Ichthyophthirius multifiliis

Taxonomía y morfología

Protozoo ciliado. Ichthyophthirius multifiliis es un ciliado holotrico, con cilios en toda su superficie (Zajac et al., 2021). Los protozoos son probablemente el grupo de parásitos que más enfermedad causa en peces ornamentales y de cultivo, y el “ich” es el ejemplo clásico (Zajac et al., 2021).

Tamaños según el estadio (Zajac et al., 2021):

Estadio	Dónde está	Tamaño
Trofonte	Bajo el epitelio	Hasta 1 mm; entre 100 y 1.000 µm según la madurez, la nutrición y la especie de pez
Teronte o tomito	Nadando en el agua	25 a 50 × 15 a 22 µm

La ficha de ictioftiriasis da 30 a 40 µm para el teronte, a partir de otras fuentes.

El rasgo clave. El trofonte tiene un macronúcleo en forma de C, o de herradura (Zajac et al., 2021).

Con qué se confunde. Cryptocaryon irritans, el punto blanco marino, tiene un ciclo y un tamaño parecidos, pero no tiene el macronúcleo en C y vive en agua salada o salobre (Zajac et al., 2021).

Hospedadores y localización

Peces de agua dulce de todo el mundo. Incluye a los salmónidos durante la fase de agua dulce (Zajac et al., 2021). En Chile se diagnosticó en coho, salmón del Atlántico, trucha arcoíris y chinook (Campalans, 2001).

Solo agua dulce. No sobrevive en el mar (ver la ficha de ictioftiriasis).

En el pez. Vive bajo la capa superficial del epitelio de la piel, las aletas y las branquias (Zajac et al., 2021).

Fuente de entrada. Los peces silvestres del agua de origen pueden traer el parásito a la piscicultura (ver la ficha de ictioftiriasis).

Ciclo biológico

Directo, sin hospedador intermediario (Zajac et al., 2021):

1. Teronte. La forma infectante nada libre e invade la piel, las aletas y las branquias.
2. Trofonte. Penetra el epitelio, se alimenta y crece. Es el punto blanco visible.
3. Salida. El trofonte maduro sale del pez y deja el epitelio dañado.
4. Tomonte. En el agua forma un quiste sobre el fondo o las superficies.
5. Tomitos. Dentro del quiste se divide muchas veces y libera numerosos terontes nuevos.

La temperatura cambia todo. En un aislado australiano de trucha arcoíris, la fase de quiste tardó en promedio 189 horas a 5 °C y 11,7 horas a 30 °C. Los autores advierten que los tiempos varían según la cepa (Forwood et al., 2015).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: en agua fría el ciclo se alarga y los brotes avanzan más lento, pero también hay que mantener los tratamientos por más días, porque las formas libres siguen apareciendo durante más tiempo.

Situación en Chile

Un estudio de 1997. En pisciculturas de la zona de Puerto Montt, 90 de 287 peces examinados tenían protozoos, e Ichthyophthirius se encontró en 20: 8 salmones del Atlántico y 12 truchas arcoíris (Soria-Galvarro, 1997).

Baja prioridad oficial. Un proyecto de 2001 la clasificaba como enfermedad de baja peligrosidad (Campalans, 2001). No está entre las enfermedades de alto riesgo (Subpesca, 2024), y los informes sanitarios recientes de Sernapesca no la mencionan (ver la ficha de ictioftiriasis).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: la falta de datos recientes no significa que no ocurra. Las pisciculturas abiertas, con agua de río, siguen expuestas a peces silvestres portadores.

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios chilenos recientes sobre su frecuencia.

Enfermedades que causa

• En peces de agua dulce: ictioftiriasis, o enfermedad de los puntos blancos.

Daño. La entrada del teronte y la salida del trofonte rompen la integridad de la piel y las branquias y alteran la osmorregulación del pez (Zajac et al., 2021). Cuando la infección es solo branquial, los puntos blancos pueden no verse y la mortalidad puede ser alta (ver la ficha de ictioftiriasis).

Diagnóstico parasitológico

Muestras de pez vivo. Los ectoparásitos de peces se buscan con muestras que no obligan a sacrificar al pez; una sedación suave hace el procedimiento más fácil y menos estresante (Zajac et al., 2021).

Muestra	Qué se toma	Cuidado
Frotis de mucus	Mucus de una zona pequeña de piel, raspada con suavidad	Presión mínima: dañar la piel favorece infecciones secundarias
Biopsia de aleta	Un trozo pequeño del borde de una aleta	Es más traumática que el frotis
Biopsia de branquia	Las puntas de algunos filamentos	Sangra poco si solo se cortan las puntas

Fuente: Zajac et al. (2021).

El montaje. Cada muestra va de inmediato a una gota de agua del propio estanque, con cubreobjetos. El agua potable de la red o la destilada no sirven para esto (Zajac et al., 2021).

Qué se ve. El trofonte grande, redondo y ciliado, con el macronúcleo en forma de C (Zajac et al., 2021).

Histopatología. Muestra los trofontes dentro del epitelio y el daño branquial (ver la ficha de ictioftiriasis).

Vigilancia en el agua. Una qPCR en muestras de agua de río detectó terontes en cantidades muy bajas (Howell et al., 2019), lo que permite vigilar el agua de entrada.

Es una inferencia de Evidencia Vet: como la infección branquial puede no dar puntos visibles, la biopsia de branquia es la muestra que más rinde cuando un lote de agua dulce tiene mortalidad sin causa clara.

Control y antiparasitarios

Por qué cuesta. Los tratamientos solo alcanzan a los terontes y tomontes libres; el trofonte queda protegido bajo el epitelio. Por eso se repiten para cubrir varias generaciones, y con agua fría el tratamiento se extiende por más días (ver la ficha de ictioftiriasis).

En Chile. Hay una formalina registrada en el SAG para protozoos externos de peces. Su etiqueta indica 170 µL/L sobre 10 °C y 250 µL/L bajo 10 °C, por no más de una hora, con dos días entre tratamientos contra Ichthyophthirius (SAG, registro 2254).

Otras opciones estudiadas:

• Bronopol en exposición larga y dosis baja redujo el establecimiento de trofontes en truchas (Picón-Camacho et al., 2012).
• Verde de malaquita: prohibido en peces de consumo en Europa y Norteamérica (Sudová et al., 2007).

Prevención (ver la ficha de ictioftiriasis):

• Revisar el agua de origen.
• Mantener una densidad y un recambio adecuados.
• Limpiar los fondos, donde se acumulan los quistes.
• Examinar raspados y biopsias en forma rutinaria, sobre todo cuando sube la temperatura.

El tratamiento lo define el médico veterinario de la piscicultura.

Resistencia antiparasitaria

Sin resistencia descrita. Las fuentes revisadas no describen poblaciones de I. multifiliis resistentes a la formalina ni a otros tratamientos.

Por qué fallan los tratamientos. Es una inferencia de Evidencia Vet: la causa habitual de que un brote no ceda es tratar pocas veces o con intervalos que no calzan con la temperatura del agua, no la resistencia.

Riesgo zoonótico

No es zoonótico. Es un parásito exclusivo de peces.

Lo que no se sabe

• Con qué frecuencia aparece hoy en las pisciculturas chilenas.
• Cuánto duran las fases del ciclo con las cepas y temperaturas de los ríos del sur de Chile.
• Si hay sustitutos de la formalina con eficacia equivalente y registro en Chile.

Referencias

Libro y biología

1. Forwood, J. M., Harris, J. O., Landos, M., & Deveney, M. R. (2015). Life cycle and settlement of an Australian isolate of Ichthyophthirius multifiliis from rainbow trout. Folia Parasitologica, 62. https://doi.org/10.14411/fp.2015.013
2. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Parasites of fish. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 347-366). Wiley-Blackwell.

Diagnóstico y tratamiento

3. Howell, C. K., Atkinson, S. D., Bartholomew, J. L., & Hallett, S. L. (2019). Development and application of a qPCR assay targeting Ichthyophthirius multifiliis in environmental water samples. Diseases of Aquatic Organisms, 134, 43-55. https://doi.org/10.3354/dao03351
4. Picón-Camacho, S. M., Taylor, N. G. H., Bron, J. E., Guo, F. C., & Shinn, A. P. (2012). Effects of long duration, low dose bronopol exposure on the control of Ichthyophthirius multifiliis in rainbow trout. Veterinary Parasitology, 186(3-4), 237-244. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.11.022
5. Sudová, E., Machová, J., Svobodová, Z., & Veselý, T. (2007). Negative effects of malachite green and possibilities of its replacement in the treatment of fish eggs and fish: a review. Veterinární Medicína, 52(12), 527-539. https://doi.org/10.17221/2027-vetmed

Fuentes de Chile

6. Campalans, M. (jefe de proyecto). (2001). Proyecto FIPA 2001-09, informe final. Pontificia Universidad Católica de Valparaíso, para la Subsecretaría de Pesca.
7. Servicio Agrícola y Ganadero (SAG). Etiqueta de Aqualife Formalina, registro SAG N.º 2254.
8. Soria-Galvarro, L. N. (1997). Tesis de licenciatura en medicina veterinaria sobre protozoos parásitos de salmonídeos de agua dulce en la X Región. Universidad Austral de Chile.
9. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (Subpesca). (2024). Resolución Exenta 2858/2024. Diciembre de 2024.