Vibriosis

Especies afectadas y susceptibilidad

En Chile, la vibriosis la causa sobre todo Vibrio ordalii. Desde comienzos de la década de 2000 se han descrito brotes con mortalidad alta en salmón del Atlántico, salmón coho y trucha arcoíris cultivados en el sur del país (Echeverría-Bugueño et al., 2024).

El salmón del Atlántico es la especie más estudiada. En los primeros casos chilenos descritos, los brotes afectaron a peces de 80 a 1.500 g y se concentraron en marzo y abril, al ingreso de los smolts al mar. La prevalencia bajaba con la edad de los peces y con los tratamientos sucesivos (Bohle et al., 2007).

La Res. Ex. 2858/2024 incluye en la vibriosis a V. ordalii y a Listonella anguillarum, antes llamada Vibrio anguillarum (Subpesca, 2024). Esta ficha se centra en V. ordalii, que es el agente descrito en los brotes chilenos.

El agente

V. ordalii es un bacilo Gram negativo, móvil y anaerobio facultativo. En el laboratorio, las cepas chilenas crecieron con 0,3 a 3% de sal y entre 2 y 25 °C (Bohle et al., 2007).

Cepas chilenas distintas. Las cepas aisladas de salmón del Atlántico en Chile mostraron diferencias con la cepa de referencia de la especie, por lo que se describieron como un fenotipo atípico (Bohle et al., 2007). Un estudio de 14 cepas chilenas encontró que eran homogéneas entre sí, tanto en sus pruebas bioquímicas como en sus perfiles genéticos, y que su antígeno de superficie era distinto al de la cepa de referencia. Los autores plantearon que podrían ser un subgrupo serológico nuevo (Silva-Rubio et al., 2008).

Reacción cruzada. Las cepas chilenas reaccionaron con fuerza con el antisuero contra L. anguillarum serotipo O2 (Silva-Rubio et al., 2008). Eso importa en el diagnóstico: una prueba de aglutinación puede confundir ambas especies.

Epidemiología en Chile

Primeros brotes. Los primeros casos se reportaron a mediados de 2002, y la enfermedad fue un problema importante en 2003 y 2004 en las regiones de Los Lagos, Aysén y Magallanes. En 14 casos clínicos de salmón del Atlántico, la morbilidad fue de 5 a 40% y la mortalidad acumulada de 1 a 20% (Bohle et al., 2007).

Situación actual. En 2025, los informes de diagnóstico positivo de centros marinos registraron Vibrio sp., sin especie identificada, en 18 informes de Los Lagos (7 de salmón del Atlántico, 1 de coho y 10 de trucha arcoíris) y V. ordalii en 6 informes de salmón del Atlántico de Magallanes (Sernapesca, 2026). Son informes de laboratorio, no brotes. La vibriosis no figura entre las principales causas infecciosas de mortalidad de ninguna especie en ese informe.

Marco regulatorio. La vibriosis es una enfermedad de alto riesgo de Lista 3, según la Res. Ex. 2858/2024 (Subpesca, 2024). No tiene programa específico.

Fase productiva y factores de riesgo

La enfermedad se presenta en el mar. Los factores descritos en Chile son:

• Ingreso de smolts al mar: los brotes se concentraron en las semanas siguientes al traslado (Bohle et al., 2007).
• Peces jóvenes: la prevalencia bajó con la edad (Bohle et al., 2007).
• Estuarios y costa: los brotes chilenos ocurrieron en centros de estuario y de costa (Bohle et al., 2007).

Signos clínicos

Los signos externos descritos en salmón del Atlántico son (Bohle et al., 2007):

• Furúnculos en los costados y en el dorso.
• Úlceras hemorrágicas extensas en los costados.
• Edema hemorrágico en el pedúnculo.
• Úlceras y hemorragias en la base de las aletas pectorales.
• Petequias en el vientre.

En otras especies se describe necrosis y hemorragia alrededor de las aletas ventrales y del poro anal (Echeverría-Bugueño et al., 2024).

Hallazgos de necropsia

Los hallazgos internos descritos son (Bohle et al., 2007):

• Focos blanquecinos en el hígado y el bazo.
• Bazo aumentado de tamaño.
• Hígado pálido, en algunos casos con equimosis.
• Pericarditis y peritonitis.

Histopatología

Las lesiones microscópicas descritas son (Bohle et al., 2007):

• Vasculitis con granulocitos en varios órganos.
• Epicarditis con edema y granulocitos.
• Dermatitis y miositis hemorrágica y necrotizante en las lesiones de la piel y el músculo.

En la infección experimental, la bacteria se recuperó de la piel, el músculo, el hígado, el corazón, el riñón, el bazo, el intestino, el estómago y el cerebro, lo que muestra una infección generalizada (Bohle et al., 2007).

Diagnóstico de laboratorio

Muestras. Riñón, bazo, hígado y borde de las lesiones de piel y músculo, de peces moribundos o recién muertos.

Qué pedir al laboratorio. Ante la sospecha, el panel de rutina combina pruebas que confirman el agente y pruebas que descartan otras causas:

Prueba	Muestra	Resultado que apoya el diagnóstico
Frotis con tinción de Gram	Lesión, riñón o bazo	Bacilos Gram negativos
Cultivo en agar tripticasa soya con 1,5% de NaCl	Riñón, bazo y lesión	Colonias grises, sin pigmento, de 1 a 2 mm
PCR del gen vohB	Colonia o tejido	Identificación de V. ordalii
Secuenciación del 16S ARNr	Colonia	Confirmación de especie
Antibiograma	Colonia	No confirma el diagnóstico; orienta la elección del antimicrobiano
Histopatología	Piel, músculo, corazón, hígado y bazo en fijador	Vasculitis, epicarditis y miositis necrotizante
qPCR de Piscirickettsia salmonis	Riñón, hígado y bazo	Negativo, o SRS concurrente
Cultivo de Aeromonas salmonicida atípica	Riñón y lesión	Negativo, o furunculosis concurrente

La morfología de las colonias y el uso de la secuenciación del 16S ARNr vienen del estudio de los primeros casos chilenos (Bohle et al., 2007). La PCR del gen vohB, que codifica una hemolisina, se diseñó para detectar V. ordalii (Avendaño-Herrera et al., 2014).

Cuidado con la serología. Por la reacción cruzada con L. anguillarum serotipo O2 (Silva-Rubio et al., 2008), la aglutinación sola no basta para identificar la especie. La PCR o la secuenciación lo resuelven.

Diagnóstico diferencial

Furunculosis atípica. Produce furúnculos y úlceras muy parecidos, también con bacterias Gram negativas. El cultivo y la PCR las separan. Ver la ficha de Furunculosis atípica.

Piscirickettsiosis. Comparte la septicemia, el hígado con focos y el bazo aumentado. La qPCR la identifica. Ver la ficha de Piscirickettsiosis.

Tenacibaculosis. Produce úlceras en la piel y la boca, sobre todo después del ingreso al mar. El frotis muestra bacilos largos y delgados. Ver la ficha de Tenacibaculosis.

Estreptococosis. También da hemorragias y lesiones en el músculo, pero con cocos Gram positivos. Ver la ficha de Estreptococosis.

Tratamiento

El tratamiento es antimicrobiano. Esta ficha no encontró estudios chilenos de sensibilidad de V. ordalii a los antimicrobianos de uso habitual, por lo que la elección debe basarse en el antibiograma del aislado. En el informe de uso de antimicrobianos de 2024, la vibriosis no aparece desglosada entre las enfermedades tratadas en el mar (Sernapesca, 2025). El producto, la dosis y la duración los define el médico veterinario tratante con la receta correspondiente.

Prevención

Vacunas. El listado de productos inmunológicos para salmónidos con registro provisional del SAG, de julio de 2022, incluye al menos tres vacunas inyectables que contienen V. ordalii combinado con otros antígenos, como IPN, P. salmonis o A. salmonicida atípica, y una vacuna de inmersión contra V. anguillarum (SAG, 2022). Esta ficha no revisó estudios de eficacia de esas vacunas en terreno. La homogeneidad de las cepas chilenas se señaló como una base favorable para desarrollarlas (Silva-Rubio et al., 2008).

Medidas de manejo. A partir de la evidencia revisada:

• Vigilar con atención las semanas siguientes al ingreso de los smolts al mar.
• Diagnosticar por cultivo y PCR las úlceras y furúnculos de esa etapa, sin asumir que son furunculosis o tenacibaculosis.
• Hacer antibiograma ante cada brote.

Impacto productivo

En sus primeros años en Chile, la vibriosis produjo brotes con mortalidad acumulada de hasta 20% en salmón del Atlántico (Bohle et al., 2007). Hoy no figura entre las principales causas de mortalidad infecciosa, aunque sigue apareciendo en los diagnósticos de laboratorio de Los Lagos y Magallanes (Sernapesca, 2026). La vacunación y la mejor identificación de la especie son probablemente parte de esa baja, aunque esta ficha no encontró un estudio que lo demuestre.

Referencias

1. Avendaño-Herrera R, Maldonado JP, Tapia-Cammas D, Feijóo CG, Calleja F, Toranzo AE. PCR protocol for detection of Vibrio ordalii by amplification of the vohB (hemolysin) gene. Diseases of Aquatic Organisms. 2014;107(3):223-234. https://doi.org/10.3354/dao02684
2. Bohle H, Kjetil F, Bustos P, Riofrío A, Peters C. Fenotipo atípico de Vibrio ordalii, bacteria altamente patogénica aislada desde salmón del Atlántico cultivado en las costas marinas del sur de Chile. Archivos de Medicina Veterinaria. 2007;39(1). https://doi.org/10.4067/S0301-732X2007000100006
3. Echeverría-Bugueño M, Hernández M, Avendaño-Herrera R. Proteomic analysis of the fish pathogen Vibrio ordalii strain Vo-LM-18 and its outer membrane vesicles. Animals. 2024;14(24):3598. https://doi.org/10.3390/ani14243598
4. Servicio Agrícola y Ganadero (SAG). Productos biológicos inmunológicos con registro provisional, salmónidos. Julio de 2022.
5. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe sobre uso de antimicrobianos y antiparasitarios en la salmonicultura nacional, año 2024. Julio de 2025.
6. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Informe de situación sanitaria de la salmonicultura, año 2025. Marzo de 2026.
7. Silva-Rubio A, et al. Antigenic and molecular characterization of Vibrio ordalii strains isolated from Atlantic salmon Salmo salar in Chile. Diseases of Aquatic Organisms. 2008;79:27-35. https://doi.org/10.3354/dao01872
8. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). Resolución Exenta 2858/2024, que actualiza y reemplaza la clasificación de enfermedades de alto riesgo. Diciembre de 2024.