Cryptosporidium parvum

Taxonomía y morfología

Coccidio. Cryptosporidium es un protozoo coccidio (Zajac et al., 2021).

Varias especies en rumiantes. Los rumiantes se infectan con C. parvum, C. andersoni, C. bovis, C. ubiquitum y C. xiaoi, entre otras. C. parvum vive en el intestino; otras especies, en el intestino delgado o el abomaso (Zajac et al., 2021).

El ooquiste. Es redondo y mide 4 a 8 µm según la especie (Zajac et al., 2021). Con la tinción de Ziehl-Neelsen modificada se tiñe de rojo y a veces se ven los esporozoítos (ver la ficha de diarrea neonatal del ternero).

La especie no se ve. Las especies no se distinguen al microscopio; identificarlas exige análisis molecular (Zajac et al., 2021).

Hospedadores y localización

Muchos mamíferos. C. parvum infecta a rumiantes, camélidos y otros mamíferos (Zajac et al., 2021), incluidas las personas.

Quiénes enferman. Las infecciones pueden no dar signos o causar diarrea de gravedad variable, sobre todo en animales jóvenes (Zajac et al., 2021).

En el ternero. Es una de las causas más importantes de diarrea en terneros de menos de 20 días, sobre todo en la segunda semana de vida (ver la ficha de diarrea neonatal del ternero).

Fauna silvestre en Chile. Se detectó C. parvum en roedores silvestres (Phyllotis darwini) de áreas protegidas y rurales del norte chico (Carrera-Játiva et al., 2024).

Ciclo biológico

Directo, y ya infectante al salir (Zajac et al., 2021):

1. Ooquiste en las heces. Sale ya infectante.
2. Ambiente. Es muy resistente a las condiciones ambientales.
3. Ingestión. El animal se infecta al tragar ooquistes.
4. Intestino. El parásito se multiplica en el epitelio del intestino delgado.
5. Nuevos ooquistes. Salen con las heces.

La diferencia con Eimeria. El ooquiste de Eimeria necesita esporular en el ambiente; el de Cryptosporidium no (Zajac et al., 2021).

Lo que esto implica. Es una inferencia de Evidencia Vet: como el ooquiste es infectante de inmediato y resiste el ambiente, un ternero con diarrea contamina la cama, los baldes y las manos del personal en el mismo día. Separar a los terneros enfermos y limpiar sus utensilios aparte corta parte del contagio.

Situación en Chile

Lecherías de la Región Metropolitana. En 205 terneros recién nacidos con diarrea, se encontraron ooquistes en el 56,1% con auramina y en el 49,8% con Ziehl-Neelsen modificado. Las pruebas inmunocromatográficas y moleculares confirmaron C. parvum (Díaz-Lee et al., 2011).

Subtipos. En un ternero con diarrea de Chile central se encontraron tres subtipos GP60 distintos de C. parvum, con predominio de IIaA17G4R1 (Mercado et al., 2015).

Fauna. C. parvum en roedores silvestres del norte chico (Carrera-Játiva et al., 2024).

Lo que no se sabe. No se encontraron estudios chilenos en corderos ni cabritos.

Enfermedades que causa

• En terneros: diarrea neonatal del ternero, donde puede aparecer junto a rotavirus, coronavirus y E. coli (ver esa ficha).
• En personas: criptosporidiosis, con diarrea.

Diagnóstico parasitológico

Frotis teñidos. Los frotis de heces se tiñen con técnicas ácido alcohol resistentes, como el Ziehl-Neelsen modificado (Zajac et al., 2021). En terneros chilenos, la auramina detectó más que el Ziehl-Neelsen: 56,1% frente a 49,8% (Díaz-Lee et al., 2011).

Flotación. Los ooquistes también se detectan con flotación centrífuga en azúcar de Sheather (Zajac et al., 2021). Por su tamaño se buscan a 40X (ver la página de flotación fecal).

Pruebas inmunológicas. Las pruebas inmunodiagnósticas detectan el parásito en heces (Zajac et al., 2021), y las inmunocromatográficas confirman la especie en la práctica (ver la ficha de diarrea neonatal del ternero).

PCR. Identifica la especie y el subtipo (Zajac et al., 2021; Mercado et al., 2015).

Es una inferencia de Evidencia Vet: en un ternero de 1 a 3 semanas con diarrea, un frotis teñido de heces frescas es la prueba más rápida y barata para confirmar Cryptosporidium en el predio.

Control y antiparasitarios

Fluidoterapia. Los antimicrobiales no actúan sobre Cryptosporidium; el tratamiento se basa en fluidos orales o intravenosos según el estado del ternero (ver la ficha de diarrea neonatal del ternero).

Prevención (ver la ficha de diarrea neonatal del ternero):

• Calostro de buena calidad y en cantidad suficiente.
• Higiene de la ternera, los baldes y las mamaderas.
• Separar a los terneros con diarrea.

El tratamiento lo define el médico veterinario.

Resistencia antiparasitaria

No aplica en el sentido habitual. Los antimicrobiales no actúan sobre el parásito, y no hay en Chile un antiparasitario de uso rutinario cuya eficacia se vigile.

Riesgo zoonótico

Es zoonótico. C. parvum es una especie zoonótica ampliamente descrita, y otras especies de Cryptosporidium también pueden serlo (Zajac et al., 2021).

Quiénes se exponen. Las personas que crían terneros, con más riesgo en niños e inmunodeprimidos (ver la ficha de diarrea neonatal del ternero).

Protección. Es una inferencia de Evidencia Vet ya planteada en la ficha de diarrea neonatal del ternero: lavado de manos, guantes y ropa de trabajo exclusiva para la crianza de terneros.

Lo que no se sabe

• La frecuencia de C. parvum en terneros de lecherías del sur de Chile.
• Si hay transmisión entre terneros, personas y fauna silvestre en Chile.
• La frecuencia en corderos y cabritos.

Referencias

Libro

1. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, S. E., & Reichard, M. V. (2021). Fecal examination for the diagnosis of parasitism. En Veterinary clinical parasitology (9.ª ed., pp. 1-190). Wiley-Blackwell.

Estudios en Chile

2. Carrera-Játiva, P. D., Acosta-Jamett, G., & Muñoz, P. (2024). Molecular detection of Cryptosporidium parvum in wild rodents (Phyllotis darwini) inhabiting protected and rural transitional areas in north-central Chile. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 24, 100971. https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2024.100971
3. Díaz-Lee, A., Mercado, R., Onuoha, E. O., Ozaki, L. S., Muñoz, P., Muñoz, V., Martínez, F. J., & Fredes, F. (2011). Cryptosporidium parvum in diarrheic calves detected by microscopy and identified by immunochromatographic and molecular methods. Veterinary Parasitology, 176(2-3), 139-144. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2010.11.001
4. Mercado, R., Peña, S., Ozaki, L. S., Fredes, F., & Godoy, J. (2015). Multiple Cryptosporidium parvum subtypes detected in a unique isolate of a Chilean neonatal calf with diarrhea. Parasitology Research, 114(5), 1985-1988. https://doi.org/10.1007/s00436-015-4364-8