Echinococcus granulosus

Taxonomía y morfología

Un complejo de especies. Echinococcus granulosus sensu lato agrupa varias especies y genotipos. Los zoonóticos son E. granulosus sensu stricto (genotipos G1 a G3), Echinococcus ortleppi (G5) y el grupo Echinococcus canadensis (G6, G7, G8 y G10) (CDC DPDx, s.f.-a). Pertenece a la familia Taeniidae, la misma de Taenia.

Adulto. Mide de 2 a 7 mm. Tiene un escólex con cuatro ventosas y un rostelo con 25 a 50 ganchos (CDC DPDx, s.f.-a). Sus proglótidos son tan pequeños que casi no se ven en las heces (ESCCAP, 2025).

Quiste hidatídico. Es la larva. Tiene una capa germinativa que produce cápsulas prolígeras con protoescólex, y puede formar quistes hijos (CDC DPDx, s.f.-a).

Hospedadores y localización

Definitivos. Cánidos domésticos y silvestres. El adulto vive en el intestino delgado (CDC DPDx, s.f.-a).

Intermediarios. Varían según el genotipo: ovinos, caprinos, bovinos, camélidos o cérvidos (CDC DPDx, s.f.-a). En Chile, el ovino es el principal hospedador intermediario que mantiene el ciclo (Lagos et al., 2025).

Personas. Son hospedadores intermediarios aberrantes: desarrollan quistes, pero no continúan el ciclo (CDC DPDx, s.f.-a).

Ciclo biológico

Del perro al ganado. El adulto libera huevos que salen con las heces y son infectantes de inmediato. Cuando un hospedador intermediario los traga, la oncosfera sale en el intestino, atraviesa la pared y llega por la circulación a los órganos, sobre todo el hígado y el pulmón, donde forma el quiste (CDC DPDx, s.f.-a).

Del ganado al perro. El perro se infecta al comer vísceras con quistes fértiles. Los protoescólex se desarrollan hasta adultos en 32 a 80 días (CDC DPDx, s.f.-a). ESCCAP da una prepatencia de 5 a 8 semanas, según la especie y el genotipo (ESCCAP, 2025).

Fertilidad del quiste. No todos los quistes producen protoescólex. En 123 quistes de un matadero de La Araucanía, el 76,2% de los quistes de ovinos era fértil, contra el 3,2% de los de bovinos; los de cerdos y cabras eran infértiles. Los bovinos sirven como centinelas, pero aportan poco a la transmisión hacia el perro (Fonseca-Salamanca et al., 2026).

El huevo en el ambiente (Barosi y Umhang, 2024):

• Resiste la congelación hasta −50 °C, pero muere bajo −70 °C y sobre 65 °C.
• La desecación es el principal factor que lo limita: con humedad bajo 34% sobrevive mal.
• En terreno, su supervivencia varía mucho con el clima: en Kenia se mantuvo viable 19 días en una zona y 2 días en otra semiárida.

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: la congelación doméstica, cercana a −18 °C, no destruye los huevos. Las heces o muestras de perros sospechosos deben manejarse como infectantes aunque hayan estado en un congelador común.

Situación en Chile

Genotipos. Predomina E. granulosus sensu stricto. En La Araucanía, el 98,1% de los quistes era G1 y dos quistes de bovinos eran G3 (Fonseca-Salamanca et al., 2026). En América del Sur predominan los genotipos G1 a G3 y G6, y Chile aportó el 13,2% de los estudios de una revisión continental (Rojas-Pincheira et al., 2022).

Magallanes. La infección bajó a 0,5% en perros y 0,7% en ovinos al terminar el programa de control en 2004. Después volvió a subir: en 2023, el 6% de los ovinos faenados tenía quistes (Alvarez Rojas y Alvarez, 2025).

Perros. En 2009, el 28% de 93 perros rurales de Limarí, Región de Coquimbo, tenía antígeno de Echinococcus en las heces (Acosta-Jamett et al., 2014).

Lo que no se sabe. No hay estudios nacionales en perros, ni datos recientes de perros en Magallanes (Alvarez Rojas y Alvarez, 2025). La epidemiología completa está en las fichas de enfermedad.

Enfermedades que causa

• En el perro: equinococosis quística, una infección intestinal sin signos.
• En el ganado: hidatidosis, con decomiso de hígados y pulmones.
• En las personas: equinococosis quística (ver Riesgo zoonótico).

Diagnóstico parasitológico

El huevo no basta. Los huevos de ténidos miden 30 a 35 µm, tienen estrías radiales y una oncosfera con seis ganchos. Los de Echinococcus no se distinguen de los de Taenia al microscopio (CDC DPDx, s.f.-b). En zonas endémicas, un hallazgo de huevos de ténido en un perro se maneja como posible Echinococcus hasta identificarlo por PCR (ESCCAP, 2025).

Flotación. Tiene baja sensibilidad, porque la eliminación de huevos es intermitente. ESCCAP sugiere soluciones de flotación más densas y muestras de 3 días seguidos (ESCCAP, 2025).

Coproantígeno y PCR. El ELISA de antígeno en heces se usó en los estudios chilenos de perros (Acosta-Jamett et al., 2014). La PCR identifica la especie (ESCCAP, 2025).

En el hospedador intermediario. La inspección de vísceras en la faena encuentra los quistes. En el líquido de un quiste se ven protoescólex, ganchos sueltos, corpúsculos calcáreos y la llamada arena hidatídica (CDC DPDx, s.f.-a).

Seguridad en el laboratorio. Es una inferencia de Evidencia Vet: como el huevo es infectante desde que sale, las heces de perros sospechosos se procesan con guantes y protección, y no se deja la muestra en ambientes donde pueda secarse y dispersarse.

Control y antiparasitarios

Praziquantel. Es el fármaco usado en el perro. En perros que pueden comer vísceras crudas, ESCCAP lo recomienda al menos cada 6 semanas, para cortar la infección antes de que termine la prepatencia (ESCCAP, 2025).

Control del ciclo. Los programas combinan el tratamiento de perros, la vacunación de ovinos con EG95, la mejora de los mataderos, la regulación de la faena en casa y la educación (Borhani et al., 2024). En Chile, la EG95 se incorporó en 2016 a programas piloto en dos regiones del sur (Alvarez Rojas et al., 2016).

Lo que enseña Magallanes. El control funciona mientras se mantiene. Cuando se detiene, la infección vuelve (Alvarez Rojas y Alvarez, 2025).

Resistencia antiparasitaria

Sin reportes en las fuentes revisadas. Las fuentes revisadas no describen resistencia de E. granulosus al praziquantel.

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: las fallas de control en Chile se explican por la frecuencia del tratamiento y la continuidad de los programas; la eficacia del praziquantel no está en duda en las fuentes revisadas.

Riesgo zoonótico

Cómo se infectan las personas. Al tragar huevos desde las manos, el pelo del perro, el suelo o el agua (CDC DPDx, s.f.-a). En Chile y Perú, entre el 10% y el 30% de las muestras de pelo de perros estaban contaminadas, y los lugares públicos más que las casas (Acosta-Jamett et al., 2025).

Enfermedad. Los quistes se forman sobre todo en el hígado y el pulmón. El diagnóstico en personas se basa en imágenes, con serología de apoyo (CDC DPDx, s.f.-a). La hidatidosis humana es de notificación obligatoria al Minsal (Ministerio de Salud, 2019), y la infección animal, de denuncia obligatoria al SAG (SAG, 2019).

Lo que no se sabe

• La prevalencia actual en perros de las regiones con más casos humanos.
• Cuánto tiempo sobrevive el huevo en los climas de Aysén y Magallanes, porque los estudios de terreno son de otros países (Barosi y Umhang, 2024).
• La frecuencia de los genotipos G3 y G5 en Chile fuera de La Araucanía.

Referencias

Guías y referencias de laboratorio

1. Centers for Disease Control and Prevention. (s.f.-a). Echinococcosis. DPDx, Laboratory Identification of Parasites of Public Health Concern. https://www.cdc.gov/dpdx/echinococcosis/
2. Centers for Disease Control and Prevention. (s.f.-b). Taeniasis. DPDx, Laboratory Identification of Parasites of Public Health Concern. https://www.cdc.gov/dpdx/taeniasis/
3. ESCCAP. (2025). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl1/

Revisiones

4. Barosi, R., & Umhang, G. (2024). Presence of Echinococcus eggs in the environment and food: a review of current data and future prospects. Parasitology, 151(13), 1416-1431. https://doi.org/10.1017/S0031182024000945
5. Borhani, M., Fathi, S., Harandi, M. F., Casulli, A., Ding, J., et al. (2024). Echinococcus granulosus sensu lato control measures: a specific focus on vaccines for both definitive and intermediate hosts. Parasites & Vectors, 17. https://doi.org/10.1186/s13071-024-06581-2
6. Rojas-Pincheira, C., Manterola, C., García-Méndez, N., & Totomoch-Serra, A. (2022). Distribución espacial de los genotipos de Echinococcus granulosus sensu lato por hospedero en el continente americano. Revisión sistemática. Revista Médica de Chile, 150(7). https://revistamedicadechile.cl/index.php/rmedica/article/view/9601

Estudios en Chile y la región

7. Acosta-Jamett, G., Tamarozzi, F., Castro, N., Santivanez, S. J., Laurente, R. E., Mazzi, C., Alvarez-Rojas, C. A., & Casulli, A. (2025). Community risk of environmental-borne cystic echinococcosis transmission in South America: results from the multistep cross-sectional and case-control PERITAS study. PLoS Neglected Tropical Diseases, 19(8), e0013382. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013382
8. Acosta-Jamett, G., Weitzel, T., Boufana, B., Adones, C., Bahamonde, A., Abarca, K., Craig, P. S., & Reiter-Owona, I. (2014). Prevalence and risk factors for echinococcal infection in a rural area of northern Chile: a household-based cross-sectional study. PLoS Neglected Tropical Diseases, 8(8), e3090. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003090
9. Alvarez Rojas, C. A., & Alvarez, J. F. (2025). Reemergence of Echinococcus granulosus infections after 2004 termination of control program in Magallanes Region, Chile. Emerging Infectious Diseases, 31(2), 373-376. https://doi.org/10.3201/eid3102.240980
10. Alvarez Rojas, C. A., Fredes, F., Torres, M., Acosta-Jamett, G., Alvarez, J. F., Pavletic, C., Paredes, R., & Cortés, S. (2016). First meeting “Cystic echinococcosis in Chile, update in alternatives for control and diagnostics in animals and humans”. Parasites & Vectors, 9, 502. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1792-y
11. Fonseca-Salamanca, F., Melo, A., Venegas, J., Paredes, M., Villanueva, J., Poo-Muñoz, D., Muñoz-Caro, T., Herrera-George, C., & Hidalgo, A. (2026). Cattle as biological indicators of Echinococcus granulosus sensu stricto in an endemic region from Chile. Animals, 16(12), 1901. https://doi.org/10.3390/ani16121901
12. Lagos, R., Gutiérrez-Jara, J. P., Cancino-Faure, B., et al. (2025). The role of host mobility in the transmission and spread of Echinococcus granulosus: a Chile-based mathematical modeling approach. PLoS Neglected Tropical Diseases, 19(4), e0012948. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0012948

Normativa chilena

13. Ministerio de Salud de Chile. (2019). Decreto 7, que aprueba el reglamento sobre notificación de enfermedades transmisibles de declaración obligatoria y su vigilancia. Diario Oficial, 24 de enero de 2020.
14. Servicio Agrícola y Ganadero. (2019). Enfermedades de denuncia obligatoria al SAG. https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/enfermedades_denuncia_obligatoria_sag_9-10-2019.pdf