Evidencia VetTécnica de Baermann
Para qué sirve
El principio. Las larvas vivas de nematodos salen de las heces cuando la muestra queda sumergida en agua tibia. Como nadan mal, se hunden y se juntan en la parte más baja del recipiente, donde se recogen (Zajac et al., 2021).
Para gusanos pulmonares. Es la técnica más usada para diagnosticar nematodos pulmonares cuya forma diagnóstica es una larva en las heces (Zajac et al., 2021). Esta página complementa la guía del examen coproparasitario.
Qué detecta y qué no
Detecta larvas de (Zajac et al., 2021; Conboy, 2025):
- Aelurostrongylus abstrusus en el gato.
- Angiostrongylus vasorum y Crenosoma vulpis en el perro.
- Dictyocaulus en rumiantes y equinos.
- Strongyloides, cuando la larva sale en las heces.
No detecta:
- Huevos de helmintos ni quistes de protozoos: para eso está la flotación.
- La infección durante la prepatencia, ni cuando el animal no elimina larvas ese día (Elsheikha et al., 2016).
- Larvas muertas, que no migran (Barrantes Murillo y Duncan, 2026).
La muestra
Fresca, siempre. Con heces viejas pueden eclosionar huevos de estrongílidos o de Strongyloides, o entrar nematodos de vida libre del suelo, y la identificación se complica. En perros y gatos, los huevos de anquilostomas eclosionan rápido y sus larvas se pueden confundir con larvas pulmonares (Zajac et al., 2021).
Nunca congelada. Las larvas muertas no salen de la muestra (Barrantes Murillo y Duncan, 2026).
Cantidad (fuentes que coinciden en el mínimo):
| Fuente | Cantidad |
|---|---|
| Zajac et al. (2021) | al menos 10 g |
| ESCCAP (2025) | al menos 10 g |
| Conboy (2025) | 10 a 20 g |
Tres días. Por la eliminación intermitente, se recomienda examinar heces frescas de 3 días (Elsheikha et al., 2016). Zajac et al. (2021) recomiendan al menos tres exámenes en un animal con signos respiratorios.
Falsos positivos. Un perro coprófago o un gato que caza pueden tener en sus heces larvas de otros animales sin estar infectados (Zajac et al., 2021).
Materiales
- Copa plástica desechable de tallo hueco, el montaje más práctico hoy (Zajac et al., 2021).
- O el aparato clásico: un embudo en un soporte, con un trozo de manguera y una pinza en la salida (Zajac et al., 2021).
- Gasa doble y un elástico, o una malla o colador suspendido.
- Dos palillos o un lápiz para colgar el paquete.
- Agua tibia. Conboy (2025) la describe como agua caliente de la llave que se pueda tocar sin guantes.
- Pipeta o jeringa, portaobjetos, cubreobjetos y, si se usa embudo, un tubo de 15 mL y una centrífuga.
Paso a paso
Montaje de la técnica de Baermann en copa plástica de tallo hueco y paso a paso, con los parámetros de distintas fuentes.
Esquema · Elaboración propia, Evidencia Vet · A partir de Zajac et al. (2021), Conboy (2025), Elsheikha et al. (2016) y ESCCAP (2025)
El montaje. Las heces se envuelven en gasa doble, se cierra el paquete con un elástico y se cuelga de dos palillos apoyados en el borde de la copa o el embudo, de modo que quede sumergido. Las puntas de la gasa no deben colgar por fuera del borde, porque actúan como mecha y vacían el agua (Zajac et al., 2021).
El tiempo de espera:
| Fuente | Espera |
|---|---|
| Zajac et al. (2021) | al menos 8 horas, de preferencia toda la noche |
| Conboy (2025) | al menos 8 horas; 8 a 12 en su figura |
| Elsheikha et al. (2016) | 12 a 24 horas |
Recoger el fondo (Zajac et al., 2021; Conboy, 2025):
- Copa: se saca el paquete y se aspira con pipeta el material del fondo del tallo.
- Embudo: se abre la pinza y se recogen los primeros 10 mL en un tubo de 15 mL. Conboy (2025) evita las primeras gotas. El tubo se centrifuga a 650 g por 10 minutos (Conboy, 2025), se descarta el sobrenadante y se examina el sedimento.
Leer. Una gota en un portaobjetos con cubreobjetos, a 4X o 10X (Zajac et al., 2021).
Cómo leer las larvas
Primero, confirmar que es una larva de parásito. Hay que separarla de larvas de anquilostomas salidas de huevos, de nematodos de vida libre, de pelos de plantas y de otros seudoparásitos (Zajac et al., 2021; Elsheikha et al., 2016). El atlas de este manual describe los seudoparásitos más comunes.
Después, mirar la cola. La forma de la cola es el rasgo que más ayuda. En A. abstrusus, la larva mide 360 a 400 µm y tiene la cola en S con una espina dorsal (Zajac et al., 2021); la ficha del parásito compara su cola con las de otras larvas pulmonares.
Cuando hay dudas. La identificación exige entrenamiento; si hay dudas, se consulta a un laboratorio o se confirma por PCR (Barrantes Murillo y Duncan, 2026).
Por qué un negativo vale poco
Eliminación errática. Los metastrongiloideos pulmonares eliminan larvas con grandes cambios de un día a otro, lo que aumenta los falsos negativos (Zajac et al., 2021).
Prepatencia y cronicidad. No se detecta la infección antes de que haya larvas en las heces, y en gatos con infecciones crónicas o reinfecciones la eliminación puede ser esporádica o faltar aunque haya signos (Elsheikha et al., 2016).
Lo que se hace (Zajac et al., 2021; Elsheikha et al., 2016):
- Repetir el examen al menos tres veces.
- Combinar con lavado broncoalveolar o PCR cuando la sospecha clínica es alta.
- Usar FLOTAC cuando las heces no están frescas: es más sensible que el Baermann en gatos y no depende de que la larva se mueva.
Errores frecuentes
| Error | Qué produce | Fuente |
|---|---|---|
| Muestra congelada | Larvas muertas que no salen | Barrantes Murillo y Duncan (2026) |
| Heces viejas o recogidas del suelo | Larvas de anquilostomas o de vida libre que se confunden | Zajac et al. (2021) |
| Poca muestra | Menos larvas recuperadas | Zajac et al. (2021); ESCCAP (2025) |
| Gasa colgando por el borde | El agua se vacía por mecha | Zajac et al. (2021) |
| Un solo Baermann negativo como descarte | Infecciones no detectadas | Zajac et al. (2021); Elsheikha et al. (2016) |
| Buscar larvas pulmonares con una solución de alta densidad | Larvas deformadas e irreconocibles | Elsheikha et al. (2016) |
Lo que no se sabe
- No se encontraron estudios chilenos que usen Baermann para gusanos pulmonares de gatos o perros; los datos chilenos de Aelurostrongylus vienen de PCR.
- No se encontró una comparación de los tiempos de espera de 8, 12 y 24 horas con muestras de animales chilenos.
Referencias
Libro y guías
- Barrantes Murillo, D. F., & Duncan, K. T. (2026). Comparison of current fecal examination techniques for diagnosing parasites in companion animals. Today’s Veterinary Practice, septiembre-octubre de 2026. https://todaysveterinarypractice.com/wp-content/uploads/sites/4/2026/08/TVP-2026-0910_FecalExam.pdf
- Conboy, G. (2025). Parasitology in veterinary practice. En MSD Veterinary Manual (revisión de mayo de 2025). https://www.msdvetmanual.com/veterinary/clinical-pathology-and-procedures/diagnostic-procedures-for-the-private-practice-laboratory/parasitology
- ESCCAP. (2025). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). https://www.esccap.org/guidelines/gl1/
- Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Fecal examination for the diagnosis of parasitism. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 1-41). Wiley-Blackwell.
Revisión
- Elsheikha, H. M., Schnyder, M., Traversa, D., Di Cesare, A., Wright, I., & Lacher, D. W. (2016). Updates on feline aelurostrongylosis and research priorities for the next decade. Parasites & Vectors, 9, 389. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1671-6
Cómo citar esta ficha
Conejeros, A. (2026). Técnica de Baermann. Manual de parasitología, Evidencia Vet. URL permanente: https://evidenciavet.cl/manuales/parasitologia/tecnicas/baermann/.