Salmonelosis porcina

Especies afectadas y susceptibilidad

Destetados. La salmonelosis septicémica por S. Choleraesuis afecta sobre todo a cerdos destetados menores de 5 meses (Kim et al., 2026).

PRRS. El virus del PRRS facilita la diseminación de S. Choleraesuis: en destetados coinfectados, la ganancia diaria fue la más baja, la fiebre y los signos más intensos y la bacteria colonizó más tejidos (Kim et al., 2026).

El agente

Tres cuadros. La salmonelosis porcina se presenta como septicemia (S. Choleraesuis), enterocolitis (S. Typhimurium) o infección subclínica (Kim et al., 2026).

Patogenicidad. En infección experimental, S. Choleraesuis causó más fiebre, signos más graves y lesiones más marcadas en linfonodos mesentéricos y placas de Peyer que S. Typhimurium (Kim et al., 2026).

Variante monofásica. La variante monofásica de S. Typhimurium (1,4,[5],12:i:-) fue el serovar más común en cerdos faenados en Ecuador (Cevallos-Almeida et al., 2025), y en Colombia sus aislados humanos y porcinos circulan juntos (Cuenca-Arias et al., 2026).

Epidemiología en Chile

Lo que no se sabe. Las fuentes revisadas no informan prevalencia ni serovares de Salmonella en cerdos chilenos.

En la región. En Ecuador, el 15,3% de los cerdos faenados portaba Salmonella; los serovares más comunes fueron la variante monofásica de Typhimurium (28,5%) y Uganda (26,7%), y el 71,4% de los aislados resistía la tetraciclina (Cevallos-Almeida et al., 2025).

Resistencia en Sudamérica. En una revisión de 27 estudios en animales de producción (70,4% de Brasil), la resistencia fue de 60,6% al ácido nalidíxico, 32,5% a ciprofloxacino y 23,7% a enrofloxacino, y el 62% de los aislados era multirresistente (Barrientos-Villegas et al., 2025).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: el patrón regional sugiere que en Chile también circulan cepas resistentes; falta vigilancia publicada en cerdos.

Transmisión y factores de riesgo

Vía oral. La infección ocurre por vía oral; la vía intranasal puede dar una infección más fuerte (Kim et al., 2026).

Coinfección con PRRS. Agrava la infección sistémica (Kim et al., 2026).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: el cerdo portador sin signos es el que lleva la bacteria al matadero y a la carne.

Signos clínicos

Septicémica. Fiebre, diarrea leve y menor ganancia de peso; con PRRSV, cianosis de orejas y punta del hocico y equimosis en la grupa (Kim et al., 2026).

Enterocolitis. La causa sobre todo S. Typhimurium (Kim et al., 2026).

Subclínica. Sin signos (Kim et al., 2026).

Hallazgos de necropsia

Forma septicémica. Petequias en pulmón con consolidación leve, bazo grande y oscuro, linfonodos submandibulares, mesentéricos y gastrohepáticos aumentados, y petequias en el hígado (Kim et al., 2026).

Diferencia con peste porcina africana. En la salmonelosis septicémica el linfonodo gastrohepático aumenta sin hemorragia y el renal no se afecta; en la peste porcina africana aguda ambos están aumentados y hemorrágicos (Kim et al., 2026).

Histopatología

Lesiones. Linfadenitis supurativa en linfonodos mesentéricos y submandibulares, infiltrado de neutrófilos en placas de Peyer y neumonía con infiltrado mononuclear y células necróticas en los alvéolos (Kim et al., 2026).

Diagnóstico de laboratorio

Cultivo. Se enriquece en caldo Rappaport-Vassiliadis y se siembra en medio selectivo; el proceso es lento y compite con la flora intestinal (Kim et al., 2026).

Muestras. En la forma septicémica se recomiendan pulmón, hígado y bazo para obtener cultivos puros (Kim et al., 2026).

PCR y ELISA. Hay PCR en tiempo real para cuantificar Salmonella en heces y ELISA para anticuerpos (Kim et al., 2026).

Peste porcina africana. Ante un cuadro septicémico la peste se confirma o descarta por PCR (Kim et al., 2026).

Diagnóstico diferencial

Peste porcina africana (Kim et al., 2026). Es una inferencia de Evidencia Vet: también peste porcina clásica, erisipela y enfermedad de Glässer en la forma septicémica; disentería porcina, ileítis porcina y colibacilosis en la enterocolitis.

Tratamiento

Antibiograma. Es una inferencia de Evidencia Vet: con los niveles de resistencia descritos en Sudamérica (Barrientos-Villegas et al., 2025; Cevallos-Almeida et al., 2025), el tratamiento debe guiarse por antibiograma.

Fluoroquinolonas. La resistencia a fluoroquinolonas, críticas en medicina humana, es un problema de salud pública (Barrientos-Villegas et al., 2025).

Pronóstico

Peor con PRRS. La coinfección agrava la enfermedad y la pérdida de peso (Kim et al., 2026).

Prevención

Vacunas. Las vacunas actuales contra S. Choleraesuis dan protección limitada; se ha probado combinar una vacuna inactivada con un estímulo de inmunidad entrenada (Sánchez-Morales et al., 2026).

Control del PRRS. Es una inferencia de Evidencia Vet: por la sinergia descrita, controlar el PRRS reduce la salmonelosis septicémica.

Bioseguridad. Es una inferencia de Evidencia Vet: control de roedores, limpieza entre lotes y alimento sin contaminación.

Riesgo zoonótico

Alimentos. Salmonella de origen porcino es un riesgo de inocuidad para la carne (Cevallos-Almeida et al., 2025).

Variante monofásica. En Colombia, los genomas de aislados humanos y porcinos de la variante monofásica de Typhimurium se mezclan en los mismos linajes (Cuenca-Arias et al., 2026).

Resistencia. Cepas multirresistentes de animales pueden llegar a las personas por la cadena alimentaria (Barrientos-Villegas et al., 2025).

Referencias

• Barrientos-Villegas, S., García-Álvarez, M. I., Vidal, J. L., Gómez-Osorio, L. M., López-Osorio, S., & Chaparro-Gutiérrez, J. J. (2025). Systematic review: genotypic and phenotypic resistance of fluoroquinolone-resistant Salmonella in livestock in South America (2020-2024). Frontiers in Veterinary Science, 12, 1614486. https://doi.org/10.3389/fvets.2025.1614486
• Cevallos-Almeida, M., Gómez, C., Cajas, B., Almachi, A., Rose, V., Denis, M., & Kerouanton, A. (2025). Salmonella in pigs slaughtered in Ecuador: prevalence, serotypes, genotypes and antibiotic resistance. Veterinary and Animal Science, 30, 100548. https://doi.org/10.1016/j.vas.2025.100548
• Cuenca-Arias, P., Triana Diaz, J. A., Prada-Cardozo, D. A., Montilla-Escudero, E., Ruiz-Moreno, H. A., Montaño, L. A., Rodríguez, E. C., Villarreal Ascencio, J. M., Chamorro-Tovar, I., Barrientos, I., Pulido-Villamarín, A., Carrascal-Camacho, A. K., & Wiesner, M. (2026). Comparative genomics of the monophasic variant of Salmonella Typhimurium: analysis of Colombian genomes and their relationship with international lineages. Microbiology Spectrum, 14(10), e0387025. https://doi.org/10.1128/spectrum.03870-25
• Kim, E. M., Bae, Y. C., Lee, H., Hwang, M. H., Lee, K. K., Jeoung, H. Y., Shin, G. E., Ku, B. K., & Kim, J. (2026). Experimental evaluation of Salmonella Choleraesuis pathogenicity and porcine reproductive and respiratory syndrome virus synergy in weaned pigs. Porcine Health Management, 12(1), 22. https://doi.org/10.1186/s40813-026-00502-8
• Sánchez-Morales, L., Pérez-Sancho, M., García-Seco, T., Balseiro, A., Pérez-Domingo, A., Buendía, A., Díez-Guerrier, A., Fernández-Manzano, Á., Relimpio, D., Ugarte-Ruiz, M., de los Ángeles Risalde, M., Gortázar, C., & Domínguez, L. (2026). Combination of trained immunity and specific inactivated vaccine against S. Choleraesuis infection in pigs. Frontiers in Veterinary Science, 13, 1879508. https://doi.org/10.3389/fvets.2026.1879508