Raspado cutáneo, tricograma, cinta adhesiva y muestras del oído

Para qué sirve

Encontrar el ácaro. La mayoría de las infestaciones por ácaros se diagnostican con raspados de piel, profundos o superficiales (Zajac et al., 2021). Otras muestras, como el tricograma, la cinta adhesiva y el cerumen, sirven en situaciones concretas.

Elegir según dónde vive el ácaro. Demodex vive en el folículo y las glándulas sebáceas; Sarcoptes excava túneles en la epidermis; Cheyletiella vive en el pelaje y no en la piel; Otodectes vive en el conducto auditivo (Zajac et al., 2021). La muestra se elige según eso.

Qué muestra tomar

Se sospecha	Muestra de elección	Otras opciones
Demodex	Raspado profundo con la piel apretada	Tricograma, cinta adhesiva con presión
Sarcoptes	Varios raspados del borde de las lesiones	Cinta adhesiva, heces, serología, tratamiento de prueba
Cheyletiella	Raspado superficial	Cepillado del pelaje, cinta adhesiva
Psoroptes en ovinos	Raspado superficial del borde de las lesiones	Costras deshechas o digeridas, ELISA de rebaño
Otodectes	Cerumen de los dos oídos en aceite mineral	Otoscopia
Taenia en el perro	Cinta adhesiva perianal	Proglótidos en heces o pelaje

Fuentes: Zajac et al. (2021), ESCCAP (2022), ESCCAP (2025), Mueller et al. (2020) y las fichas de cada parásito.

El raspado profundo

El instrumento. Una hoja de bisturí roma y redondeada, del número 10, cubierta de aceite mineral (Zajac et al., 2021).

Dónde. En el borde de la lesión o en el sitio preferido del parásito que se sospecha (Zajac et al., 2021). En perros de pelo largo se corta el pelo antes (ESCCAP, 2022).

Hasta dónde. Se raspa hacia adelante y hacia atrás hasta que aparece un leve sangrado capilar (Zajac et al., 2021).

Para Demodex. Antes de raspar se aprieta un pliegue de piel entre los dedos, para sacar los ácaros del folículo (Zajac et al., 2021). El raspado profundo sigue siendo el estándar para diagnosticar la demodicosis (Mueller et al., 2020).

La lectura. El material de la hoja se pone en un portaobjetos, se cubre y se revisa a 10X. Puede hacer falta revisar varias placas antes de encontrar ácaros, sobre todo con Sarcoptes (Zajac et al., 2021). Se busca a 10X y se identifica a 40X (CAPC, 2019).

Qué cuenta. Además de los adultos, los huevos y las heces del ácaro confirman la infestación (ver la ficha de Sarcoptes scabiei). En Demodex, una proporción alta de huevos y formas inmaduras indica una infestación más intensa (Zajac et al., 2021).

El raspado superficial

Para ácaros de superficie. Se raspa con la hoja cubierta de aceite mineral sin llegar a sangrar. Sirve para Cheyletiella y otros ácaros que viven sobre la piel o en el pelaje (Zajac et al., 2021).

En ovinos con sarna psoróptica. Se toman raspados superficiales del borde de las lesiones, en varios puntos, a menudo con hidróxido de potasio al 10%; las costras también se pueden deshacer o digerir para buscar los ácaros (ver la ficha de Psoroptes ovis).

En el cerdo con sarna sarcóptica. Las costras del borde de las orejas, desmenuzadas sobre papel oscuro, dejan ver los ácaros moviéndose; la digestión de las costras con hidróxido de sodio al 10% también los revela (Zajac et al., 2021).

El tricograma

Qué es. Se arrancan pelos de la zona afectada y se ponen en aceite mineral sobre un portaobjetos para buscar ácaros en la raíz (ver la ficha de Demodex).

Cuándo sirve. En animales poco cooperadores o en zonas donde raspar es difícil, como las patas, los espacios interdigitales y los párpados (ver la ficha de Demodex). El consenso de la WAVD lo considera útil en ciertas situaciones; el estándar sigue siendo el raspado profundo (Mueller et al., 2020).

Cuánto rinde. En 40 perros con demodicosis confirmada por raspado, el tricograma encontró ácaros en el 73% y la cinta adhesiva en el 75%, sin diferencia entre ambos; con pioderma, los dos llegaron al 100% (Cury et al., 2013).

Si sale negativo. Cuando el tricograma y la cinta son negativos, se hace igual el raspado profundo (Cury et al., 2013).

La cinta adhesiva

En la piel. Una tira de cinta transparente se presiona sobre la zona afectada y luego se pega sobre un portaobjetos, donde atrapa restos de piel y ácaros para verlos al microscopio (Zajac et al., 2021). Para Demodex, se presiona en zonas pequeñas sin pelo mientras se aprieta la piel (ver la ficha de Demodex).

Lo que rindió. En un hospital de Brasil, con 115 perros con dermatopatías, la cinta encontró ácaros en el 100% de 27 perros con demodicosis, frente al 81,5% del raspado profundo, y en 5 de 12 perros con sarna sarcóptica, frente a ninguno con el raspado. No encontró ácaros en ninguno de los 78 perros sin parasitosis (Pereira et al., 2015).

Cómo leer esos números. Es una inferencia de Evidencia Vet: son estudios de un solo centro y con pocos perros con sarna. La cinta aparece como una buena primera opción, más cómoda para el animal, y el raspado profundo queda para los negativos.

En el pelaje. Para Cheyletiella, la cinta y el cepillado del pelaje son alternativas al raspado superficial (Zajac et al., 2021).

Cinta perianal. La cinta adhesiva aplicada en la piel alrededor del ano recupera huevos que no salen en las heces: rinde más que la flotación para Taenia en el perro (ESCCAP, 2025) y es el método para los huevos de Oxyuris equi en el caballo, que quedan pegados a los pelos perianales (Zajac et al., 2021). El huevo de Taenia es igual al de Echinococcus: en zonas donde hay Echinococcus, un huevo de ténido se maneja como posible Echinococcus (ver la ficha de Taenia).

Sarcoptes: cuando el raspado falla

La sensibilidad. El raspado para Sarcoptes puede tener una sensibilidad de solo 20%; aplicar aceite mineral en zonas amplias de piel afectada antes de raspar aumenta mucho el rendimiento (ESCCAP, 2022).

Qué más hacer (ver la ficha de Sarcoptes scabiei):

• Buscar ácaros y huevos en las heces, porque el perro los traga al lamerse.
• Pedir serología: los ELISA comerciales pueden llegar a 90% de sensibilidad, pero los anticuerpos tardan al menos 5 semanas en aparecer.
• Tratar en forma presuntiva y confirmar el diagnóstico cuando desaparece el prurito.

El reflejo. Frotar el borde de la oreja provoca el reflejo de rascado en el 90% de los perros con sarna (ESCCAP, 2022).

Las muestras del oído

Primero el otoscopio. Se examina el conducto antes de tomar la muestra (Fresneda, 2025). Otodectes se ve como puntos blancos que se mueven sobre el cerumen café (ESCCAP, 2022).

La toma. Con un hisopo estéril se toma cerumen y exudado, avanzando hasta donde el conducto vertical pasa a horizontal, y se toman los dos oídos aunque uno se vea sano (Fresneda, 2025). Si el conducto duele, la sedación y la analgesia evitan lesiones (Fresneda, 2025).

Para ácaros. El cerumen se rueda sobre un portaobjetos con aceite mineral, sin teñir, y se revisa a bajo aumento, con objetivos de 4X a 10X (Fresneda, 2025). ESCCAP también acepta agua o alcohol como medio (ESCCAP, 2022).

Cuánto rinde (ver la ficha de Otodectes cynotis):

• La otoscopia sola no detectó cerca de un tercio de los gatos infestados.
• El examen al microscopio de los dos oídos es más sensible.
• El hisopo puede pasar por alto infestaciones con pocos ácaros.

La citología teñida. Una segunda lámina del mismo hisopo, rodada y no extendida, se seca al aire y se tiñe con una tinción tipo Romanowsky o Wright modificada. No busca ácaros: muestra levaduras como Malassezia, bacterias y células inflamatorias, y se lee a 40X y con inmersión (Fresneda, 2025). Es una inferencia de Evidencia Vet: en una otitis con ácaros, esa lámina muestra si hay una infección secundaria que tratar.

Ácaros fuera del oído. Demodex también puede aparecer en el oído, con un hisopado firme o un raspado superficial del pabellón (Fresneda, 2025).

Errores frecuentes

Error	Qué produce	Fuente
Raspar poco profundo para Demodex	Ácaros del folículo no recuperados	Zajac et al. (2021)
Un solo raspado para Sarcoptes	Falso negativo en hasta cuatro de cada cinco casos	ESCCAP (2022)
Raspar lejos del borde de la lesión	Menos ácaros en la muestra	Inferencia de Evidencia Vet a partir de Zajac et al. (2021)
Descartar la sarna con un raspado negativo	Perros con sarna sin tratar	Zajac et al. (2021)
Revisar solo el oído con signos	Infestaciones del otro oído no vistas	Fresneda (2025)
Confiar solo en la otoscopia	Un tercio de los gatos con Otodectes no detectados	Ficha de Otodectes cynotis
Enviar ácaros secos	Ácaros que no se pueden identificar	Zajac et al. (2021)

Lo que no se sabe

• Cuánto rinden el raspado, el tricograma y la cinta en perros y gatos de Chile: los estudios comparativos encontrados son de Brasil.
• Si la serología para Sarcoptes está disponible y validada en laboratorios chilenos.

Referencias

1. CAPC. (2019). Demodex spp. Companion Animal Parasite Council (actualizado el 13 de marzo de 2019). https://capcvet.org/guidelines/demodex/
2. Cury, G. M. M., Pereira, S. T., Botoni, L. S., Pereira, R. D. O., Telles, T. C., Ferreira, A. P. L., & Costa-Val, A. P. (2013). Diagnosis of canine demodicosis: comparative study between hair plucking and adhesive tape tests. Revista Brasileira de Ciência Veterinária, 20(3). https://doi.org/10.22409/rbcv.v20i3.248
3. ESCCAP. (2022). Control of ectoparasites in dogs and cats (Guideline 03, 7.ª ed., enero de 2022). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl3/
4. ESCCAP. (2025). Worm control in dogs and cats (Guideline 01, 7.ª ed., junio de 2025). European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. https://www.esccap.org/guidelines/gl1/
5. Fresneda, K. (2025). Ear cytology: a guide on what to do, what for and when. Vet Times, 55(50), 6-8. https://www.vettimes.com/clinical/small-animal/ear-cytology-a-guide-on-what-to-do-what-for-and-when
6. Mueller, R. S., Rosenkrantz, W., Bensignor, E., Karaś-Tęcza, J., Paterson, T., & Shipstone, M. A. (2020). Diagnosis and treatment of demodicosis in dogs and cats: clinical consensus guidelines of the World Association for Veterinary Dermatology. Veterinary Dermatology, 31(1), 5-27. https://doi.org/10.1111/vde.12806
7. Pereira, D. T., Castro, L. J. M., Centenaro, V. B., Amaral, A. S., Krause, A., & Schmidt, C. (2015). Skin impression with acetate tape in Demodex canis and Sarcoptes scabiei var. vulpes diagnosis. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 67(1), 49-54. https://scielo.br/j/abmvz/a/LxYmBYnY5QMQF5j5NSJwb7F/
8. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Diagnosis of arthropod parasites. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 247-345). Wiley-Blackwell.
9. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Fecal examination for the diagnosis of parasitism. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 1-190). Wiley-Blackwell.