Aquatic Organisms. 2010;88:207-214. https://doi.org/10.3354/dao02173
3. Isaksen TE, Karlsbakk E, Watanabe K, Nylund A. Ichthyobodo salmonis sp. n. (Ichthyobodonidae, Kinetoplastida), an euryhaline ectoparasite infecting Atlantic salmon (Salmo salar L.). Parasitology. 2011;138(9):1164-1175. https://doi.org/10.1017/S0031182011000916
4. Isaksen TE, Karlsbakk E, Repstad O, Nylund A. Molecular tools for the detection and identification of Ichthyobodo spp. (Kinetoplastida), important fish parasites. Parasitology International. 2012;61(4):675-683. https://doi.org/10.1016/j.parint.2012.07.006
5. Petty BD, Francis-Floyd R, Yanong RPE. Parasitic diseases of fish. Merck Veterinary Manual. https://www.merckvetmanual.com/exotic-and-laboratory-animals/aquarium-fish/parasitic-diseases-of-fish
6. Servicio Agrícola y Ganadero (SAG). Etiqueta de Aqualife Formalina, registro SAG N° 2254.
7. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de situación sanitaria de la salmonicultura, año 2025. Marzo de 2026.
8. Soria-Galvarro LN. Tesis de Licenciatura en Medicina Veterinaria sobre protozoos parásitos de salmonídeos en agua dulce en la X Región. Universidad Austral de Chile. 1997.
9. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). Resolución Exenta 2858/2024, que actualiza y reemplaza la clasificación de enfermedades de alto riesgo. Diciembre de 2024.
10. Todal JA, Karlsbakk E, Isaksen TE, Plarre H, Urawa S, Mouton A, et al. Ichthyobodo necator (Kinetoplastida): a complex of sibling species. Diseases of Aquatic Organisms. 2004;58:9-16. https://doi.org/10.3354/dao058009
11. Urawa S. Effects of Ichthyobodo necator infections on seawater survival of juvenile chum salmon (Oncorhynchus keta). Aquaculture. 1993;110(2):101-110. https://doi.org/10.1016/0044-8486(93)90264-Y