Virus ISA en Chile: guía completa del PSEVC-ISA, muestreo y control 2026

Ficha técnica del marco normativo

Instrumento	Detalle
Reglamento base	Reglamento de Medidas de Protección, Control y Erradicación de Enfermedades de Alto Riesgo para las Especies Hidrobiológicas (RESA), D.S. N°319 de 2001, y sus modificaciones
Programa específico	Programa Sanitario Específico de Vigilancia y Control de la Anemia Infecciosa del Salmón (PSEVC-ISA), Res. Ex. N°1577 del 28 de julio de 2011, publicada el 10 de agosto de 2011
Modificaciones vigentes	Res. Ex. N°228 del 22 de febrero de 2013; Res. Ex. N°3610 del 13 de agosto de 2019; Res. Ex. N°565 del 14 de febrero de 2019; Res. Ex. N°733 del 28 de diciembre de 2022
Norma de muestreo	Norma Técnica LABD/NT1, Procedimientos para el muestreo de animales acuáticos
Procedimiento de notificación	Manual de Procedimientos del Departamento de Salud Animal, Subdirección de Acuicultura, SERNAPESCA, versión diciembre 2025
Clasificación de la enfermedad	Enfermedad de Alto Riesgo, Lista 2, conforme al RESA
Norma derogada	Res. Ex. N°2638 de 2008, derogada expresamente por el artículo sexto de la Res. Ex. N°1577/2011

Por qué esta enfermedad justifica un sistema de vigilancia de esta densidad

La ficha técnica que la propia norma incorpora describe una enfermedad contagiosa con mortalidad diaria que oscila entre 0,05% y valores iguales o superiores a 1%, y mortandad total que puede ir de 15% a 100% en jaulas infectadas. Ese rango tan amplio, y en particular su extremo superior, es lo que explica la densidad del programa.

El brote que originó el marco regulatorio actual está documentado en detalle. En junio de 2007, un centro de engorda en isla Lemuy, Chiloé central, registró un alza brusca de mortalidad en dos jaulas tras recuperarse de un cuadro de piscirickettsiosis. Cuatro semanas después, la mortalidad acumulada alcanzaba 70% en una jaula y 82% en la otra. Se necropsiaron 100 peces de peso promedio 3,9 kilos y se registró la frecuencia de cada lesión.

Los signos externos más frecuentes fueron palidez branquial y hemorragia periocular, ambos en 38% de los peces, seguidos de exoftalmia e ictericia abdominal en 25%, oscurecimiento del tegumento en 20% y petequias cutáneas en 19%. Internamente predominó la congestión intestinal, con petequias en ciegos pilóricos en 43% y en grasa visceral en 31%. Un dato que ilustra la realidad de terreno: 63% de los peces examinados presentaba además infestación por Caligus sp., y el grupo venía saliendo de tratamiento contra piscirickettsiosis. La sospecha de ISA rara vez se presenta sobre un cuadro limpio.

El intestino y los ciegos pilóricos fueron los tejidos más severamente afectados, con congestión marcada de la vasculatura de la lámina propia y hemorragia intraluminal. El hígado mostró regiones multifocales a coalescentes de congestión sinusoidal y peliosis con necrosis hepatocelular adyacente. El bazo presentó congestión sinusoidal marcada y eritrofagia intravascular.

El detalle que explica el cuadro completo es que el virus se replica en el endotelio vascular y no en el parénquima de los órganos. La lesión hepática o renal es consecuencia del compromiso vascular. Ese tropismo endotelial es coherente con el carácter sistémico y circulatorio de la enfermedad.

El impacto agregado del episodio fue de otra escala: el último brote clínico se registró en septiembre de 2010, la producción de salmón del Atlántico cayó cerca de dos tercios y las estimaciones de impacto laboral rondan los 20.000 trabajadores desvinculados.

Cómo se computan los plazos de muestreo

La modificación de diciembre de 2022 incorporó una regla general de interpretación que conviene tener presente antes de leer cualquier frecuencia:

…cada vez que este programa se refiera a un muestreo que se realiza en forma quincenal, mensual o trimestral, debe entenderse que deberá ejecutarse cada quince, 30 o 90 días corridos… cuando se aluda a una frecuencia semestral o se utilice la expresión semestralmente, se entenderá que se realiza cada seis meses.

Los plazos se cuentan desde la fecha del acto administrativo que ordena el muestreo, o desde la fecha del muestreo que lo precede, según corresponda. No se cuentan desde el vencimiento del plazo total disponible.

Cuándo se debe notificar a SERNAPESCA: umbrales de mortalidad

Existen tres vías de notificación, y conviene distinguirlas porque los plazos difieren.

Por umbral de mortalidad. El médico veterinario responsable debe notificar de manera inmediata el aumento de mortalidad en cualquier jaula de centro de mar o estuario con salmón del Atlántico, o unidad epidemiológica, que supere 0,05% de mortalidad diaria por 5 días consecutivos, o bien 2% de mortalidad en un plazo inferior a 5 días. Se excluye la mortalidad por causas ambientales y depredadores, que debe estar debidamente justificada.

Son dos gatillos independientes, no dos formas de medir lo mismo: el primero captura la elevación sostenida y de bajo nivel, característica del curso lento de ISA; el segundo captura el evento agudo. Basta con uno de los dos. En ambos casos debe realizarse muestreo y análisis para determinar presencia de virus ISA, sin importar la signología asociada. Si ya existe diagnóstico de laboratorio de otra enfermedad infecciosa y el último análisis de ISAv tiene menos de 30 días, no es necesario un nuevo muestreo.

Por sospecha fundada o signología. El titular del centro debe notificar de manera inmediata tanto la sospecha fundada de presencia del virus como la aparición de la enfermedad, ya sea a partir de informe médico veterinario o de resultado positivo de laboratorio.

Por laboratorio. Cuando un laboratorio sospeche o diagnostique ISA, esté o no registrado por el Servicio, debe notificar de manera inmediata.

Canales y plazos asociados:

Trámite	Destino
Notificación de sospecha o enfermedad	notificacionisa@sernapesca.cl
Encuesta Epidemiológica para Centros Sospechosos y Confirmados, dentro de 48 horas desde la notificación	informacionisa@sernapesca.cl
Informes de análisis de laboratorio positivos	diagnosticoISA@sernapesca.cl
Informe sanitario periódico de centros positivos	informacionisa@sernapesca.cl

Los titulares de centros categorizados como positivos (sospechoso, confirmado, brote) deben designar un médico veterinario de contacto e informarlo al Servicio. Ese profesional es responsable de la comunicación oficial y del envío de un informe sanitario semanal, que pasa a ser mensual en centros clasificados como confirmados HPR 0.

Cómo seleccionar los peces y solicitar el muestreo

Los muestreos de vigilancia requieren solicitud presentada o enviada por correo electrónico a la oficina de SERNAPESCA correspondiente, con al menos 3 días hábiles de anticipación a la fecha en que se realizarán.

En todos los casos, los peces seleccionados corresponden a peces orillados y mortalidad fresca del día. Si no se puede completar el tamaño muestral, se seleccionan peces al azar entre los restantes. La Norma Técnica LABD/NT1 precisa que la mortalidad fresca debe tener menos de 12 horas y no haber sido tratada con desinfectante o inactivador.

En centros de mar, río, estuario o lago se deben muestrear como mínimo 3 jaulas, privilegiando las que presenten peces orillados o mayor mortalidad.

El muestreo en centros con salmón del Atlántico debe ser realizado por un certificador de la condición sanitaria inscrito en el registro del artículo 122 letra K de la Ley General de Pesca y Acuicultura. En casos fundados el Servicio puede autorizar a veterinarios del propio centro, con supervisión de un funcionario del Servicio. En otras especies susceptibles, el muestreo puede ser realizado por el médico veterinario del centro o por un certificador. Las muestras deben analizarse en un laboratorio registrado por el Servicio.

Cada pez extraído debe quedar en bolsa plástica cerrada y rotulada con identificación clara y permanente de su jaula o unidad epidemiológica.

Qué órganos muestrear para diagnóstico de ISAv

Los órganos blanco para diagnóstico de ISAv son corazón, riñón y branquia, con trozos de mínimo 5 mm³.

Tamaño del pez	Muestra a extraer
Alevines y alevines con saco	Pez completo, removiendo el saco vitelino. Si se deposita en preservante, abrir cavidad abdominal y cortar opérculos
Entre 4 y 6 cm	Todas las vísceras, incluyendo riñón y branquias
Más de 6 cm y reproductores	Corazón, riñón y branquia

El procedimiento parte depositando el pez sobre papel absorbente desechable, limpio, seco y antideslizante, seguido de un corte lateral paralelo a la línea media ventral desde craneal a caudal, y un segundo corte desde las branquias hacia la línea media ventral.

En reproductores, el muestreo con sacrificio toma corazón, riñón y branquia. Cuando el reproductor será sometido a varios desoves en la temporada, la muestra para ISA puede obtenerse por biopsia de branquia sin sacrificio, en cada desove, con el animal previamente anestesiado y devuelto a su estanque solo tras desinfección y cese completo del sangrado. Al término de la vida productiva del reproductor, el diagnóstico debe realizarse a partir de órganos.

El screening de reproductores se realiza al momento del desove a todos los padres de especies susceptibles, sin considerar al salmón coho.

Cada cuánto muestrear: frecuencias y tamaños de muestra por tipo de centro

Esta es la parte donde más se confunde la norma, porque las exigencias difieren según el centro esté en mar realizando engorda, o en lago, río o estuario realizando esmoltificación.

Centros de engorda en mar

Condición	Frecuencia	Tamaño de muestra
Rutina, salmón del Atlántico	Trimestral	Mínimo 30 peces, distribuidos entre jaulas
Rutina, otras especies susceptibles	Semestral	Mínimo 60 peces por centro
Rutina, centros con solo reproductores	Trimestral	Mínimo 15 peces
ACS con positividad en ciclo anterior (otros HPR o brote)	Cada dos meses	Mínimo 30 peces entre jaulas
Sospechoso, muestreo inicial	Dentro de 48 horas de la notificación, todas las jaulas	Mínimo 3 peces por jaula
Sospechoso, seguimiento de jaulas negativas	Quincenal, por mínimo 48 días	Mínimo 3 peces por jaula, mínimo total 30 por especie
Confirmado HPR 0	Cada dos meses	Mínimo 30 peces por especie, mínimo 3 jaulas
Jaulas negativas en centro con jaulas confirmadas otros HPR	Cada 15 días	Mínimo 3 peces por jaula, mínimo total 30 por especie
En vigilancia, salmón del Atlántico	Mensual	Mínimo 30 peces
En vigilancia, otras especies susceptibles	Semestral	Mínimo 30 peces
En riesgo, salmón del Atlántico	Quincenal	Mínimo 30 peces
En riesgo, otras especies susceptibles	Semestral	Mínimo 30 peces

El primer muestreo se realiza 30 días después de haber sembrado el último pez en el centro, y una vez terminada la siembra debe enviarse aviso a la oficina del Servicio. La modificación de agosto de 2019 agregó una condición: ese primer muestreo debe realizarse por todos los centros que siembren en mar antes de cosechar o eliminar peces, y en ningún caso puede ocurrir antes de los 30 días desde el término de la siembra.

Centros en lagos, ríos y mar que realizan esmoltificación

Condición	Frecuencia	Tamaño de muestra
Rutina, especies susceptibles salvo salmón del Atlántico	Semestral	Mínimo 150 peces por centro
Sospechoso, muestreo inicial	Dentro de 48 horas, todas las jaulas	Mínimo 3 peces por jaula
Sospechoso, seguimiento de jaulas negativas	Quincenal, por mínimo 48 días	Mínimo 3 peces por jaula, mínimo total 30 por especie
Confirmado HPR 0	Cada dos meses	Mínimo 150 peces
Jaulas negativas en centro con jaulas confirmadas otros HPR	Cada 15 días	Mínimo 3 peces por jaula, mínimo total 30 por especie
En vigilancia, especies susceptibles	Semestral	Mínimo 30 peces
En riesgo, especies susceptibles	Semestral	Mínimo 30 peces

La modificación de diciembre de 2022 eliminó los numerales que fijaban exigencias específicas para salmón del Atlántico en esta categoría de centros, y homologó las frecuencias de vigilancia y riesgo a semestral para todas las especies susceptibles.

Pisciculturas

Condición	Frecuencia	Tamaño de muestra
Rutina, especies susceptibles salvo salmón del Atlántico	Semestral	Mínimo 150 peces por centro
Rutina, solo reproductores	Semestral	Mínimo 30 peces
Rutina, con salmón del Atlántico	Trimestral	Mínimo 150 peces entre unidades epidemiológicas
Rutina, solo reproductores con salmón del Atlántico	Trimestral	Mínimo 15 peces
Reproducción de ciclo cerrado, sin ingreso de material biológico y sin positividad en los últimos dos años	Semestral, independiente de la especie	Al menos 15 peces
Sospechosa, muestreo inicial	Dentro de 48 horas, todas las unidades epidemiológicas	Mínimo 150 peces, proporcional, priorizando salmón del Atlántico
Sospechosa, seguimiento	Quincenal, por mínimo 48 días	Mínimo 150 peces, proporcional
Confirmada HPR 0	Cada dos meses	Mínimo 150 peces, proporcional
Confirmada otros HPR, unidades negativas	Quincenal	Mínimo 150 peces, proporcional
En riesgo, con salmón del Atlántico	Mensual	Mínimo 150 peces, proporcional
En riesgo, otras especies susceptibles	Semestral	Mínimo 150 peces, proporcional

En pisciculturas multiespecie, la frecuencia queda determinada por la especie de mayor riesgo, que es el salmón del Atlántico. Los titulares deben definir e informar al Servicio sus unidades epidemiológicas; si no lo hacen, toda la piscicultura se considera una sola unidad.

Pooles

Para el PSEVC-ISA el máximo es de 3 peces por pool, todos de la misma unidad epidemiológica. Conviene notar que el programa general de vigilancia de enfermedades de alto riesgo permite hasta 5 por pool, pero ISA no.

Traslados de peces y Certificado Sanitario de Movimiento

Todo movimiento de peces vivos o muertos, gametos u ovas desde o hacia centros de salmónidos requiere Certificado Sanitario de Movimiento, solicitado en origen con al menos 2 días hábiles de anticipación. Está prohibido el movimiento de peces sin autorización previa del Servicio.

Movimiento	Requisito
Peces vivos o muertos, gametos y ovas de salmón del Atlántico	Análisis de laboratorio de ISA del centro de origen, con antigüedad no superior a 30 días, sobre mínimo 30 peces por unidad epidemiológica o jaula a trasladar
Pisciculturas sin unidades epidemiológicas validadas	Mínimo 30 peces por grupo a trasladar
Gametos y ovas	Respaldado por screening individual de los padres
Desde centro marino con Plan de Manejo Genético vigente	Muestreo previo de 15 peces, vivos o mortalidad fresca. Resultados con vigencia de 30 días. Traslado autorizado solo si son negativos

Los peces provenientes de un centro con Plan de Manejo Genético deben ser trazables hasta su eliminación una vez ingresados al centro de destino, y quedan sujetos a la vigilancia rutinaria de los programas sanitarios.

Clasificación de centros: sospechoso, confirmado y brote

Sospechoso. Un centro pasa a esta categoría si cumple al menos una condición: resultado de laboratorio positivo en muestras de uno o más peces de cualquiera de sus jaulas o unidades epidemiológicas; signología clínica o anatomopatológica compatible en uno o más peces; o haber recibido peces vivos desde un centro confirmado o sospechoso. La muestra positiva debe someterse a secuenciación de la región hipervariable del segmento 6.

Los centros sospechosos conservan esa condición hasta que el Servicio determine un cambio. Luego de 45 días sin detectarse nueva positividad en los muestreos sucesivos, el centro deja la categoría de sospechoso y queda en vigilancia por al menos 12 meses.

Confirmado. Requiere dos resultados de laboratorio positivos en muestreos diferentes. Según la secuenciación se distinguen tres subcategorías:

Categoría	Criterio
Confirmado HPR 0	Sin signología compatible, y la secuenciación determina variante HPR 0
Confirmado indeterminado	No se ha podido secuenciar la región HPR. Se mantiene hasta lograrlo
Confirmado otros HPR	La secuenciación determina una variante distinta de HPR 0

Cuando no es posible secuenciar, puede realizarse RT-PCR específico para HPR 0. Aun así, en todos los muestreos sucesivos con muestras positivas debe secuenciarse al menos una, seleccionando la muestra con el valor de CT más bajo.

Brote. Centro con dos resultados positivos, confirmación de otros HPR en al menos una jaula o unidad epidemiológica, y signología clínica consistente con ISA. Se distinguen dos niveles:

Nivel	Criterio
Jaula o unidad epidemiológica en brote	Al menos una jaula en brote y menos del 30% del total de jaulas pobladas en esa condición simultáneamente
Centro en brote	30% o más de las jaulas o unidades epidemiológicas en brote simultáneamente

Zonificación

Zona	Delimitación
Zona infectada, centros en mar	Área que rodea a un centro confirmado otros HPR, con radio mínimo de 5 millas náuticas. La extensión la define el Servicio según riesgo de diseminación, factores epidemiológicos y características oceanográficas
Zona infectada, pisciculturas	La cuenca hidrográfica o parte de ella, más las unidades epidemiológicamente relacionadas e instalaciones aguas abajo que usen aguas superficiales. No se genera si la piscicultura cuenta con tratamiento de desinfección de efluentes que elimine el virus
Zona infectada, centros en lago	Todos los centros del lago donde se detectó el centro confirmado, más las instalaciones hidrobiológicamente conectadas
Zona de vigilancia	Área que rodea a la zona infectada, con radio mínimo de 5 millas náuticas
Zona libre	Área sin detección de virus ni manifestación clínica en los 2 últimos años

Como referencia de aplicación real, en un caso de 2013 el Servicio declaró zona infectada con un halo de 5,4 millas náuticas en torno al centro afectado, y en un caso más reciente de la Región de Magallanes la zona alcanzó los 22 kilómetros, cerca de 12 millas náuticas. El radio mínimo es un piso, no un estándar fijo.

Duración. La condición de zona infectada se mantiene 3 meses en centros de mar, ríos y lagos, y 1 mes en pisciculturas, contados desde la desinfección completa del centro confirmado que le dio origen, efectuada tras haber eliminado o cosechado todos los peces. Transcurrido ese plazo, la zona pasa a zona de vigilancia por al menos 2 años, tras lo cual puede clasificarse como zona libre.

Los centros dentro de una zona infectada quedan en riesgo; los de una zona de vigilancia, en vigilancia. El Servicio puede establecer zonas de vigilancia con fines precautorios aun sin detección del virus, y puede integrar varias zonas en una macrozona de vigilancia.

Medidas de control: cosecha, desinfección y descanso sanitario

Plan de cosecha o eliminación. Los centros confirmados indeterminados, otros HPR o en brote deben presentar, en un plazo de 48 horas desde la notificación, un plan con los protocolos de eliminación o cosecha para las jaulas positivas.

Ejecución.

Acción	Plazo
Inicio de cosecha o eliminación de jaulas positivas	Máximo 3 días desde la notificación de la condición
Duración máxima de la cosecha	15 días
Duración máxima de la eliminación	7 días
Inicio del proceso de desinfección	Máximo 7 días desde la cosecha o eliminación total
Término del proceso de desinfección	Máximo 21 días

Si hay varias jaulas en condición de confirmada otros HPR o en brote, debe priorizarse aquellas con condición sanitaria más deficiente. El Servicio puede ampliar estos plazos por una sola vez, previa solicitud fundada en condiciones operativas o climáticas, acompañada de un informe detallado.

Alcance de la cosecha. En centros con jaulas en brote bajo el 30%, se cosechan o eliminan las jaulas positivas. En centros en brote sobre el 30%, la cosecha o eliminación es total.

Descanso sanitario.

Tipo de centro	Descanso
Engorda en mar y esmoltificación, confirmados indeterminados, otros HPR o en brote	3 meses desde la cosecha o eliminación total
Pisciculturas	7 días desde la eliminación o cosecha de las unidades positivas y su desinfección

Tras cosechar la última jaula debe retirarse la totalidad de las redes y ejecutar los procedimientos de desinfección, acreditados por un certificador de desinfección. No puede ingresarse salmón del Atlántico hasta completar los 3 meses de descanso; otros salmónidos pueden ingresar cumplido 1 mes.

Modalidades de cosecha autorizadas para centros en riesgo con salmón del Atlántico, sospechosos, confirmados otros HPR o en brote: cosecha tipo canadiense (binsboat, iceboat) u otro sistema que impida caída de sangre y desechos al medio; wellboats cerrados con bombeo directo a planta; o wellboats con sistema de desinfección de efluentes. Los peces evidentemente enfermos al momento de la cosecha deben apartarse y destinarse a mortalidad.

El faenamiento y procesamiento solo puede realizarse en plantas con sistema de desinfección de efluentes que garantice la inactivación del virus, incorporadas en un listado publicado por el Servicio. Se prohíbe el uso como carnada de peces o desechos provenientes de estos centros.

Restricción de repoblamiento. No puede ingresarse salmón del Atlántico a los centros ubicados a 5 millas náuticas de un centro confirmado otros HPR hasta que ese centro haya concluido su período de descanso de 3 meses.

Movimientos según categoría. Los centros sospechosos no pueden mover peces hasta confirmar o descartar la positividad, salvo que sean eliminados o cosechados. Las pisciculturas confirmadas indeterminadas no pueden trasladar peces hasta obtener el resultado de secuenciación o del RT-PCR específico para HPR 0. Los centros confirmados otros HPR, indeterminados o en brote no pueden trasladar reproductores a agua dulce.

Reproductores positivos. Si del screening resulta algún pez positivo, deben eliminarse todas las ovas provenientes de padres positivos y aquellas de padres negativos dispuestas en el mismo incubador.

Qué exámenes de laboratorio se aplican y para qué sirve cada uno

RT-PCR. Herramienta de vigilancia y detección, capaz de detectar el virus en portadores sin signología. Dos resultados positivos en muestreos diferentes constituyen el criterio de confirmación.

Secuenciación de la región hipervariable del segmento 6. Define la categoría final del centro al distinguir HPR 0 de otras variantes. Cuando hay varias muestras positivas, se secuencia la de menor CT.

RT-PCR específico para HPR 0. Alternativa cuando la secuenciación no es posible. No exime de secuenciar en muestreos sucesivos.

Histopatología. Aporta el respaldo morfológico del cuadro. Se procesa con tinción hematoxilina-eosina sobre tejido fijado en formalina tamponada al 10%.

Inmunohistoquímica e inmunofluorescencia. Localizan el antígeno viral dentro del tejido.

Aislamiento en cultivo celular. Confirma que el virus es viable y replicativo. En el brote índice chileno se logró en las líneas CHSE-214, SHK-1 y EPC, con efecto citopático entre 4 y 7 días post inoculación.

Las recomendaciones de WOAH agregan un matiz sobre selección de tejido según objetivo: para examen virológico el corazón debe incluirse siempre junto al riñón medio, y para vigilancia por PCR conviene agregar branquia. Para histopatología, el orden de prioridad es riñón medio, hígado, corazón, páncreas e intestino, bazo, branquia, y piel y músculo. Para inmunohistoquímica, riñón medio y corazón incluyendo válvulas y bulbo arterioso. La branquia no se recomienda para aislamiento viral por dificultad de evitar contaminación microbiana.

Contramuestra, conservación y traslado

Contramuestra. Obligatoria y simultánea a la extracción. Debe almacenarse a mínimo -20°C por no menos de 15 días, salvo disposición contraria del Servicio. En análisis moleculares puede conservarse como homogeneizado de los órganos. Solo puede utilizarse por SERNAPESCA o por el laboratorio con autorización expresa.

Tiempo hasta inicio del análisis	Condición
Menos de 24 horas	Refrigeración a 4-10°C, con sistema de registro de temperatura. Evitar la congelación
Más de 24 horas	Extraer órganos con instrumental de disección y depositar en preservante de ARN comercial o etanol PA en proporción 1:10. Si se usa etanol, mantener refrigerado a 4-10°C o inferior con registro de temperatura

Las muestras se envían en doble contenedor, en bolsas dentro de cajas de polietileno expandido, selladas para evitar alteración. El rotulado debe incluir código del centro, fecha de muestreo y códigos de los grupos muestreados.

Bioseguridad durante el muestreo

El personal debe contar como mínimo con delantal limpio o desechable, botas limpias y desinfectadas, y guantes desechables de primer uso. Entre muestras de distintas jaulas o unidades epidemiológicas debe cambiarse todo el material desechable, incluidos papel absorbente, guantes y hoja de bisturí, además de limpiar y desinfectar el material reutilizable.

Una restricción relevante para la programación de rutas: un certificador que realiza procedimientos en un centro positivo a una enfermedad con programa específico de control no puede muestrear otro centro con especies susceptibles hasta transcurridas al menos 24 horas.

Todos los centros marinos y lacustres de salmónidos deben aplicar sistemas all in all out. Los restos de peces del muestreo se incorporan al tratamiento de mortalidad del centro o se disponen como desecho biológico.

Brotes de ISA en el mundo: Noruega, Escocia, Feroe y Canadá

ISA fue descrita por primera vez en Noruega en 1984 y, con la excepción de Australia, todos los países donde la salmonicultura se practica de forma intensiva han enfrentado brotes. La propia ficha técnica de la norma chilena registra esa distribución: Canadá en 1996, Escocia en 1998, Islas Feroe en 2000, Estados Unidos en 2001 y Chile en 2007.

País	Episodio	Resultado
Noruega	Primera descripción en 1984; peak de más de 80 brotes en 1990	No erradicada. Desde 1993 el número anual oscila entre 1 y 20. Implementó descanso obligatorio mínimo de dos meses y áreas de manejo con descanso sincronizado
Escocia	Brotes en 1998-99 y 2008-09	Ambos erradicados, mediante sacrificio agresivo y control de movimientos. El primer episodio tuvo un costo estimado superior a 20 millones de libras
Islas Feroe	Brote entre 2000 y 2005	Destruyó la industria de la región afectada, con caída cercana al 70% en producción. La respuesta fue una reestructuración completa: un solo productor por fiordo, control estricto del tráfico de embarcaciones y supervisión veterinaria reforzada. Desde 2005 prácticamente sin eventos mayores
Canadá	Nuevo Brunswick, 1996	Hacia 1998 se habían eliminado más de 1,2 millones de peces en 16 centros. El virus permanece endémico en las provincias del este
Chile	Brote iniciado en 2007	El episodio de mayor severidad registrado a nivel mundial. La enfermedad no fue erradicada y el virus permanece en el país, con casos esporádicos bajo vigilancia normativa

Interpretación Evidencia Vet

Al ordenar el protocolo completo aparecen tres características de diseño que conviene reconocer al aplicarlo.

La primera es que el programa prioriza deliberadamente el muestreo de los peces en peor estado. La instrucción de seleccionar orillados y mortalidad fresca del día, y de muestrear como mínimo tres jaulas privilegiando las de mayor mortalidad, no es un detalle operativo: determina la sensibilidad real del muestreo. Completar la cuota con peces al azar cuando existían ejemplares sintomáticos disponibles reduce la probabilidad de detección de forma silenciosa.

La segunda es la asimetría de frecuencias según tipo de centro y condición. Un centro de engorda en mar con salmón del Atlántico muestrea trimestralmente en rutina, mensualmente si está en zona de vigilancia y quincenalmente si está en zona infectada. Un centro de esmoltificación en la misma zona de vigilancia lo hace semestralmente. Esa diferencia no es arbitraria: refleja dónde se concentra el riesgo de expresión clínica y de diseminación. Leer una sola frecuencia como si aplicara a todo el sistema es el error más fácil de cometer con esta norma.

La tercera es que los plazos de control están construidos para cerrar ventanas de transmisión, no solo para ordenar la faena. Tres días para iniciar la cosecha, quince para completarla, siete para iniciar la desinfección y veintiuno para terminarla, más tres meses de descanso y dos años de zona de vigilancia posterior. La experiencia internacional sugiere que la diferencia entre los países que erradicaron la enfermedad y los que convivieron con ella tuvo menos que ver con la calidad de sus herramientas diagnósticas, que son en lo esencial las mismas y están estandarizadas por WOAH, que con la rapidez del sacrificio y del control de movimientos, y con la estructura territorial de la producción.

Conclusión

El PSEVC-ISA es un instrumento detallado y sus exigencias son verificables punto por punto. Para el profesional de terreno, las piezas que conviene tener siempre presentes son cuatro: los dos umbrales independientes de notificación de mortalidad; la frecuencia que corresponde al centro según su tipo y condición sanitaria, que es donde la norma más se malinterpreta; el conjunto de órganos blanco y tamaños de muestra; y los plazos que empiezan a correr desde la notificación de una condición positiva. Las lesiones documentadas en el brote índice de 2007 siguen siendo la mejor referencia disponible de cómo se presenta la enfermedad en condiciones productivas reales, y la experiencia internacional muestra que la contención efectiva dependió tanto de la rapidez de la respuesta como de las condiciones estructurales en que opera la producción.

Puntos clave

• Existen dos umbrales independientes de notificación de mortalidad: 0,05% diario por 5 días consecutivos, o 2% en menos de 5 días. Basta con uno de los dos.
• Los órganos blanco para ISAv son corazón, riñón y branquia, con trozos de mínimo 5 mm³ en peces sobre 6 cm.
• El máximo es de 3 peces por pool, todos de la misma unidad epidemiológica, a diferencia de otros programas que permiten 5.
• Las frecuencias difieren por tipo de centro: en engorda marina con salmón del Atlántico, mensual en vigilancia y quincenal en riesgo; en esmoltificación, semestral en ambas condiciones para todas las especies susceptibles.
• El muestreo de rutina en engorda marina con salmón del Atlántico es trimestral, con mínimo 30 peces, y el primero se realiza 30 días después de sembrado el último pez.
• Ningún centro que siembre en mar puede cosechar o eliminar sin haber realizado ese primer muestreo.
• La confirmación exige dos resultados positivos en muestreos distintos, y la secuenciación del segmento 6 define la categoría final.
• Tras 45 días sin nueva positividad, un centro sospechoso pasa a vigilancia por al menos 12 meses.
• La zona infectada tiene un radio mínimo de 5 millas náuticas, extensible por el Servicio según riesgo, y se mantiene 3 meses en centros de mar antes de pasar a zona de vigilancia por al menos 2 años.
• La cosecha debe iniciarse dentro de 3 días de la notificación y no exceder 15 días; la desinfección debe iniciarse dentro de 7 días y culminar en 21.
• El descanso sanitario es de 3 meses en centros de mar y 7 días en pisciculturas.

Referencias

1. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Resolución Exenta N°1577, de 28 de julio de 2011, que establece el Programa Sanitario Específico de Vigilancia y Control de la Anemia Infecciosa del Salmón (PSEVC-ISA) y deroga resoluciones que indica.

2. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Resolución Exenta N°228, de 22 de febrero de 2013, que modifica la Res. Ex. N°1577/2011.

3. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Resolución Exenta N°3610, de 13 de agosto de 2019, que modifica las resoluciones exentas N°61 de 2003, N°1577 de 2011, N°3174 de 2012 y N°13 de 2015.

4. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Resolución Exenta N°565, de 14 de febrero de 2019, que modifica la Res. Ex. N°1577/2011 en su numeral 8.13.

5. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Resolución Exenta N°733, de 28 de diciembre de 2022, que modifica el PSEVC-ISA.

6. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Norma Técnica LABD/NT1: Procedimientos para el muestreo de animales acuáticos.

7. Servicio Nacional de Pesca y Acuicultura. Manual de Procedimientos del Departamento de Salud Animal, Subdirección de Acuicultura. Versión diciembre 2025.

8. Ministerio de Economía, Fomento y Turismo. Decreto Supremo N°319 de 2001, Reglamento de Medidas de Protección, Control y Erradicación de Enfermedades de Alto Riesgo para las Especies Hidrobiológicas, y sus modificaciones.

9. Godoy MG, Aedo A, Kibenge MJT, Groman DB, Yason CV, Grothusen H, Lisperguer A, Calbucura M, Avendaño F, Imilán M, Jarpa M, Kibenge FSB. First detection, isolation and molecular characterization of infectious salmon anaemia virus associated with clinical disease in farmed Atlantic salmon (Salmo salar) in Chile. BMC Veterinary Research. 2008;4:28. https://doi.org/10.1186/1746-6148-4-28

10. World Organisation for Animal Health (WOAH). Infection with HPR-deleted or HPR0 infectious salmon anaemia virus. En: Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals, capítulo 2.3.4.

11. Aamelfot M, Weli SC, Dale OB, Koppang EO, Falk K. Expression of the infectious salmon anemia virus receptor on Atlantic salmon endothelial cells correlates with the cell tropism of the virus. Journal of Virology. 2012.

¿Qué significa esto en terreno?

• Solicitar el muestreo de vigilancia con al menos 3 días hábiles de anticipación a la oficina de SERNAPESCA correspondiente.
• Revisar mortalidad por jaula de las últimas semanas antes de decidir qué unidades muestrear, y recordar el mínimo de 3 jaulas privilegiando las de mayor mortalidad.
• Verificar la frecuencia que corresponde al centro según su tipo y condición, no aplicar una sola regla general: engorda en mar con salmón del Atlántico en vigilancia es mensual, en riesgo es quincenal.
• Seleccionar primero peces orillados y mortalidad fresca de menos de 12 horas sin tratar con desinfectante. Completar al azar solo si no se alcanza el número.
• Extraer corazón, riñón y branquia en peces sobre 6 cm, con trozos de al menos 5 mm³.
• Respetar el máximo de 3 peces por pool, todos de la misma unidad epidemiológica.
• Extraer siempre la contramuestra y verificar que quede a -20°C por al menos 15 días.
• Si el traslado supera 24 horas, extraer los órganos en terreno y depositarlos en preservante de ARN o etanol PA 1:10.
• Cambiar todo el material desechable entre jaulas, incluida la hoja de bisturí, y considerar la restricción de 24 horas para el certificador tras trabajar en un centro positivo.
• Monitorear los dos umbrales de notificación de mortalidad de forma independiente: 0,05% diario por 5 días consecutivos, y 2% en menos de 5 días.
• Ante notificación de sospecha, tener presente que corren en paralelo el muestreo de todas las jaulas en 48 horas y el envío de la Encuesta Epidemiológica en el mismo plazo.
• Al planificar traslados, verificar que el análisis de respaldo tenga menos de 30 días y cubra el mínimo de 30 peces por jaula o unidad a trasladar.
• Recordar que ningún centro que siembre en mar puede cosechar o eliminar sin haber realizado el primer muestreo, que no puede ocurrir antes de 30 días desde el término de la siembra.